ЖУРНАЛ ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ, 2019, том 55, № 4, с. 608-614
УДК 547.91
ФОСФОРИЛИРОВАННЫЕ ГЛИКОКОНЪЮГАТЫ
НА ОСНОВЕ ДИТЕРПЕНОИДА ИЗОСТЕВИОЛА,
D-АРАБИНОФУРАНОЗЫ И D-РИБОФУРАНОЗЫ
© 2019 г. Р. Р. Шарипова, М. Г. Беленок, И. Ю. Стробыкина, В. Е. Катаев*
ФГБУН «Институт органической и физической химии им. А.Е. Арбузова», ФИЦ «Казанский научный центр РАН»,
420029, Россия, Республика Татарстан, г. Казань, ул. Академика Арбузова 8
*e-mail: kataev@iopc.ru
Поступила в редакцию 5 апреля 2018 г.
После доработки 10 февраля 2019 г.
Принята к публикации 19 февраля 2019 г.
Из дитерпеноида изостевиола
(16-оксо-энт-бейеран-19-овая кислота), полученного кислотным
гидролизом суммы гликозидов растения Stevia rebaudiana, в три стадии были синтезированы первые
представители фосфорилированных гликоконъюгатов этого дитерпеноида с D-арабинофуранозой и D-
рибофуранозой. На первой стадии реакцией изостевиола с метил-5-О-п-тозил-2,3-ди-О-бензоил-D-
рибофуранозидом и арабинофуранозидом получили гликоконъюгаты, в которых изостевиол был
соединен с углеводным остатком по атому С5. На второй стадии аномерная метоксильная группа
гликоконъюгатов была заменена на атом брома с образованием 2,3-ди-О-бензоил-D-рибофуранозил- и
2,3-ди-О-бензоил-D-арабинофуранозилбромидов, которые на третьей стадии реакцией с
дибутилфосфатом были превращены в целевые фосфорилированные гликоконъюгаты.
Ключевые слова: изостевиол, арабинофураноза, рибоза, гликотерпеноиды, гликоконъюгаты, гликозиды.
DOI: 10.1134/S0514749219040165
В качестве стартовой платформы для создания
тевиола [17], бетулина [18, 19] и аллобетулина [20]
новых терапевтических агентов широко
с различными моносахаридами, мы получили
используются вторичные метаболиты, извлекаемые
первые фосфорилированные гликоконъюгаты
из разнообразных природных источников. К их
изостевиола с D-арабинофуранозой и D-рибо-
числу относится дитерпеноид изостевиол 9 (16-
фуранозой.
оксо-энт-бейеран-19-овая кислота), получаемый
На первом этапе D-арабинопираноза
1 по
кислотным гидролизом гликозидов растения Stevia
методике [21] была превращена в метил-5-О-п-
rebaudiana [1], продаваемых под разными торговыми
тозил-α/β-D-арабинофуранозид
3, бензоилирова-
марками в сетевых магазинах в качестве безкало-
нием которого получили метил-5-О-п-тозил-2,3-ди-
рийных заменителей сахара. Как и все природные
О-бензоил-α-D-арабинофуранозид
4 (схема
1).
терпеноиды, изостевиол является биологически
Аналогичным образом из D-рибозы 5 был получен
активным веществом с умеренным антигипергли-
метил-5-О-п-тозил-2,3-ди-О-бензоил-β-D-рибо-
кемическим [2, 3], кардиопротекторным [4], противо-
фуранозид 8.
раковым [2, 5], антитуберкулезным [6], противо-
воспалительным [2], антибактериальным и противо-
На втором этапе гликозиды
4 и
8 были
присоединены к изостевиолу 9. Реакции проводили
грибковым действием [7]. Химическая модификация
в ацетонитриле в присутствии K2CO3 в атмосфере
изостевиола не только увеличила его антитуберку-
лезную [6, 8-10], противораковую [12, 13], антибакте-
аргона. Гликоконъюнаты
10 и
12 выделили
хроматографированием на силикагеле с выходами
риальную [14] активность, но и наделила его противо-
43 и
21% соответственно (схема
2).
Об
вирусными [15] и антимитотическими [16] свойствами.
образовании гликоконъюгата 10 свидетельствовал
Продолжая синтез и изучение биологической
пик в масс-спектре МАLDI, m/z 695.29 [M + Na]+
активности гликоконъюгатов терпеноидов изос-
(C40H48NaO9, M 695.32). На образование глико-
608
ФОСФОРИЛИРОВАННЫЕ ГЛИКОКОНЪЮГАТЫ НА ОСНОВЕ ДИТЕРПЕНОИДА
609
Схема 1.
