ЭНТОМОЛОГИЧЕСКОЕ ОБОЗРЕНИЕ, 100, 2, 2021

УДК 632.936.2: 632.952+631.544

ВЛИЯНИЕ ФУНГИЦИДА ЛУНА ТРАНКВИЛИТИ

НА ВРЕДНЫХ ЧЛЕНИСТОНОГИХ И ХИЩНЫХ КЛЕЩЕЙ

В ЗАЩИЩЕННОМ ГРУНТЕ

Е. Г. Козлова,**** О. В. Трапезникова*****

Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений

шоссе Подбельского, 3, С.-Петербург-Пушкин, 196608 Россия

*e-mail: suhoruchenkogalina@mail.ru, ** e-mail: galinaivanova-vizr@yandex.ru,

*** e-mail: biocontrol@vizr.spb.ru, **** e-mail: kategen_vizr@mail.ru,

***** e-mail: olvet@inbox.ru

Поступила в редакцию 15.12.2020 г.

После доработки 20.05.2021 г.

Принята к публикации 20.05.2021 г.

Оценка действия фунгицида Луна Транквилити на ряд вредителей культур защищенного

грунта (зеленая персиковая тля, обыкновенный паутинный клещ, оранжерейная белокрылка) и

на хищных клещей (Phytoseiulus persimilis, Amblyseius swirskii, Neoseiulus cucumeris) выявила

наряду с фунгицидной высокую акарицидную и афицидную эффективность этого препарата.

Применение этого полифункционального фунгицида в борьбе с рядом болезней растений в за-

щищенном грунте (серая гниль, мучнистая роса, альтернариоз) избавляет от необходимости

проведения дополнительных обработок против клещей или тлей, присутствующих на защища-

емых культурах. В случае повторного заселения растений обыкновенным паутинным клещом

для сдерживания развития вредителя можно выпускать хищного клеща фитосейулюса через

10 суток после обработки растений фунгицидом. Поскольку фунгицид не оказывает существен-

ного влияния на развитие оранжерейной белокрылки, через 7 суток после его применения целе-

сообразно выпускать в борьбе с этим вредителем хищных клещей рода Amblyseius.

Ключевые слова: защищенный грунт, фунгицид Луна Транквилити, обыкновенный паутинный

клещ, персиковая тля, оранжерейная белокрылка, хищные клещи, токсичность, длительность

действия.

DOI: 10.31857/S0367144521020015

Защищенный грунт представляет собой агроэкосистему, функционирование которой

полностью определяется деятельностью человека. Благодаря независимости от по-

годных условий, она характеризуется практически круглогодичным периодом веге-

тации растений путем созданием оптимальных условий для роста и развития сортов

выращиваемых культур, максимально приспособленных к гидротермическим ре-

жимам теплиц разных типов и особенностям современных технологий их возделы-

вания, которые базируются на использовании различных грунтов и способов полива,

249

соблюдении регламентов внесения поливной воды, подкормок и средств защиты от

вредных организмов (Иванова и др., 2011).

Эти же условия благоприятны и для развития вредных членистоногих и фито-

патогенов, сформировавших, несмотря на проводимые защитные мероприятия, специ-

фическую фитосанитарную обстановку в защищенном грунте. Комплекс фитофагов в

теплицах представлен более чем 30 видами, среди которых набольшее экономическое

значение имеют многоядные сосущие вредители, повреждающие большинство возде-

лываемых культур. К ним относятся обыкновенный паутинный клещ Tetranychus

urticae Koch, оранжерейная белокрылка Trialeurodes vaporariorum Westw., несколько

видов тлей (персиковая Myzus persicae (Sulz.), бахчевая Aphis gossypii Glov., обыкно-

венная картофельная Aulacorthum solani (Kalt.), большая картофельная Macrosiphum

euphorbiae (Thom.)) и трипсов (представители местной энтомофауны - табачный

Thrips tabaci Lind., розанный Thrips fuscipennis Hal. и разноядный Frankliniella intonsa

Tryb. трипсы, а также инвазионный вид - западный цветочный Frankliniella occidentalis

(Perg.)). К развитию на пасленовых культурах адаптировалось несколько видов совок

(огородная Mamestra oleracea (L.), капустная Mamestra brassicae (L.), пасленовая

Spodoptera exigua Hbn.) (Дорохова и др., 2003).

Из 50 видов фитопатогенов, выявленных в защищенном грунте, большинство выра-

щиваемых культур поражают возбудители корневых гнилей или увядания растений

разной этиологии (грибы родов Rhizoctona, Phythium, Fusarium, Verticillium), белой

(Sclerotinia sclerotiorum Mass.) и серой (Borytis cinerea Pers.) гнилей, аскохитоза

(Ascochyta melonys Pot.), переноспороза (Pseudoperenospora cubensis Rostowz.), ан-

тракноза (Colletotrichum lagenarum Ell. et A.) и альтернариоза (Alternaria cucumerina

(Ellis et Everh.) J. A. Elliott). Источниками этих инфекций служат семена, растительные

остатки или грунты. В последнее время усилилась вредоносность возбудителей муч-

нистой росы (грибы родов Erysiphe, Sphaerotheca и др.) и фитофтороза (Phytophthora

infestans De Bary), передающихся аэрогенным путем (Иванова и др., 2011).

Многолетнее интенсивное применение фосфорорганических препаратов, карба-

матов и пиретроидов в борьбе с вредителями в тепличных хозяйствах привело в 1980-

1990 гг. к развитию резистентности в их популяциях к большинству применяемых

средств и, соответственно, к резкому снижению их эффективности (Сухорученко и

др., 2008). Этому способствовал также завоз в теплицы с посадочным материалом

из-за рубежа высоко резистентных к пестицидам популяций таких вредителей, как за-

падный цветочный трипс и обыкновенный паутинный клещ (Иванова и др., 1991; Ива-

нова и др., 2004).

В связи с этим при разработке систем борьбы с вредителями культур в защищенном

грунте стали отдавать предпочтение использованию биологических средств (Пав-

люшин и др., 2001; Белякова, Павлюшин, 2013). Прежде всего перешли на применение

хищного клеща Рhytoseiulus persimilis Ath.-Henr. против обыкновенного паутинного

клеща; хищной галлицы Аphidoletes aphidimyza Rond. и паразитов сем. Aphidiidae

против тлей; паразита Encarsia formosa Gah. против оранжерейной белокрылки

(Чалков, 1985; Бегляров, Мешков, 1989; Бондаренко, Воронова, 1989; Тыщенко, 1989;

Ущеков, 1989). В борьбе с комплексом тлей, трипсов и с оранжерейной белокрылкой

были рекомендованы также микробиологические препараты на основе энтомопато-

генных грибов Beauveria bassiana Vuillemin (боверин), Verticillium lecanii Zimm. (вер-

тициллин) и токсинов почвенной бактерии из класса актиномицетов Streptomyces

250

avermitilis (ex Durg et al., 1978) Kim et Goodfellow, 2002 (фитоверм, акарин, вертимек).

