1. На главную
  2. Электронные версии
  3. Биология внутренних вод
  4. № 6, 2023

Биология внутренних вод, 2023, № 6, стр. 777-783

Устойчивые различия в темпах роста молоди триплоидной устрицы Crassostrea gigas Thunberg (Osteidae)

О. Ю. Вялова *

Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского Российской академии наук
Севастополь, Россия

* E-mail: vyalova07@gmail.com

Поступила в редакцию 05.11.2022
После доработки 27.03.2023
Принята к публикации 18.05.2023

Аннотация

Исследованы три группы моллюсков триплоидной тихоокеанской устрицы Crassostrea gigas из лимана Донузлав (Черное море), различающиеся морфометрическими характеристиками: быстрорастущие (FG) с высотой раковины >40 мм, среднерастущие (MG) с размерами 15–40 мм и медленнорастущие (SG) – <15 мм. Выявлены устойчивые различия в темпах роста молоди одного возраста. Моллюски группы FG лидировали по приросту массы и линейных размеров на протяжении всего исследования. Среднесуточный прирост высоты раковины у исследованных моллюсков варьировал от 0.1 до 0.35 мм/сут, с максимальными значениями в июне и сентябре. Увеличение массы происходило с разной интенсивностью, в среднем у SG – 0.051 г/сут, у MG – 0.168 г/сут, у FG – 0.287 г/сут. Максимумы этого показателя приходились на август и сентябрь, достигая 0.12, 0.26 и 0.43 г/сут соответственно. Получена отрицательная аллометрия раковины по высоте у медленнорастущих полиплоидных устриц (b = 2.17), у остальных двух других групп – четкая положительная (для MG b = 3.23, для FG b = 3.80), т.е. увеличение массы происходило быстрее линейного роста у молоди вида. Высказано предположение о полиплоидии (триплоидности) как причине возникновения различий темпов роста одновозрастных моллюсков. Показатель аллометрии b может применяться для выявления ростовых особенностей на ранних этапах развития устриц.

Ключевые слова: устрицы Crassostrea gigas, триплоиды, рост, Черное море

Список литературы

  1. Вялова О.Ю. 2009. Первые результаты выращивания триплоидной тихоокеанской устрицы Crassostrea gigas в Черном море (Южный берег Крыма) // Экология моря. Вып. 79. С. 37.

  2. Вялова О.Ю. 2019. Рост и сроки получения товарной триплоидной устрицы в озере Донузлав (Черное море, Крым) // Морской биол. журн. Т. 4. № 1. С. 24. https://doi.org/10.21072/mbj.2019.04.1.03

  3. Жугайло С.С., Авдеева Т.М., Пугач М.Н., Аджиумеров Э.Н. 2018. Состояние качества водной среды донных отложений озера Донузлав в современный период // Водные биоресурсы и среда обитания. Т. 1. № 1. С. 32. http://hdl.handle.net/1834/14185

  4. Baillie Ch.J., Grabowski J.H. 2019. Factors affecting recruitment, growth and survival of the eastern oyster Crassostrea virginica across an intertidal elevation gradient in southern New England // Mar. Ecol. Progr. Ser. V. 609. P. 119. https://doi.org/10.3354/meps12830

  5. Barilléa L., Lerouxela A., Dutertrea M. et al. 2011. Growth of the Pacific oyster (Crassostrea gigas) in a high-turbidity environment: Comparison of model simulations based on scope for growth and dynamic energy budgets // J. Sea Res. V. 66. Iss. 4. P. 392. https://doi.org/10.1016/j.seares.2011.07.004

  6. Batista F., Leitão A., Fonseca V. et al. 2007. Individual relationship between aneuploidy of gill cells and growth rate in cupped oysters Crassostrea angulata, C. gigas and their reciprocal hybrids // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. V. 352. Iss. 1. P. 226. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2007.07.009

  7. Bayne B.L. 2000. Relations between variable rates of growth, metabolic costs and growth efficiencies in individual Sydney rock oysters (Saccostrea commercialis) // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. V. 251. Iss. 2. P. 185. https://doi.org/10.1016/S0022-0981(00)00211-2

  8. Bayne B.L. 2004. Phenotypic flexibility and physiological tradeoffs in the feeding and growth of marine bivalve molluscs // Int. Comp. Biol. V. 44. Iss. 6. P. 425. https://doi.org/10.1093/icb/44.6.425