HO
TsO
TsO
O OH
OH
OH
OBz
O
O
O
OCH3
OCH3
HO
OH
a
b
c
OH
OCH3
OH
OH
OBz
1
2
3
4
HO
TsO
TsO
OCH3
O OH
O
O
O
OCH3
OCH3
HO
OH
d
b
c
OH
OH
OH
OH
OH
BzO
OBz
5
6
7
8
(a): HCl, CH3OH, 0-20°С, 24 ч; (b): TsCl, Py, 0-20°С, 24 ч; (c): BzCl, Py, 0-20°С, 24 ч; (d): H2SO4, CH3OH, 0-20°С, 24 ч.
конъюгата
12 указывало присутствие в масс-
в виде индивидуального α-аномера. Об этом
спектре МАLDI пиков, m/z
695.42
[M
+ Na]+
свидетельствовал только один набор сигналов в
(C40H48NaO9, M
695.32) и
711.41
[M
+ K]+
спектрах ЯМР 1Н и 13С и резонанс аномерного
(C40H48KO9, M 711.29). Гликоконъюгат 10 выделен
протона в виде синглета при 5.11 м.д. (cр. [22]).
Схема 2.
17
20
11 13
O
O
16
1
9
3
5
7
15
4, a
b
18
19
O
O
O
O
O
5'
O
OBz
O
O
1'
Br
3'
O
OCH3
O
OBz
O
10
11
O
HO
9
O
O
O
O
8, a
O
c
O
OCH
3
O
O
Br
BzO
OBz
BzO
OBz
12
13
(a): K2CO3, CH3CN, 80°C, 60 ч; (b): AcBr, CH2Cl2, 0°C, 3 ч; (c): HBr-AcOH, 0°C, 4 ч.
ЖУРНАЛ ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ том 55 № 4 2019
610
ШАРИПОВА и др.
Схема 3.
a
O
O
CH3
BuOH + POCl3
P
HO
O
CH3
14
11
b
b
13
17
20
11 13
O
O
16
1
9
3
5
7
15
18
19
O
O
6'
O
9'
O
O
O
5'
OBz
CH3
CH3
O
7'
O
O
1'
O
O P
13'
O
P
3'
2'
11'
O
CH3
O
CH3
OBz
BzO
OBz
15
16
(a): толуол, Et3N, 60°C, 1 ч; (b): CH3CN, i-Pr2NEt, 20°C, 12 ч.
Гликоконъюгат
12 выделен в виде индиви-
свидетельствующее о преобладании α-аномерной
дуального β-аномера, аномерный протон которого
формы. Это соответствует данным [25] о влиянии
резонирует в виде синглета при 5.14 м.д. (ср. [23]).
концентрации
2,3,5-три-О-бензоил-α-D-арабино-
Метоксигруппу в гликоконъюгате 10 действием
фуранозилбромида на стереоселективность
ацетилбромида заменяли на бром
[24],
гликозилирования дибутилфосфата 14.
образовавшийся с количественным выходом
Замену метоксигруппы на атом брома в
бромид 11 (схема 2) по методике [25] вовлекли в
гликоконъюгате 12 проводили действием смеси
реакцию с дибутилфосфатом 14 и с выходом 29%
HBr-AcOH [26]. Полученный с количественным
(после хроматографирования) получили фосфори-
выходом бромид 13 без дополнительной очистки
лированный гликоконъюгат 15 (схема 3). На его
вводили в реакцию с дибутилфосфатом 14 и с
образование указывал пик в спектре МАLDI при m/z
выходом
32% (после хроматографированияи)
873.53 [M + Na]+ (C47H63NaO12P, M 873.40). Глико-
получили фосфорилированный гликоконъюгат 16
конъюгат 11, i-Pr2NEt и (BuO)2P(O)OH 14 вводили
(схема 3). О его образовании свидетельствовал
в реакцию в мольном соотношении 1:4:4, причем
пик в спектре МАLDI, m/z
873.40
[M + Na]+
бромид 11 брали в концентрации 0.003 моль/л
(C47H63NaO12P, M 873.40). Реакцию проводили при
(ср. [25]). В спектре ЯМР 1Н гликоконъюгата 15
таком же соотношении реагентов, как и c
дублет при 6.01 м.д. с вицинальной КССВ 5.0 Гц
бромидом 11.