Пиретроиды (талстар, препараты циперметрина) применяли только для ликвидаци-

онных обработок, обработок теплиц между оборотами культур и в конце их вегетации.

В последнее десятилетие значительно увеличились число и объемы применения ис-

пользуемых в защищенном грунте энтомофагов и акарифагов в связи с усовершен-

ствованием технологий их массового разведения и разработкой регламентов выпуска

не только в овощеводческих, но и в цветоводческих хозяйствах. Так, в борьбе с обык-

новенным паутинным клещом на розе стали широко использовать фитосейулюса

(Козлова, Моор, 2012). На различных культурах против комплекса сосущих вреди-

телей выпускают хищного клопа Nesidiocoris tenuis Reuter (Пазюк, 2007; Пазюк, Беля-

кова, 2009), а против оранжерейной белокрылки и трипсов - хищных клещей

Amblyseius swirskii Ath.-Henr. и Neoseiulus cucumeris (Oud.) (= Amblyseius cucumeris)

(Доброхотов, 2008; Мешков, Салобукина, 2013; Моор и др., 2019; Красавина, Трапез-

никова, 2020).

Поскольку в борьбе со многими видами фитопатогенов, несмотря на проводимые

профилактические мероприятия (раздельное выращивание овощных и цветочных

культур, поддержание оптимальных для культур гидротермических режимов теплиц,

выбраковка пораженных семян и растений), соблюдение основных элементов техно-

логий их возделывания и применение микробиологических препаратов (Алирин, Га-

маир, Фитолавин, Псевдобактерин и др.), часто оказывается необходимым приме-

нение фунгицидов. Особенно возросла вредоносность ряда возбудителей семенной и

аэрогенной инфекций при малообъемных технологиях выращивания тепличных

культур, использующих искусственные грунты (блоки из минеральной ваты, верми-

кулит, гродан и др.) (Иванова и др., 2011).

В настоящее время против нескольких видов гнилей, мучнистой росы, фитофтороза,

парши, антракноза и альтернариоза на ряде культур рекомендован новый фунгицид

Луна Транквилити (Государственный каталог…, 2019), применение которого в те-

плицах против серой гнили и альтернариоза томата, а также мучнистой росы розы

оказывает действие на вредителей (обыкновенный паутинный клещ, тли, оранже-

рейная белокрылка и др.) и на выпускаемых для их подавления энтомофагов. Для оп-

тимизации в теплицах фитосанитарной обстановки важно знать действие этого фунги-

цида на виды вредных и полезных членистоногих, сопутствующие фитопатогенам,

против которых он применяется.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА

Работа выполнялась с фунгицидом Луна Транквилити, КС (125 г/л флуапирама + 375 г/л пири-

метанила) производства компании «Байер КропСайенс АГ». Первый компонент препарата отно-

сится к химическому классу пиридилэтилбензамидов, блокирует транспорт электронов в

митохондриальном комплексе I, нарушая дыхание патогенов; второй компонент - к группе ани-

линпиримидинов, ингибирует у грибов синтез аминокислоты метионина, что угнетает прораста-

ние их мицелия. Фунгицид обладает трансламинарными свойствами, благодаря которым

оказывает высокое защитное и лечебное действие при ряде заболеваний различных культур.

В защищенном грунте он рекомендован для применения против серой гнили и альтернариоза

томата в нормах 0.8-1.0 л/га, которые в предварительных опытах оказались эффективными и

против мучнистой росы розы.

В совместных исследованиях лабораторий агроэкотоксикологии и биологической защиты рас-

тений ВИЗР с использованием стандартных токсикологических методов (Сухорученко и др.,

251

2008; Сухорученко и др., 2017) была проведена оценка действия фунгицида Луна Транквилити

на повреждающих многие культуры защищенного грунта обыкновенного паутинного клеща,

персиковую тлю, оранжерейную белокрылку, и выпускаемых для борьбы с ними хищных кле-

щей (фитосейулюс, Amblyseius swirskii и Neoseiulus cucumeris).

Токсичность фунгицида для членистоногих определяли путем опрыскивания из лабораторно-

го опрыскивателя (откалиброванного для этих целей пульверизатора) производственной концен-

трацией 0.1 % (из расчета расхода рабочей жидкости 1000 л/га) заселенных ими кормовых

растений или чашек Петри с кормовым субстратом клещей рода Amblyseius. Производственная

концентрация создавала в лабораторных условиях жесткий токсический фон, что позволяло вы-

являть возможное угнетающее влияние фунгицида на вредителей или их энтомофагов. Для уста-

новления сроков безопасного выпуска энтомофагов после опрыскивания растений фунгицидом

изучали также длительность его токсического действия путем подсадки подопытных особей на

обработанные растения с кормом или на кормовой субстрат через ряд суток после обработки.

В контрольных вариантах подопытных особей опрыскивали водой. Учеты численности выжив-

ших после обработки особей проводили через сутки и далее с интервалом в несколько дней в

течение развития 1-2 генераций членистоногих с помощью семи- или десятикратной лупы или

бинокуляра (в случае с клещами рода Amblyseius).

При оценке влияния фунгицида на обыкновенного паутинного клеща проводили обработку

фасоли сорта Краснопестрая в фазе первой пары настоящих листьев, предварительно заселен-

ной вредителем из расчета 10 имаго на каждый лист. Опыт ставили в 5 повторностях с одним

заселенным клещом растением в каждой. После обработки растения с клещом содержали в сад-

ках при оптимальных для его развития условиях (температура 27-30 °C, относительная влаж-

ность воздуха 50-60 %, длина дня 18 ч). Численность подвижных стадий развития клеща

учитывали на 1, 3, 5, 7, 10, 14 и 17-е сутки после обработки (т. е. на протяжении периода развития

трех неполных генераций вредителя).

Обработку зеленой персиковой тли проводили на бобах сорта Русские черные в фазе первых

двух настоящих листьев после подсадки на каждое растение по 30 самок (1 повторность). Опыт

закладывали в 5 повторностях. Обработанные растения с тлями содержали в садках при опти-

мальных для тлей развития условиях (температура 23-25 °C, относительная влажность воздуха

80-85 %, длина дня 18 ч). Учеты численности выживших тлей проводили на 1, 3, 5, 7, 10 и 14-е

сутки после обработки.