  9. Bertolini C., Brigolin D., Porporato E.M.D. et al. 2021. Testing a model of pacific oysters (Crassostrea gigas) growth in the Adriatic Sea: implications for aquaculture spatial planning // Sustainability. V. 13. P. 2. https://doi.org/10.3390/su13063309

  10. Bodenstein S., Walton W.C., Steury T.D. 2021. Effect of farming practices on growth and mortality rates in triploid and diploid eastern oysters Crassostrea virginica // Aquaculture Environ. Int. V. 13. P. 33. https://doi.org/10.3354/aei00387

  11. Brundu G., Pagani S., Graham Ph. 2021. The shell growth of Crassostrea gigas and Ostrea edulis in windy condition: a preliminary evaluation // Aquaculture Res. V. 52. P. 6802. https://doi.org/10.1111/are.15511

  12. Cogswell A.T., Kenchington E.L., Roach S.E. et al. 2006. Triploid bay scallops (Argopecten irradians): induction methodology, early gonadic development and growth // Can. Tech. Report Fish. Aquat. Sci. V. 2635.

  13. Dame R.F. 1972. Comparison of various allometric relationships in intertidal and subtidal American oysters // Fishery bulletin. V. 70. Iss. 4. P. 1121.

  14. Francis Pan T.C., Applebaum S.L., Manahan D.T. 2015. Genetically determined variation in developmental physiology of bivalve larvae (Crassostrea gigas) // Physiol. Biochem. Zool. V. 88. № 2. P. 128. https://doi.org/10.1086/679656

  15. Grangeré K., Ménesguen A., Lefebvre S. et al. 2009. Modelling the influence of environmental factors on the physiological status of the Pacific oyster Crassostrea gigas in an estuarine embayment; The Baie des Veys (France) // J. Sea Res. V. 62. P. 147.

  16. Guo X.M., Allen S.K. 1994. Viable tetraploids in the Pacific oyster (Crassostrea gigas Thunberg) produced by inhibiting polar body I in eggs from triploids // Mol. Mar. Biol. Biotechnol. V. 3. Iss. 1. P. 42.

  17. Hedgecock D., Lin J.Z., De Cola S. et al. 2007. Transcriptomic analysis of growth heterosis in larval Pacific oysters (Crassostrea gigas) // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. V. 104. № 7. P. 2313. https://doi.org/10.1073/pnas.0610880104

  18. Leitão A., Boudry P., Thiriot-Quiévreux C. 2001. Negative correlation between aneuploidy and growth in thePacific oyster Crassostrea gigas: ten years of evidence // Aquaculture. V. 193. Iss. 1–2. P. 39. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(00)00488-9

  19. Liu W., Heasman M., Simpson R. 2008. Growth and reproductive performance of triploid and diploid blacklip abalone, Haliotis rubra (Leach, 1814) // Aquaculture Res. V. 40. Iss. 2. P. 188. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2008.02082.x

  20. Major J., Jakab M., Tompa A. 1998. The frequency of induced premature centromere division in human populations occupationally exposed to genotoxic chemicals // Mutation Res. V. 445. Iss. 2. P. 241. https://doi.org/10.1016/S1383-5718(99)00129-1

  21. Mallet A., Doiron S. 2009. Growth comparison for oysters grown on rope and floating bags // Report to Project AFA9004, New Brunswick Department of Agriculture and Aquaculture, January. 28 p.

  22. Mallia J.V., Muthiah P., Thomas P.C. 2006. Growth of triploid oyster, Crassostrea madrasensis (Preston) // Aquaculture Res. V. 37. P. 718.

  23. Martin R., Rademaker A. 1990. The frequency of aneuploidy among individual chromosomes in 6.821 human sperm chromosome complements // Cytogenetics and Cell Genetics. V. 53. Iss. 2–3. P. 103.

  24. Meyer E., Manahan D.T. 2010. Gene expression profiling of genetically determined growth variation in bivalve larvae (Crassostrea gigas) // J. Experimental Biol. V. 213. Iss. 5. P. 749. https://doi.org/10.1242/jeb.037242

  25. Nair N.U., Nair N.B. 1986. Relation between weight and linear measurements of shell in C. madrasensis (Preston) // Fishery Technol. V. 23. P. 120.