соответствует резонансу аномерного протона α-
изомера [22], а мультиплет при 5.75-5.79 м.д.
В спектре ЯМР 1Н гликоконъюгата 16 дублет
соответствует резонансу аномерного протона β-
при
6.03 м.д. с вицинальной КССВ
5.7 Гц
изомера [23]. При интегрировании перечисленных
соответствует резонансу аномерного протона
сигналов получено соотношение α/β
3.3,
β-изомера, а мультиплет при
5.73-5.75 м.д.
ЖУРНАЛ ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ том 55 № 4 2019
ФОСФОРИЛИРОВАННЫЕ ГЛИКОКОНЪЮГАТЫ НА ОСНОВЕ ДИТЕРПЕНОИДА
611
резонансу аномерного протона α-изомера [23]. При
Гликоконъюгаты (10) и (12) (общая мето-
интегрировании перечисленных сигналов получено
дика). К раствору 1 моль изостевиола 9 в 40 мл
соотношение α/β
0.5, свидетельствующее о
CH3CN в присутствии
4 моль К2СО3 при
преобладании β-аномерной формы.
перемешивании по каплям прибавляли в токе
аргона раствор 1.08 моль метил 5-О-п-тозил-2,3-ди-
Соединения
15 и
16, по нашим данным,
О-бензоил-α-D-арабинофуранозида 4 или метил 5-
являются первыми фосфорилированными глико-
О-п-тозил-2,3-ди-О-бензоил-β-D-рибофуранозида 8
конъюгатами терпеноидов с моносахаридами.
в 10 мл CH3CN. Реакционную смесь кипятили 20-
Биологическая активность этих гликоконъюгатов в
30 ч, осадок отфильтровывали, концентрировали
настоящее время изучается.
при пониженном давлении, разбавляли водой,
проводили экстракцию хлороформом. Экстракт
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
сушили MgSO4, растворитель отгоняли при
пониженном давлении, остаток хроматогра-
Спектры ЯМР 1Н, 13С, 31P регистрировали на
фировали на силикагеле (элюент - петролейный
спектрометре Avance-400 (Bruker, Германия) с
эфир-этилацетат для конъюгата 10 в соотношении
рабочими частотами 400 (1Н) и 100.6 (13С, 31P) МГц,
6:1, для конъюгата 12 - 10:1). Конъюгаты 10 и 12
калибровали по растворителю CDCl3. Масс-
получили в виде белых аморфных порошков.
спектры МАLDI соединений в метаноле
(10-3 мг/мл) получены на времяпролетном масс-
Метил
5’-О-(16,19-диоксо-энт-бейеран-19-
спектрометре UltraFlex III TOF/TOF (Bruker
ил)-2’,3’-ди-О-бензоил-α-D-арабинофуранозид
Daltonik GmbH, Бремен, Германия) в линейном
(10). Выход 0.33 г (43%), [α]
20 -53.0 (с 1, CH2Cl2).
режиме. Лазер Nd:YAG, λ
355 нм. Данные
Спектр ЯМР 1Н, δ, м.д.: 0.75 с (3Н, H3C20), 0.96 с
обрабатывали с помощью программы FlexAnalysis
(3Н, H3C17), 1.23 с (3Н, H3C18), 0.81-1.95 м (18Н,
3.0 (Bruker Daltonik GmbH, Бремен, Германия).
энт-бейерановый каркас), 2.21 д (1Н, Н, J 12.9 Гц),
Измерения проводили в диапазоне m/z 200-6000,
2.62 д.д (1Н, Н15α, J 18.7, 3.7 Гц), 3.47 с (3Н, Н3С6’),
фиксировали положительно заряженные ионы.
4.32-4.48 м (3Н, Н4’, H5’a, H5’b), 5.11 c (1H, H1’),
Использовали металлическую мишень, в качестве
5.44-5.50 м (2H, Н2’, H3’), 7.42-8.08 м (10Наром).
матрицы п-нитроанилин. Оптическое вращение
Спектр ЯМР 13С, δ, м.д.: 13.19 (С20), 18.74 (С2),
измеряли на поляриметре Perkin Elmer-341
19.68 (С17), 20.16 (С11), 21.51 (С6), 28.74 (С18), 37.15
(Perkin Elmer, США) при λ
589 нм,
20°C.