Влияние фунгицида Луна Транквилити на оранжерейную белокрылку оценивали путем опры-

скивания заселенных ею веток розы сорта Red Naomi, срезанных в цветоводческом хозяйстве

ОАО «Северная мечта» Выборгского р-на Ленинградской обл. Опыты ставили в 4 повторностях

(одна ветка розы в каждой). Перед обработкой подсчитали количество личинок и пупариев бело-

крылки на 4 листьях каждой заселенной ветки (= повторности опыта), расположенных в средней

части ветки. После обработки учитывали количество вылетевших имаго на 5, 7 и 10-е сутки

после обработки и далее с интервалом 2-4 суток до окончания их вылета (до 39 суток). На про-

тяжении учетного периода ветки розы содержали на стеллажах в оптимальных для развития

белокрылки условиях (температура 22-25 °C, длина дня 18 ч). Необходимая относительная

влажность воздуха до 90 % поддерживалась содержанием веток розы в сосудах с водой в сетча-

тых садках, укрытых сверху полиэтиленовыми чехлами для предотвращения их высыхания.

Изучение токсического действия фунгицида Луна Транквилити на хищного клеща фитосей-

улюса проводили путем опрыскивания заселенной обыкновенным паутинным клещом фасоли

сорта Краснопестрая в фазе 2 настоящих листьев. Опыт ставили в 7 повторностях (одно расте-

ние в каждой). По 7 имаго хищника подсаживали на каждое из обработанных растений сразу

после высыхания рабочей жидкости (через 2 ч) и на 1, 3, 5 и 7-е сутки после обработки. Учеты

численности акарифага проводили с интервалом 2-3 дня в течение 10 суток. Подопытных кле-

щей содержали при оптимальных для их развития условиях (температура 25-27 °C, относитель-

ная влажность воздуха не ниже 70 %, длина дня 18 ч).

252

При оценке токсичности фунгицида для хищных клещей Amblyseius swirskii и Neoseiulus

cucumeris опрыскиванию подвергали имаго вместе с кормовым субстратом в чашке Петри.

В качестве кормового субстрата, согласно разработанной в лаборатории биометода ВИЗР мето-

дике, использовали сухофруктового клеща (Carpoglyphus lactis L.), разводимого на пшеничных

отрубях «Здоровка» (Красавина и др., 2009). Начальный объем отрубей в каждой чашке Петри

составлял 10 см³ с численностью кормового клеща около 120 особей в 1 см³. Опыты закладывали

с каждым видом хищного клеща в 5 повторностях, в каждую из которых подсаживали по 20 има-

го (из расчета 8 самок и 2 самца на 10 особей). Через 2 часа после подсыхания обработанный

субстрат с хищными клещами пересыпали в стаканчики WELLA, помещали их в эксикаторы с

водой и закрывали влажной пленкой для поддержания необходимой влажности. Определение

длительности токсического действия фунгицида на хищных клещей проводили путем опрыски-

вания кормового субстрата в чашках Петри, его пересыпанием после подсыхания в стаканчики

WELLA и дальнейшим содержанием стаканчиков в эксикаторах с водой. Согласно программе

исследований, сразу после обработки и на 1, 3, 5, 7 и 10-е сутки после нее в стаканчики выпуска-

ли хищных клещей - по 20 имаго на повторность. Опыты ставили в 4 повторностях. Независимо

от типа опыта эксикаторы с клещами содержали в оптимальных для их развития условиях - тем-

пература 23-25 °C, относительная влажность воздуха 85-90 %, длина дня 18 ч. Учеты численно-

сти хищных клещей проводили на 1, 3, 5, 7 и 11-е сутки после их контакта с препаратом.

Показателями действия фунгицида на членистоногих были число выживших после обработки

особей относительно исходной численности и ее снижение с поправкой на контроль. Определя-

ли значения средней и ее ошибку в каждом варианте опыта, используя стандартные статистиче-

ские приемы.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Действие фунгицида Луна Транквилити

на вредителей культур защищенного грунта

Обыкновенный паутинный клещ Tetranychus urticae Koch

(Acariformes: Tetranychidae) - широко распространенный и вредоносный вид на

многих культурных и дикорастущих растениях. В защищенном грунте серьезно вредит

овощным (редис, огурец, укроп, сельдерей, шпинат), пасленовым (томат, баклажан,

перец) и цветочным (гвоздика, астра, роза и др.) культурам. В оптимальных условиях

развитие одного поколения клеща завершается за 7 дней, что позволяет ему разви-

ваться в теплицах в 18 поколениях и накапливаться в высокой численности. Питается

на нижней стороне листьев, вызывая их обесцвечивание, засыхание и опадение, что

приводит к потерям 40-60 % урожая ряда культур. В связи с высокой вредоносностью

обыкновенного паутинного клеща многие годы в борьбе с ним активно использовали

фосфорорганические соединения (антио, карбофос, Би-58 и др.), специфические ака-

рициды (акрекс, неорон, кельтан, омайт, демитан и др.), пиретроиды с акарицидным

действием (данитол, маврик, талстар) и авермектины (вертимек, фитоверм, акарин).

В последние десятилетия из-за развития в популяциях вредителя резистентности к

большинству применяемых препаратов и по санитарно-гигиеническим соображениям

в овощеводческих и цветоводческих тепличных комбинатах отказываются от приме-

нения в борьбе с ним химических средств и широко используют биологический метод

(биопрепараты битоксибациллин и тюрингин-2, клопов-полифагов ориуса и антоко-

риса, хищного клеща фитосейулюса).

Однако применение в теплицах пестицидов другого фитосанитарного назначения,

в частности, фунгицидов, не проходит бесследно для обыкновенного паутинного

клеща, так как под обработки попадают обширные его популяции, включающие

253

особей на разных стадиях развитии (яйцо, личинка, протонимфа, дейтонимфа, имаго).

Наблюдения выявили значительное снижение численности фитофага после опрыски-

вания заселенной вредителем фасоли фунгицидом Луна Транквилити (табл. 1), т. е.

у препарата было обнаружено наличие акарицидных свойств. В отличие от классиче-

ских акарицидов (акрекса, омайта, демитана и др.), токсическое действие фунгицида

на клеща было замедленным, что проявилось в снижении численности клеща на 44.8-

78.3 % относительно исходной с поправкой на контроль в течение первых трех суток

после обработки (см. табл. 1). К концу развития первой генерации (7-е сутки после

обработки) в обработанном фунгицидом варианте опыта присутствовали только еди-

ничные особи вредителя. Это не позволило клещу восстановить свою численность до

исходного уровня в период развития второй генерации и привело к его элиминации

в начале развития третьей генерации. За этот же период времени численность вреди-

теля в контрольном варианте увеличилась более чем в 2000 раз (см. табл. 1).