  26. Nell J.A. 2002. Farming triploid oysters // Aquaculture. V. 210. P. 69.

  27. Osei I.K., Kobina Y., Obodai E.A. 2022. Comparative analysis of growth performance and survival of the West African mangrove oyster, Crassostrea tulipa (Lamarck, 1819) cultivated by suspension and bottom culture methods in the Densu Estuary, Ghana // Aquaculture, Fish and Fisheries. V. 2. P. 233. https://doi.org/10.1002/aff2.43

  28. Pace D.A., Marsh A.G., Leong P.K. et al. 2006. Physiological bases of genetically determined variation in growth of marine invertebrate larvae: a study of growth heterosis in the bivalve Crassostrea gigas // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. V. 335. Iss. 2. P. 188. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.03.005

  29. Pernet F., Tremblay R., Redjah I., et al. 2008. Physiological and biochemical traits correlate with differences in growth rate and temperature adaptation among groups of the eastern oyster Crassostrea virginica // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. V. 211. Iss. 6. P. 969. https://doi.org/10.1242/jeb.014639

  30. Powell E.N., Mann R., Ashton-Alcox K.A. et al. 2015. The allometry of oysters: spatial and temporal variation in the length–biomass relationships for Crassostrea virginica // J. Mar. Biol. Ass. UK. V. 96. Iss. 5. P. 1. https://doi.org/10.1017/S0025315415000703

  31. Ramadhaniaty M., Setyobudiandi I., Madduppa H.H. 2018. Morphogenetic and population structure of two species marine bivalve (Ostreidae: Saccostrea cucullata and Crassostrea iredalei) in Aceh, Indonesia // Biodiversity. V. 19. Iss. 3. P. 978. https://doi.org/10.13057/biodiv/d190329

  32. Reynaga-Franco F.J., Aragón-Noriega E.A., Grijalva-Chon J.M. et al. 2019. Multi-model inference as criterion to determine differences in growth patterns of distinct Crassostrea gigas stocks // Aquaculture Int. V. 27. Iss. 5. P. 1435. https://doi.org/10.1007/s10499-019-00396-0

  33. Tamayo D., Ibarrola I., Urrutia M.B., Navarro E. 2011. The physiological basis for inter-individual growth variability in the spat of clams (Ruditapes philippinarum) // Aquaculture. V. 321. Iss. 1–2. P. 113. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2011.08.024

  34. Tamayo D., Ibarrola I., Navarro E. 2013. Thermal dependence of clearance and metabolic rates in slow- and fast-growing spats of manila clam Ruditapes philippinarum // J. Comp. Physiol. B. V. 183. Iss. 7. P. 893. https://doi.org/10.1007/s00360-013-0764-1

  35. Tamayo D., Ibarrola I., Urrutxurtu I., Navarro E. 2014. Physiological basis of extreme growth rate differences in the spat of oyster (Crassostrea gigas) // Mar. Biol. V. 61. Iss. 7. P. 1627. https://doi.org/10.1007/s00227-014-2447-1

  36. Teixeira de Sousa J., Matias D., Joaquim S. et al. 2011. Growth variation in bivalves: New insights into growth, physiology and somatic aneuploidy in the carpet shell Ruditapes decussatus // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. V. 406. Iss. 1–2. P. 46. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2011.06.001

  37. Thiriot-Quiévreux C., Noel T., Bougrier S., Dallot S. 1988. Relationships between aneuploidy and growth rate in pair matings of the oyster Crassostrea gigas // Aquaculture. V. 75. Iss. 1–2. P. 89. https://doi.org/10.1016/0044-8486(88)90023-3

  38. Vialova O.Yu. 2020. Comparative morphological analysis of diploid and triploid oysters, Crassostrea gigas, farmed in the Black Sea // Turkish J. Vet. Animal Sci. V. 44. Iss. 3. P. 740. https://doi.org/10.3906/vet-1907-50

  39. Wang Z., Guo X., Allen S.K., Wang R. 1999. Aneuploid pacific oyster (Crassostrea gigas Thunberg) as incidentals from triploid production // Aquaculture. V. 173. Iss. 1. P. 347. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(98)00457-8

  40. Zouros E., Thiriot-Quievreux C., Kotoulas G. 1996. The negative correlation between somatic aneuploidy and growth in the oyster Crassostrea gigas and implications for the effects of induced polyploidization // Genetics Res. V. 68. Iss. 2. P. 109. https://doi.org/10.1017/S0016672300033991

Дополнительные материалы отсутствуют.

Инструменты

следующая статья выпуска предыдущая статья выпуска содержание выпуска

Биология внутренних вод

Архивы выпусков Информация о журнале Отправить рукопись в журнал