3), 37.71 (С10), 37.87 (С12), 39.26 (C13), 39.63 (С1),
Полноту протекания реакций и чистоту
41.32 (С7), 43.80 (С4), 48.23 (С8), 48.51 (С15), 54.15
веществ контролировали методом тонкослой-
14), 54.59 (С9), 54.81 (С5), 57.03 (OСH3), 63.10
ной хроматографии на пластинах Sorbfil (ООО
(C5’), 77.55 (C4’), 79.55 (C3’), 82.47 (C2’),106.69 (C1’),
«Имид» Краснодар, Россия), вещества обна-
128.32 (Cаром), 129.75 д (Cаром), 133.35 д (Саром),
руживали обработкой пластин 5%-ным раствором
165.33 [OC(O)Ar], 165.47 [OC(O)Ar], 176.73 (C19),
серной кислоты с последующим нагреванием до
222.13 (С16). Масс-спектр, m/z: 695.29 [M + Na]+.
120°C.
Найдено, %: C 71.63; H 7.17. C40H48O9. Вычислено,
%: C 71.41; H 7.19. M 672.80.
Использовали коммерческие D-арабинозу и D-
рибозу (Acros, Бельгия). Метил α/β-D-арабино-
Метил
5’-О-(16,19-диоксо-энт-бейеран-19-
фуранозид 2, метил 5-О-п-тозил-α,β-D-арабинофу-
ил)-2’,3’-ди-О-бензоил-β-D-рибофуранозид
(12).
20
ранозид 3, метил α/β-D-рибофуранозид 6 и метил
Выход 0.16 г (21%), [α]
-48.0 (с 0.9, CH2Cl2).
5-О-п-тозил-α/β-D-рибофуранозид 7, метил 5-О-п-
Спектр ЯМР 1Н, δ, м.д.: 0.75 с (3Н, H3C20), 0.97 с
тозил-2,3-ди-О-бензоил-α-D-арабинофуранозид 4 и
(3Н, H3C17), 1.22 с (3Н, H3C18), 0.81-1.96 м (18Н,
метил
5-О-п-тозил-2,3-ди-О-бензоил-β-D-рибофу-
энт-бейерановый каркас), 2.21 д (1Н, Н, J 13.5 Гц),
ранозид 8 получали по методикам, приведённым в
2.64 д.д (1Н, Н15α, J 18.7, 3.7 Гц), 3.46 с (3Н, Н3С6’),
работах [21, 27]. Спектральные параметры гликозидов
4.23-4.42 м (3Н, H5’a, H5’b), 4.58-4.62 м (1Н, Н4’),
4 и
8 соответствовали литературным
[22,
23].
5.14 c (1H, H1’), 5.59-5.62 м (1Н, H2’), 5.64-5.69 м
Изостевиол
9 получали по методике
[1] из
(1H, Н3’), 7.28-8.01 м (10Наром). Спектр ЯМР 13С, δ,
подсластителя Sweta (Stevian Biotechnology Corp.),
м.д.: 13.82 (С20), 19.43 (С2), 20.31 (С17), 20.79 (С11),
дибутилфосфат
14 получали по методике
[29],
22.14 (С6), 29.44 (С18), 37.80 (С3), 38.29 (С10), 38.50
их спектральные параметры соответствовали
12), 39.91 (C13), 40.24 (С1), 41.93 (С7), 44.41 (С4),
литературным [28, 29].
48.93 (С8), 49.15 (С15), 54.78 (С14), 55.21 (С9), 55.98
ЖУРНАЛ ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ том 55 № 4 2019
612
ШАРИПОВА и др.
5), 57.67 (OСH3), 65.61 (C5’), 73.24 (C4’), 75.83
(2Н, 0.3H3C9’β, 0.3H3C13’β, J 6.9 Гц), 0.94 с (3Н,
(C3’), 79.53 (C2’),107.07 (C1’), 128.76-133.88 (Cаром),
H3C17α), 0.95 с (1Н, 0.3H3C17β), 1.19 с (3Н, H3C18α),
165.72 [OC(O)Ar], 165.83 [OC(O)Ar], 177.39 (C19),
1.21 с (1Н, 0.3H3C18β), 0.79-1.94 м [33.8Нα, 0.3Нβ,
222.89 (С16). Масс-спектр, m/z: 695.42 [M + Na]+,
энт-бейерановый каркас, (С7’Н2С8’Н2)α,
711.41 [M + K]+. Найдено, %: C 71.35; H 7.22.