З ел ен ая п ер си ко ва я тл я M yzu s p e rc ic a e Su lz. (Homoptera:

Aphididae) - полиморфный вид, полифаг. В южных регионах страны развивается как

голоциклический (с половым размножением), гетероцийный (со сменой кормовых

растений) вид; там его первичные хозяева - персик, абрикос и миндаль, на которые

осенью оплодотворенные самки откладывает зимующие яйца. Весной тля мигрирует

на вторичных хозяев (различные культурные и сорные растения) и развивается на них

в ряде партеногенетических поколений. В регионах с умеренным или холодным кли-

матом, а также в защищенном грунте, зеленая персиковая тля развивается только пар-

теногенетически на различных культурных и сорных растениях, зимует в стадии ли-

чинки или имаго на растительных остатках и в отапливаемых помещениях. В теплицах

при оптимальных условиях для развития одной генерации персиковой тли требуется

10-13 дней и она дает за год более 20 генераций. Заселяет многие виды растений,

образуя большие колонии, и причиняет значительный вред томату, сладкому перцу,

баклажану, огурцу, зеленным и ряду цветочных культур. Повреждает все части рас-

тений, вызывая задержку их роста, деформацию и усыхание.

В борьбе с зеленой персиковой тлей, как и с обыкновенным паутинным клещом,

многие годы интенсивно применяли различные фосфорорганические, карбаматные и

пиретроидные инсектициды, а в последние годы - неоникотиноиды и авермектины.

При переходе на биологизированные системы защиты в борьбе с тлями, включая зе-

леную персиковую, в защищенном грунте были рекомендованы эффективные афидо-

фаги из отрядов сетчатокрылых (Chrysopa carnea Steph., Micromus angulatus (Steph.)),

двукрылых (Аphidoletes aphidimyza Rond.), полужесткокрылых (Orius laevigatus Fieb.,

Anthocoris nemorum (L.)), жесткокрылых (коровки Cycloneda limbifer Casey и Harmonia

axyridis (Pall.)), перепончатокрылых (Aphidius matricariae Hal., A. colemani Vier.,

Lysiphlebus testaceipes (Cres.)). Использование инсектицидов в борьбе с тлями было

резко ограничено, но они, как и обыкновенный паутинный клещ, могут попадать под

обработки фунгицидами.

Результаты оценки действия фунгицида Луна Транквилити на зеленую персиковую

тлю свидетельствуют о наличии у него наряду с акарицидной также афицидной актив-

ности (табл. 2), проявление которой, как и в случае с обыкновенным паутинным

клещом, замедлено. Только к завершению развития полной генерации вредителя

(14-е сутки после обработки) токсический эффект фунгицида достигал высокого пока-

зателя - 92.3 % (см. табл. 2).

254

Таблица 1. Токсичность фунгицида Луна Транквилити для обыкновенного паутинного клеща

Tetranychus urticae Koch

Средняя численность клеща на лист после

обработки (в скобках - численность

Сутки

Снижение численности

относительно исходной*, %)

после

относительно исходной

обработки

с поправкой на контроль, %

Фунгицидом

Водой (контроль)

(1%-ная концентрация)

1-е

4.8 ± 0.6 (38.0)

8.7 ± 0.86 (87.0)

44.8

3-и

1.8 ± 0.57 (18.0)

8.3 ± 0.68 (83.0)

78.3

5-е

1.9 ± 0.18 (9.0)

8.4 ± 1.2 (84.0)

89.3

7-е

0.4 ± 0.22 (4.0)

7.7 ± 0.62 (77.0)

94.8

10-е

0.5 ± 0.24 (5.0)

33.4 ± 5.9 (334.0)

98.5

14-е

0.63 ± 0.38 (6.3)

27.1 ± 7.4 (271.0)

97.7

17-е

0 (0)

217 ± 10.8 (2170)

100

П р и м е ч а н и е. * Численность до обработки - 10 особей на лист.

Таблица 2. Токсичность фунгицида Луна Транквилити для персиковой тли Myzus persicae Sulz.

Средняя численность тли на лист после обработки (в

Сутки

скобках - численность относительно исходной*, %)

Снижение численности

после

относительно исходной

обработки

Фунгицидом

с поправкой на контроль, %

Водой (контроль)

(1%-ная концентрация)

1-е

28.6 ± 3.1 (95.3)

27.8 ± 3.3 (92.7)

+ 3.0

3-и

30.6 ± 0.6 (102.0)

39.2 ± 3.9 (127.3)

22.0

5-е

36.2 ± 1.3 (120.7)

67.2 ± 2.8 (224.0)

46.1

7-е

63.6 ± 2.8 (212.0)

141.8 ± 4.8 (472.7)

55.2

10-е

20.2 ± 1.4 (67.3)

134.6 ± 4.6 (448.7)

85.0

14-е

7.2 ± 2.2 (24.0)

93.6 ± 3.6 (312.0)

92.3

П р и м е ч а н и е. * Численность до обработки - 30 особей на лист.

Оранжерейная, или тепличная белокрылка Trialeurodes

v a p o ra rio ru m We stw. (Homoptera: Aleyrodidae) - широко распространенный

тропический вид американского происхождения, полифаг. В России он обитает в за-

щищенном грунте, но в южных регионах в летние месяцы может мигрировать из

теплиц в окружающую среду и размножаться на различных культурах, однако не пере-

носит зимовки в открытом грунте. Развитие одного поколения оранжерейной бело-

крылки в условиях теплиц протекает за 17-32 дня. В течение года в защищенном

грунте она дает до 12 поколений и, накапливаясь в высокой численности во второй

половине сезона, причиняет вред томату, огурцу, многим зеленным и цветочным куль-

турам. Вредят растениям личинки, высасывающие сок растений и загрязняющие их

сахаристыми выделениями, на которых поселяются сажистые грибки. Оранжерейная

255

белокрылка также переносит ряд вирусных заболеваний (желтуха тыквенных, гвоз-

дичных и др.).

В борьбе с оранжерейной белокрылкой ранее интенсивно применяли фосфорорга-

нические соединения (карбофос, Би-58, актеллик), пиретроиды (препараты дельтаме-

трина, перметрина, циперметрина), неоникотиноиды (препараты имдаклоприда и тиа-

метоксама), ингибитор синтеза хитина апплауд, ювеноид адмирал и др. Сейчас

успешно используют ряд хищных и паразитических членистоногих (специфический

паразит из сем. Aphelinidae - Encarsia formosa Gah., хищные клопы сем. Miridae -

Nesidiocoris tenuis Reuter, Macrolophus pygmaeus H.-S., а также хищные клещи

Amblyseius swirskii и Neoseiulus cucumeris).

Как и другие виды фитофагов, оранжерейная белокрылка может попадать под обра-

ботки фунгицидом Луны Транквилити. Оценка его действия на развитие насекомого

путем опрыскивания веток розы, заселенных преимагинальными стадиями развития

оранжерейной белокрылки, не выявила существенного влияния на ее численность.

