1. На главную
  2. Электронные версии
  3. Биология моря
  4. T. 49, № 5, 2023

Биология моря, 2023, T. 49, № 5, стр. 287-292

Микотоксины в макроводорослях Кандалакшского залива Белого моря при естественном и экспериментальном отчуждении с субстрата

А. А. Буркин 1, Г. П. Кононенко 1, *

1 Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко
123022 Москва, Россия

* E-mail: kononenkogp@mail.ru

Поступила в редакцию 08.07.2022
После доработки 09.03.2023
Принята к публикации 30.03.2023

Аннотация

В одном из экотопов Кандалакшского залива Белого моря методом непрямого конкурентного иммуноферментного анализа проведена оценка содержания низкомолекулярных метаболитов микромицетов (микотоксинов) в водорослях-макрофитах, отобранных c субстратов, из штормовых выбросов и после длительного выдерживания в почве. У Fucus distichus, F. serratus, F. vesiculosus и Ascophyllum nodosum из выбросов концентрации всех анализированных токсичных веществ были единообразно снижены по сравнению с таковыми в живых талломах. Для Laminaria digitata, Saccharina latissima и Ahnfeltia plicata, в живых особях которых микотоксины не встречались или были крайне редкими, в выбросах выявлены случаи контаминации цитринином, микофеноловой кислотой, эмодином и стеригматоцистином. После 12 мес. выдерживания в почве в образцах F. distichus удалось определить лишь 9 компонентов из 16 анализированных. У F. serratus, F. vesiculosus, A. nodosum и Pelvetia canaliculata выявлены только эмодин, микофеноловая кислота, альтернариол и эргоалкалоиды.

Ключевые слова: морские водоросли, штормовые выбросы, микотоксины, почвенная деструкция, иммуноферментный анализ

Список литературы

  1. Бубнова Е.Н. Новые для Белого моря виды морских грибов // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 16. Биология. 2016. № 4. С. 41–44.

  2. Бубнова Е.Н., Грум-Гржимайло О.А., Коновалова О.П., Марфенина О.Е. 50 лет микологических исследований на Беломорской биостанции им. Н.А. Перцова: основные направления, итоги, перспективы // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 16. Биология. 2014. № 1. С. 29–46.

  3. Бубнова Е.Н., Киреев Я.В. Сообщества грибов на талломах бурых водорослей рода Fucus в Кандалакшском заливе Белого моря // Микол. фитопатол. 2009. Т. 43. Вып. 5. С. 388–397.

  4. Буркин А.А., Кононенко Г.П. Феномен смещения профиля токсинов микромицетов в бурых водорослях из штормовых выбросов. Тезисы докладов Всероссийской конференции “Биология водных экосистем в XXI веке: факты, гипотезы, тенденции”, Борок, 22–26 ноября 2021 г. – Ярославль: Филигрань. 2021. С. 32.

  5. Буркин А.А., Кононенко Г.П., Георгиев А.А., Георгиева М.Л. Особенности накопления микотоксинов в макрофитах Белого моря // Современная микология в России. 2020. Т. 8. С. 100–102.

  6. Буркин А.А., Кононенко Г.П., Георгиев А.А., Георгиева М.Л. Токсичные метаболиты микромицетов в бурых водорослях семейств Fucaceae и Laminariaceae из Белого моря // Биол. моря. 2021. Т. 47. № 1. С. 40–44.

  7. Возжинская В.Б. Изучение экологии и распределения водорослей в Кандалакшском заливе Белого моря // Океанология. 1967. Вып. 6. С. 1108–1118.

  8. Коваленко М.И., Бубнова Е.Н., Георгиева М.Л. Грибы, ассоциированные с красной водорослью Palmaria palmata (L.) F. Weber & D. Mohr, на примере Кандалакшского залива Белого моря // Труды VIII Международной научно-практической конференции “Морские исследования и образование (MARESEDU–2019)”, Т. 2 (3): [сборник]. Тверь: ПолиПРЕСС. 2020. С. 440–443.

  9. Коновалова О.П., Бубнова Е.Н. Грибы на бурых водорослях Ascophyllum nodosum и Pelvetia canaliculata в Кандалакшском заливе Белого моря // Микол. фитопатол. 2011. Т. 45. Вып. 3. С. 240–248.

  10. Кононенко Г.П., Буркин А.А., Георгиев А.А., Георгиева М.Л. Микотоксины в макроводорослях из пролива Великая Салма Кандалакшского залива Белого моря // Биол. моря. 2022. Т. 48. № 1. С. 53–61.

  11. Максимова О.В., Мюге Н.С. Новые для Белого моря формы фукоидов (Fucales, Phaeophyceae): морфология, экология, происхождение // Ботан. журн. 2007. Т. 92. № 7. С. 965–986.

  12. Човган О.В., Малавенда С.С. Роль макрофитов как субстрата в формировании литоральных эпизооценозов Белого моря // Вест. Мурман. гос. техн. ун-та. 2017. Т. 20. № 2. С. 390–400.

  13. Bakutis B., Baliukoniené V., Paškevičius A. Use of biological method for detoxification of mycotoxins // Botanica Lithuanica. 2005. Suppl. 7. P. 123–129.

  14. Christiansen J.V., Isbrandt T., Petersen C. et al. Fungal quinones: diversity, producers, and application of quinones from Aspergillus, Penicillium, Talaromyces, Fusarium, and Arthrinium // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2021. V. 105. P. 8157–8193.

  15. Hathout A.S., Aly S.E. Biological detoxification of mycotoxins: A review // Ann. Microbiol. 2014. V. 64. № 3. P. 905–919.

  16. He C., Fan Y., Liu G., Zhang H. Isolation and identification of a strain of Aspergillus tubingensis with deoxynivalenol biotransformation capability // Int. J. Mol. Sci. 2008. № 9. P. 2366–2375.

  17. Ji C., Fan Y., Zhao L. Review on biological degradation of mycotoxins // Animal Nutrition. 2016. № 2. P. 127–133.

  18. Taheur F.B., Kouidhi B., Al Qurashi Y.M.A. et al. Review: Biotechnology of mycotoxin detoxication using microorganisms and enzymes // Toxicon. 2019. V. 160. P. 12–22.

  19. Verhoet H.A. Litter bag method // Methods in Applied Soil Microbiology and Biochemistry. Waltham: Academic Press. 1995. P. 485–487.

  20. Wilson N.M., McMaster N., Gantulga D. et al. Modification of the mycotoxin deoxynivalenol using microorganisms isolated from environmental samples // Toxins. 2017. V. 9. P. 141.

  21. Xin Z.-H., Wang W.-L., Zhang Y.-P. et al. Pennicitrinone D, a new citrinin dimer from the halotolerant fungus Pe-nicillium notatum B-52 // J. Antibiotics. 2009. V. 62. P. 225–227.

Дополнительные материалы отсутствуют.

Инструменты

следующая статья выпуска содержание выпуска

Биология моря

Архивы выпусков Информация о журнале Отправить рукопись в журнал