11’Н2С12’Н2)α, (С7’Н2С8’Н2)β, (С11’Н2С12’Н2)β], 2.16-
C40H48O9. Вычислено, %: C 71.41; H 7.19. M 672.80.
2.22 м (1.3Н, Н3α,е, 0.3Н3β,е), 2.56-2.64 м (1.3Н, Н15α,а,
0.3Н15β,а), 3.94-4.16 м (5.2Н, Н2С6’α, Н2С10’α,
0.3
5’-О-(16,19-Диоксо-энт-бейеран-19-ил)-2’,3’-
Н2С6’β, 0.3Н2С10’β), 4.28-4.46 м [2.6Н, (H5’А, H5’В)α,
ди-О-бензоил-D-арабинофуранозилбромид
(11).
0.3 (H5’А, H5’В)β], 4.61-4.73 (1.3H, Н4’α, 0.3H4’β),
К охлажденному до 0°С раствору 0.3 г (0.48 ммоль)
5.47-5.49 м (1.3H, H3’α, 0.3H3’β), 5.59-5.61 м (1.3H,
конъюгата 10 в 10 мл абс. СН2Cl2 добавляли при
H2’α, 0.3H2’β), 5.75-5.79 м (0.3H, H1’β), 6.01 д (1Н,
перемешивании 0.2 мл (2.6 ммоль) бромистого
H1’α, J 5.0 Гц), 7.39-8.12 м (13 Наром). Спектр ЯМР
ацетила, по каплям прибавляли 0.08 мл (2.1 ммоль)
13С, δ, м.д.: 13.41 (С20), 13.67 (C9’, C13’), 19.05 (C8’,
абс. CH3ОН в 1 мл абс. СН2Cl2. Реакционную смесь
C12’), 19.96 (С2), 20.42 (С17), 20.44 (С11), 21.75 (С6),
перемешивали 3 ч при 0°С, разбавляли 20 мл
29.01 (С18), 32.41 (С7’), 32.45 (C11’), 37.42 (С3), 38.11
СН2Cl2, промывали ледяной водой,
2×20 мл,
10), 38.16 (С12), 39.52 (C13), 39.57 (С1), 41.54 (С7),
насыщенным раствором NaHCO3,
2×50 мл.
44.05 (С4), 48.48 (С8), 48.76 (С15), 54.41 (С14), 54.49
Органический слой фильтровали через MgSO4,
9), 54.89 (С5), 57.31 (С5’β), 63.19 (С5’α), 68.02 д.д
удаляли растворитель при пониженном давлении.
(C6’, C10’, J 12.7, 5.9 Гц), 77.24 (C4’β), 77.83 (C4’α),
Бромид 11 получили с количественным выходом в
82.16 (C3’β), 82.28 (C3’α), 82.66 (C2’β), 83.19 (C2’α),
виде аморфного белого порошка и немедленно
101.07 (C1’β), 103.05 д (C1’α, J 5.3 Гц), 128.63 (Cаром),
использовали в следующей стадии.
128.72 д (Cаром), 130.03 д (Саром), 133.92 (Саром),
5’-О-(16,19-Диоксо-энт-бейеран-19-ил)-2’,3’-
165.12
[OC(O)Ar], 165.57 [OC(O)Ar], 176.84 (C19),
ди-О-бензоил-D-рибофуранозилбромид
(13). К
222.24 (С16). Спектр ЯМР 31P, δ, м.д.: -3.33 (α-PO4),
охлажденному до 0°С раствору 0.14 г (0.2 ммоль)
-0.68 (β-PO4). Масс-спектр, m/z: 873.53 [M + Na]+.
конъюгата 12 в 5 мл абс. СН2Cl2 добавляли при
Найдено, %: C 66.43; H 7.48; Р 3.66. C47H63O12P.
перемешивании 0.3 мл 33%-ного раствора HBr-
Вычислено, %: C 66.34; H 7.46; Р 3.64. M 850.97.
AcOH. Реакционную смесь перемешивали с
5’-О-(16,19-Диоксо-энт-бейеран-19-ил)-2’,3’-
постепенным нагреванием до 20°С в течение 4 ч,
вливали её в 10 мл ледяной воды, органический
ди-О-бензоил-α,β-D-рибофуранозил-1-О-
20
дибутилфосфат (16). Выход 0.11 г (32%), [α]
-
слой отделяли, промывали водой, 2×10 мл, сушили
20.0 (с 0.8, CH2Cl2). Соотношение α/β 0.5. Спектр
Na2SO4. Растворитель удаляли при пониженном
давлении. Бромид 13 получили с количественным
ЯМР 1Н, δ, м.д.: 0.71 с (3Н, H3C20β), 0.73 с (1.5Н,
H3C20α),
0.91-0.95 м
(9Н,
0.5H3C9’α, H3C9’β,
выходом в виде аморфного белого порошка и
0.5H3C13’α, H3C13’β), 0.96 с (3Н, H3C17β), 0.97 с (1.5Н,
немедленно использовали в следующей стадии.