Об этом свидетельствуют данные сравнительной динамики лёта имаго в обрабо-

танном токсикантом и контрольном вариантах (табл. 3). Так, в течение 19 суток после

опрыскивания наблюдалось синхронное увеличение числа вылетевших имаго из обра-

Таблица 3. Токсичность фунгицида Луна Транквилити для тепличной белокрылки Trialeurodes

vaporariorum Westw.

Средняя численность белокрылки на лист после

обработки (в скобках - численность

Снижение численности

Сутки после

относительно исходной*, %)

относительно исходной

обработки

с поправкой на контроль, %

Фунгицидом

Водой (контроль)

(1%-наяконцентрация)

5-е

1.6 ± 0.8 (2.9)

2.6 ± 0.23 (2.2)

+31.0

7-е

5.3 ± 1.7 (9.5)

10.2 ± 2.6 (8.4)

+13.0

10-е

9.6 ± 1.6 (17.2)

22.4 ± 2.5 (18.5)

1.3

12-е

15.2 ± 1.51 (27.2)

34.2 ± 2.33 (28.3)

3.9

14-е

19.8 ± 1.37 (35.6)

48.2 ± 2.19 (39.8)

10.6

19-е

27.9 ± 1.48 (50.0)

65.8 ± 1.83 (54.4)

8.1

21-е

28.9 ± 1.27 (51.8)

80.8 ± 1.59 (66.8)

22.5

24-е

30.4 ± 1.25 (54.5)

84.1 ± 1.53 (69.5)

21.6

26-е

30.8 ± 1.26 (55.2)

85.1 ± 1.24 (70.3)

21.5

28-е

30.9 ± 1.24 (55.4)

86.1 ± 1.47 (71.2)

22.2

31-е

31.1 ± 0.70 (55.7)

86.4 ± 1.48 (71.4)

22.0

33-и

31.2 ± 1.24 (55.9)

86.4 ± 1.48 (71.4)

21.7

36-е

31.3 ± 1.23 (56.1)

86.4 ± 1.48 (71.4)

21.4

39-e

31.5 ± 1.84 (56.5)

86.4 ± 1.48 (71.4)

21.0

П р и м е ч а н и е. * До обработки среднее число личинок и пупариев белокрылки на лист в опыте

с фунгицидом - 55.8, в контроле - 121. После обработки в обоих вариантах опыта учитывали число

вылетевших имаго.

256

зующихся пупариев в обоих вариантах опыта. При этом снижение численности имаго

в обработанном варианте относительно контроля в течение данного учетного периода

колебалось от 2.2 до 14.6 % (см. табл. 3). Судя по полученным результатом, на 21-28-е

сутки после обработки число вылетавших имаго в обоих вариантах опыта стабилизи-

ровалось, достигнув практически максимального уровня (см. табл. 3). Это свидетель-

ствовало о завершении развития поколения вредителя, хотя единичные особи имаго

вылетали в последующие 10 суток в обоих вариантах. В этот период разрыв в количе-

стве вылетавших имаго между вариантами опыта увеличился, в результате чего на-

блюдалось снижение их численности на 24.4-25.8 % в варианте с фунгицидом относи-

тельно контроля (см. табл. 3). Несмотря на то, что токсичность фунгицида для

тепличной белокрылки оказалась значительно слабее, чем для зеленой персиковой тли

и обыкновенного паутинного клеща, действие токсиканта на развитие этого вредителя

также было замедленным.

Действие фунгицида Луна Транквилити на хищных клещей, выпускаемых

в защищенном грунте для борьбы с обыкновенным паутинным

клещом и тепличной белокрылкой

Хищные клеши Amblyseius swirskii и Neoseiulus cucumeris

(Parasitiformes: Phytoseiidae) - интродуцированные виды, применяются в защищенном

грунте на овощных и декоративных культурах против тепличной белокрылки и запад-

ного цветочного трипса Frankliniella occidentalis (Perg.). В оптимальных условиях для

завершение полного цикла их развития требуется 8 дней. Клещей в теплицах вносят

в очаги вредителей, распределяя на поверхности растений сыпучий пищевой субстрат

с хищными клещами один раз в две недели в течение 1-3 месяцев до достижения не-

обходимого результата. Иногда для опережения роста численности вредителей разве-

шивают на растениях бумажные пакетики с хищными клещами в отрубях, из которых

они выходят через небольшие отверстия и расселяются по теплице. Независимо от

способа колонизации хищные клещи могут попадать под обработки фунгицидом Луна

Транквилити.

Результаты оценки действия фунгицида на этих акарифагов подтвердили наличие

у него высокой акарицидной активности, так как он вызывал гибель 90.6-100 %

клещей обоих видов на 10-е сутки после обработки (табл. 4). Были также выявлены

незначительные различия между видами клещей в чувствительности к токсическому

действию фунгицида, что проявилось в разной скорости наступления их гибели. Так,

у Amblyseius swirskii наблюдалось снижение численности на 83 % по сравнению с кон-

тролем в течение первых трех суток после обработки, в то время как гибель

N. cucumeris была более замедленной и аналогичное снижение его численности насту-

пало практически к завершению развития генерации (к 7-м суткам), и даже к 14-м

суткам после обработки не наблюдалось 100%-ной гибели особей этого вида

(см. табл. 4).

Различия между изучаемыми видами клещей в чувствительности к фунгициду Луна

Транквилити подтвердились и при изучении длительности его действия на акари-

фагов. При подсадке A. swirskii в обработанный кормовой субстрат в день обработки

препаратом и далее на 1, 3 и 5-е сутки после нее численность акарифага снизилась по

сравнению с контролем на 84-42.6 % (табл. 5). В те же сроки при подсадке клеща

N. cucumeris в обработанный кормовой субстрат снижение его численности по срав-

257

Таблица 4. Токсичность фунгицида Луна Транквилити для хищных клещей

Средняя численность клеща на лист после

обработки (в скобках - численность относительно

Снижение численности

Сутки после

исходной*, %)

относительно исходной

обработки

с поправкой на контроль, %

Фунгицидом

Водой (контроль)

(1%-ная концентрация)

Amblyseius swirskii Ath.-Henr.

1-е

11.2 ± 0.96 (56)

20 (100)

44.0

3-и

3.4 ± 0.27 (17)

20 (100)

83.0

5-е

2.8 ± 0.22 (14)

20 (100)

86.0

7-е

1.0 ± 0.50 (5)

20 (100)

95.0

10-е

0 (0)

28.2 ± 1.29 (141)

100

14-е

0 (0)

51.6 ± 1.68 (258)

100

Neoseiulus cucumeris (Oud.)

1-е

15.6 ± 1.15 (78)

20 (100)

22.0

3-и

6.0 ± 0.94 (30)

20 (100)

70.0

5-е

6.6 ± 1.20 (33)

20 (100)

67.0

7-е

6.6 ± 0.97 (33)

41.8 ± 1.29 (209)

84.2

10-е

4.4 ± 0.57 (22)

46.6 ± 0.67 (233)

90.6

14-е

1.0 ± 0.71 (5.0)

50.2 ± 1.29 (251)

95.0

П р и м е ч а н и е. * Численность до обработки - 20 особей на лист.

нению с контролем составляло 71.7-22.9 % (табл. 6). Однако после подсадки обоих

видов клещей в кормовой субстрат на 7-е и 10-е сутки после его обработки показатели

снижения их численности становятся близкими к этому показателю в контроле. Эти

данные свидетельствуют о том, что, несмотря на высокую токсичность фунгицида

Луна Транквилити при непосредственном опрыскивании хищных клещей вместе

с кормом, оптимальным сроком выпуска клещей в теплицы являются 7-е сутки после

применения фунгицида.

Х ищн ый к лещ Ph y to se iu lu s p e rsim ilis A th . -H e n r. (Parasitoformes:

Phytoseiidae) - тропический вид, который широко применяется в защищенном грунте

для борьбы с паутинными клещами. В отличие от других видов фитосейид, он харак-

теризуется быстрыми темпами развития. В оптимальных условиях продолжитель-

ность развития одного поколения составляет 5-6 суток. Как тропический вид, не име-

ющий в своем цикле диапаузы, он развивается в защищенном грунте круглый год.

Phytoseiulus persimilis отличается большой прожорливостью. Одна самка может унич-

тожить за сутки до 24 подвижных особей и 30 яиц обыкновенного паутинного клеща.

На протяжении многих лет фитосейулюса интенсивно используют в защищенном

грунте для борьбы с обыкновенным паутинным клещом на многих овощных и цве-

точных культурах, при обработках которых препаратами разного фитосанитарного на-

значения токсическому воздействию подвергаются практически все стадии развития

хищника.

258

Таблица 5. Длительность токсического действия фунгицида Луна Транквилити на хищного

клеща Amblyseius swirskii Ath.-Henr.

Время

Средняя численность акарифага после подсадки на

Снижение

подсадки

обработанный кормовой субстрат по суткам учетов (в скобках -

численности

акарифага

средняя численность относительно исходной*, %)

с поправкой

после

на контроль

обработки

(10-е сутки),

кормового

1-е

3-и

5-е

7-е

10-е

субстрата

Фунгицидом

Через 2 часа

7.5 ± 0.65

4.5 ± 0.29

3.0 ± 0.41

84.0

(37.5)

(22.5)

(15.0)

На следующие

12.5 ± 0.65

10.8 ± 0.63

7.8 ± 0.48

6.8 ± 0.48

63.8

сутки

(100)

(62.5)

(54.0)

(39.0)

(34.0)

На 3-и сутки

13.5 ± 0.96

9.5 ± 1.19

7.5 ± 0.65

60.1

(100)

(67.5)

(47.5)

(37.5)

На 5-е сутки

14.8 ± 1.11

11.3 ± 0.48

10.8 ± 0.48

42.6

(100)

(74.0)

(56.5)

(54.0)

На 7-е сутки

17.5 ± 0.65

16.8 ± 0.63

10.6

(100)

(87.5)

(84)

На 10-е сутки

19.0 ± 0.15

18.8 ± 0.48

18.8 ± 0.25

18.5 ± 0.29

(100)

(95.0)

(94.0)

(92.5)

Водой (контроль)

Через 2 часа

18.8 ± 0.63

18.8 ± 0.48

(100)

(94.0)

П р и м е ч а н и е. * В каждую повторность опыта подсаживали по 20 особей акарифага.

Учитывая высокую акарицидную активность фунгицида Луна Транквилити в отно-

шении обыкновенного паутинного клеща и хищных клещей рода Amblyseius, мы пред-

положили, что он также будет токсичен и для фитосейулюса при прямом опрыски-

вании его особей. В этой связи для установления сроков его безопасного выпуска

в очаги обыкновенного паутинного клеща в теплицах определяли длительность токси-

ческого действия фунгицида на имаго фитосейулюса.

Результаты выявили умеренную токсичность фунгицида для имаго хищника при их

подсадке на обработанные растения. Так, в течение первых суток его численность

снижалась по сравнению с контролем на 59.0-60.3 %, на 3-и и 5-е сутки - на 43.1-

46.9 %, на 7-е сутки - на 35 %? (табл. 7). Независимо от срока подсадки имаго на обра-

ботанные растения токсическое действие фунгицида на них проявлялось постепенно,

что прослеживается при анализе изменений численности клеща этого вида на протя-

жении 10 суток наблюдений. В течение первых трех суток после его подсадки на обра-

ботанную фунгицидом поверхность она снижается, но к седьмым суткам увеличива-

ется, что объясняется появлением преимагинальных стадий развития хищника, и

снова снижается к 10-м суткам после контакта личинок и нимф с обработанной по-

259

Таблица 6. Длительность токсического действия фунгицида Луна Транквилити на хищного

клеща Neoseiulus cucumeris (Oud.)

Время подсадки

Средняя численность акарифага после подсадки на

Снижение

акарифага

обработанный кормовой субстрат по суткам учетов

численности

после

(в скобках - средняя численность относительно исходной*, %)

с поправкой

обработки

на контроль

кормового

(10-е сутки),

1-е

3-и

5-е

7-е

10-е

субстрата

Фунгицидом

Через 2 часа

7.8 ± 0.85

5.8 ± 0.85

5.3 ± 0.63

71.8

(39.0)

(29.0)

(26.5)

На следующие

10.0 ± 0.91

8.8 ± 0.85

8.3 ± 0.63

55.9

сутки

(100)

(50.0)

(44.0)

(41.5)

На 3-и сутки

14.3 ± 0.85

12.8 ± 0.48

11.3 ± 0.48

39.9

(100)

(71.5)

(64.0)

(56.5)

На 5-е сутки

17.0 ± 0.41

15.8 ± 0.63

15.3 ± 0.63

14.5 ± 0.29

22.9

(100)

(85.0)

(79.0)

(76.5)

(72.5)

На 7-е сутки

17.3 ± 0.85

17.3 ± 0.48

16.8 ± 0.48

10.6

(100)

(86.5)

(86.4)

(84.0)

На 10-е сутки

19.0 ± 0.41

18.8 ± 0.25

18.5 ± 0.29

1.6

(100)

(95.0)

(94.0)

(92.5)

Водой (контроль)

Через 2 часа

19.3 ± 0.48

18.8 ± 0.3

18.8 ± 0.25

(100)

(96.5)

(94.0)

П р и м е ч а н и е. * В каждую повторность опыта подсаживали по 20 особей акарифага.

верхностью (см. табл. 7). Полученные данные позволяют заключить, что безопасным

сроком выпуска фитосейулюса в очаги обыкновенного паутинного клеща после при-

менения фунгицида будут предположительно 10-е сутки.

На основании полученных данных была установлена степень опасности фунгицида

Луна Транквилити для отдельных видов хищных клещей с помощью специально раз-

работанных шкал, в которых приведены показатели его токсичности или длитель-

ности действия на имаго, выраженные в оценочных баллах (Сухорученко и др., 2017).

Согласно интегральной шкале, обобщающей таким образом результаты токсического

действия изучаемого фунгицида на хищных клещей по двум показателям, он отно-

сится к опасным (IV класс опасности) для них препаратам (табл. 8).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В результате оценки действия фунгицида Луна Транквилити, применяемого против

болезней ряда овощных и цветочных культур защищенного грунта (серая гниль, аль-

тернариоз, мучнистая роса), на зеленую персиковую тлю, обыкновенного паутинного

клеща, оранжерейную белокрылку и хищных клещей (фитосейулюса, Amblyseius

swirskii и Neoseiulus cucumeris), выпускаемых в теплицы в борьбе с вредителями, вы-

явлено наличие у него высокой акарицидной и афицидной активности и слабой инсек-

260

Таблица 7. Длительность токсического действия фунгицида Луна Транквилити на хищного

клеща Phytoseiulus persimilis Ath.-Henr.

Средняя численность акарифага после подсадки на

Время подсадки

Снижение

обработанный кормовой субстрат по суткам учетов

акарифага после

численности

(в скобках - средняя численность относительно

обработки

с поправкой

исходной*, %)

кормового

на контроль

субстрата

(10-е сутки), %

1-е

3-и

7-е

10-е

Фунгицидом

6.3 ± 1.27

5.7 ± 0.87

5.4 ± 0.97

3.4 ± 0.14

Через 2 часа

59.0

(90.0)

(81.4)

(77.1)

(48.6)

5.9 ± 0.67

2.0 ± 0.73

5.3 ± 0.43

3.3 ± 0.73

На следующие сутки

60.2

(84.3)

(28.5)

(75.7)

(41.7)

6.9 ± 1.37

6.0 ± 0.77

6.7 ± 0.42

4.7 ± 0.43

На 3-и сутки

43.1

(98.6)

(85.7)

(95.7)

(67.1)

5.3 ± 0.73

3.1 ± 0.7

7.7 ± 0.32

4.4 ± 0.34

На 5-е сутки

46.9

(75.7)

(44.3)

(110.0)

(62.9)

5.3 ± 0.73

3.7 ± 0.71

6.0 ± 0.38

5.4 ± 0.47

На 7-е сутки

35.0

(75.7)

(52.9)

(85.7)

(77.1)

Водой (контроль)

Через 2 часа

6.9 ± 0.15

6.7 ± 0.66

13.9 ± 0.5

8.3 ± 0.43

(98.6)

(95.7)

(198.6)

(118.6)

П р и м е ч а н и е. * В каждую повторность опыта подсаживали по 20 особей акарифага.

Таблица 8. Интегральная шкала степени опасности фунгицида Луна Транквилити для хищных

клещей, выпускаемых в защищенном грунте для борьбы с вредителями овощных и цветочных

культур

Оценочный балл степени

опасности фунгицида

по показателю

Сумма

Класс опасности

Вид хищного клеща

оценочных

фунгицида

длительность

балов

по 2 показателям*

токсичность

токсического

для имаго

действия

на имаго

Phytoseiulus persimilis Ath.-Henr.

IV - опасен

Amblyseius swirskii Ath.-Henr.

IV - опасен

Neoseiulus cucumeris (Oud.)

IV - опасен

П р и м е ч а н и е. * Градации класса опасности пестицида по 2 показателям: 2 балла - I класс

(не опасен), 3 и 4 балла - II класс (малоопасен), 5-8 - III класс (среднеопасен), 9-16 - IV класс (опасен).

261

тицидной активности в отношении оранжерейной белокрылки. Во всех случаях про-

явление токсического действия фунгицида на членистоногих было замедленным и

максимальный эффект достигался к концу развития генерации того или иного вида,

что, по-видимому, связано с постепенной гибелью как имаго, так и рождающихся из

отложенных яиц личинок по мере их контакта с обработанной токсикантом поверх-

ностью.

Можно предположить, что токсическое действие фунгицида Луна Транквилити на

такие нецелевые объекты, как клещи и тли, связано с одним из входящих в его состав

компонентов - флуапирамом, который, подобно фитопатогенам, нарушает процесс

дыхания членистоногих и приводит к их гибели. Таким образом, фунгицид Луна

Транквилити может быть отнесен согласно классификации IRAC к группе так называ-

емых METI акарицидов и инсектицидов, нарушающих дыхание членистоногих из-за

блокирования транспорта электронов в комплексе I (IRAC, 2014). В группу METI

токсикантов входят такие известные акарициды, как диметан (действующее вещество

- феназахин), ортус (фенпироксимат), санмайт (действующее вещество - пиридабен)

и масай (тебуфенпирад), рекомендованные в борьбе с клещами, вредящими яблоне

и другим культурам.

Поскольку фунгицид Луна Транквилити представляет собой препарат комплексного

фитосанитарного действия, эффективный не только против целевого объекта, но и

против заселяющих растения одновременно с ним клещей и тлей, проведение допол-

нительных защитных мероприятий против этих вредителей нецелесообразно. Однако

в случае повторного заселения растений обыкновенным паутинным клещом для пре-

дотвращения его массового развития можно использовать хищного клеща фитосей-

улюса, которого безопасно выпускать на 10-е сутки после обработки растений фунги-

цидом. При заселении обработанных фунгицидом растений оранжерейной

белокрылкой безопасным сроком выпуска хищных клещей рода Amblyseius в борьбе с

ней будут 7-е сутки после применения фунгицида. Всё это будет способствовать опти-

мизации фитосанитарной обстановки в тепличных комплексах, где выращиваются

овощные и цветочные культуры.

ФИНАНСИРОВАНИЕ

Работа была выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда

(грант № 20-66-47010).

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Бегляров Г. А., Мешков Ю. И. 1989. Усовершенствование методики применения фитосейулюса. В кн.:

Н. А. Филиппова (ред.). Биологический метод борьбы с вредителями овощных культур. Сборник ста-

тей. М.: ВО Агропромиздат, с. 34-42.

Белякова Н. А., Павлюшин В. А. 2013. Концепция развития биологической защиты растений. В кн.:

В. А. Павлюшин (ред.) Фитосанитарная оптимизация агроэкосистем. Материалы 3-го Всероссийского

съезда по защите растений в 3 томах. Т. 2. СПб. (Пушкин): ВИЗР РАСХН, с. 7-10. https://www.elibrary.

ru/item.asp?id=23470177&pff=1

Бондаренко Н. В., Воронова О. В. 1989. Галлица афидимиза: методика массового разведения и применения

против тлей на тепличных овощных культурах. В кн.: Н. А. Филиппова (ред.). Биологический метод

борьбы с вредителями овощных культур. Сборник статей. М.: ВО Агропромиздат, с. 8-19.

Доброхотов С. А. 2008. Совершенствование методов разведения и применения хищных клещей из рода

Amblyseius для борьбы с трипсами в теплицах. Автореферат диссертации на соискание ученой степе-

ни кандидата биологических наук. СПб.: ВИЗР, 19 с.

262

Дорохова Г. И., Верещагина А. Б., Великань В. С., Сорокина А. П., Красавина Л. П. и др. 2003. Определитель

вредных и полезных беспозвоночных закрытого грунта. СПб.: ВИЗР, ООО «Инновационный центр

защиты растений», 172 с.

Иванова Г. П., Великань В. С., Буркова Л. А., Белых Е. Б. 1991. Западный цветочный трипс. Защита и каран-

тин растений 6: 61-62.

Иванова Г. П., Баринов М. К., Ложкина Е. И. 2004. Проблема защиты роз от обыкновенного паутинного

клеща в условиях новой технологии выращивания. Химический метод защиты растений. В кн.:

Состояние и перспективы повышения экологической безопасности: Материалы международной

научно-практической конференции. СПб.: ВИЗР, с. 137-138.

Иванова Г. П., Асякин Б. П., Белых Е. Б., Раздобурдин В. А., Гришечкина Л. Д, Фоминых Т. С., Красавина

Л. П., Новикова И. И. 2011. Технология управления численностью вредных организмов овощных

культур тепличных агроценозов на основе интеграции методов и средств защиты растений. (Методи-

ческие рекомендации). М.: «Росинформагротех», 204 с.

Козлова Е. Г., Моор В. В. 2012. Применение Phytoseiulus persimilis против паутинного клеща на разных

сортах роз. Защита и карантин растений 12: 12-19

Красавина Л. П., Белякова Н. А., Зуева Л. И., Осемеж Н. С. и др. 2009. Способ разведения хищного клеща

амблисейуса Amblyseius cucumeris Oud. Патент на изобретение RU 2351126.

Красавина Л. П., Трапезникова О. В. 2020. Лабораторная оценка пригодности разных видов кормовых кле-

щей для разведения Amblyseius swirskii и Neoseiulus cucumeris (Mesostigmata, Phytoseiidae). Вестник

защиты растений 103 (3): 177-181. doi: 10.31993/2308-6459-2020-103-3-13943

Красавина Л. П., Иванова Г. П., Сухорученко Г. И., Моор В. В., Козлова Е. Г. 2019. Влияние фунгицида Луна

Транквилити на хищных клещей рода Amblyseius. В кн.: Ф. Б. Ганнибал и др. (ред.) IV Всероссийский

съезд по защите растений с международным участием «Фитосанитарные технологии в обеспечении

независимости и конкурентоспособности АПК России». Сборник тезисов докладов. СПб.: ФГБНУ

ВИЗР, с. 298.

Мешков Ю. И., Салобукина Н. Н. 2013. Использование хищного клеща для защиты тепличных культур от

калифорнийского трипса. Гавриш 2: 20-23.

Моор В. В., Красавина Л. П., Козлова Е. Г. 2019. Опыт применения хищных клещей рода Amblyseius для за-

щиты культуры розы от белокрылки в теплицах. В кн.: Ф. Б. Ганнибал и др. (ред.) IV Всероссийский

съезд по защите растений с международным участием «Фитосанитарные технологии в обеспечении

независимости и конкурентоспособности АПК России». Сборник тезисов докладов. СПб.: ФГБНУ

ВИЗР, с. 143.

Павлюшин В. А., Воронин К. Е., Красавина Л. П., Асякин Б. П., Раздобурдин В. А. 2001. Использование

энтомофагов в биологической защите растений в теплицах России. Труды Русского энтомологическо-

го общества 72: 16-31. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=9291645

Пазюк И. М. 2007. Оценка хищного клопа Nesidiocoris tenuis Reuter (Heteroptera, Miridae) в качестве энтомо-

фага комплекса сосущих вредителей для закрытого грунта. СПб.: Информационный бюллетень ВПРС

МОББ 38: 183-188.

Пазюк И. М., Белякова Н. А. 2009. Технологический регламент на производство и применение незидиокори-

са Nesidiocoris tenuis Reuter (сем. Miridae, Heteroptera). В кн.: Биотехнологии создания биологических

средств защиты растений на основе энтомофагов. СПб.: ВИЗР, с. 4-23.

Сухорученко Г. И., Иванова Г. П., Козлова Е. Г., Красавина Л. П., Васильев С. В., Белякова Н. А. 2001. Оцен-

ка степени опасности биопрепаратов для полезных членистоногих в защищенном грунте (Методиче-

ские рекомендации). СПб.: ВИЗР, ООО «Инновационный центр защиты растений», 22 с.

Сухорученко Г. И., Долженко В. И., Иванова Г. П., Буркова Л. А., Белых Е. В., Баринов М. К., Ложкина

Е. И. 2008. Технологии и методы оценки побочных эффектов от пестицидов (на примере преодоления

резистентности вредителей культур защищенного грунта к пестицидам). СПб.: ВИЗР, ООО «Иннова-

ционный центр защиты растений», 66 с.

Сухорученко Г. И., Белякова Н. А., Иванова Г. П., Козлова Е. Г., Пазюк И. М., Красавина Л. П. 2017. Методи-

ческие рекомендации по оценке действия пестицидов на хищных и паразитических членистоногих,

выпускаемых в защищенном грунте. СПб.: ВИЗР, 48 с.

Тыщенко И. И. 1989. Применение энкарзии на томатах. В кн.: Н. А. Филиппова (ред.) Биологический метод

борьбы с вредителями овощных культур. Сборник статей. М.: ВО Агропромиздат, с. 28-30.

Ущеков А. Т. 1989. Эффективность биологических средств в борьбе с бахчевой тлей на огурцах. В кн.:

Н. А. Филиппова (ред.) Биологический метод борьбы с вредителями овощных культур. Сборник ста-

тей. М.: ВО Агропромиздат, с. 19-27.

Чалков А. А. 1985. Биологическая борьба с обыкновенным паутинным клещом. (В кн.: Биологическая борь-

ба с вредителями овощных культур защищенного грунта. М.: Россельхозиздат, с. 3-28.

Чалков А. А. 1986. Биологическая борьба с вредителями овощных культур защищенного грунта М.: Россель-

хозиздат, 93с.

IRAC (The Insecticide Resistance Action committee). 2014. Mode of Action. Classification. Brochure. Fourth

Edition. 20 p.

263