0.5H3C17α),
1.20 с (4.5Н, 0.5H3C18α, H3C18β), 0.82-
Фосфаты (15) и
(16) (общая методика). К
1.96 м
[39Нβ,
0.5Нα энт-бейерановый каркас,
раствору 1 моль бромида 11 или 13 в 50 мл абс.
7’Н2С8’Н2)α,
7’Н2С8’Н2)β, (С11’Н2С12’Н2)α,
CH3CN добавляли 4 моль дибутилфосфата 14 и 4 моль
11’Н2С12’Н2)β], 2.19 д (1.5Н, 0.5Н3α,е, Н3β,е, J 13.1 Гц),
диизопропилэтиламина в
50 мл абс. CH3CN.
2.58-2.69 м (1.5Н, 0.5Н15α,а, Н15β,а), 4.06-4.16 м [6Н,
Реакционную смесь перемешивали 12 ч в токе
0.5 Н2С6’α, 0.5Н2С10’α, Н2С6’β, Н2С10’β], 4.27-4.54 м
аргона при
20°С, растворитель отгоняли при
[3Н, 0.5(H5’А, H5’В)α, (H5’А, H5’В)β], 4.59-4.68 (1.5H,
пониженном давлении. Остаток хроматогра-
0.5Н4’α, H4’β), 5.41-5.46 м (0.5H, 0.5H3’α), 5.60 уш.с
фировали на силикагеле (элюент - петролейный
(1Н, Н), 5.62-5.66 м (0.5H, 0.5H2’α), 5.73-5.75 м
эфир-этилацетат, 6:1). Фосфаты выделяли 15 и 16 в
(1.5Н, 0.5H1’α, Н), 6.03 д (1Н, H1’β, J 5.7 Гц), 7.33-
виде прозрачных масел.
8.01 м (15Наром). Спектр ЯМР 13С, δ, м.д.: 13.49
5’-О-(16,19-Диоксо-энт-бейеран-19-ил)-2’,3’-
20), 13.67 (C11’, C15’), 18.77, 19.08 (C10’, C14’), 19.98
ди-О-бензоил-α,β-D-арабинофуранозил-1-О-
2), 20.00 (С17), 20.45 (С11), 21.79 (С6), 29.03 (С18),
20
дибутилфосфат (15). Выход 0.1 г (29%), [α]
-
32.34 (С9’, C13’), 37.44 (С3), 38.12 (С10), 38.17 (С12),
10.6 (с 0.5, CH2Cl2). Соотношение α/β 3.3. Спектр
39.53 (C13), 39.58 (С1), 41.51 (С7), 44.06 (С4), 48.52
ЯМР 1Н, δ, м.д.: 0.70 с (3Н, H3C20α), 0.72 с (1Н,
8), 48.78 (С15), 54.42 (С14), 54.86 (С9, С5), 57.28
0.3H3C20β), 0.90 т (6Н, H3C9’α, H3C13’α, J 7 Гц), 0.92 т
5’β), 64.71 (С5’α), 67.50 д (C8’, C12’, J 5.9 Гц), 72.07
ЖУРНАЛ ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ том 55 № 4 2019
ФОСФОРИЛИРОВАННЫЕ ГЛИКОКОНЪЮГАТЫ НА ОСНОВЕ ДИТЕРПЕНОИДА
613
(C4’α), 72.50 (C4’β), 75.80 д (C3’α, J 9.1 Гц), 76.32
[Andreeva O.V., Sharipova R.R., Strobykina I.Yu.,
(C3’β), 79.57 д (C2’β, J 17.1 Гц), 80.31 д (C2’α, J 16.0 Гц),
Kravchenko M.A., Strobykina A.S., Voloshina A.D.,
Musin R.Z., Kataev V.E. Russ. J. Org. Chem. 2015, 51,
100.50 (C1’α), 102.43 д (C1’β, J 3.5 Гц), 128.53 (Cаром),
1324.] doi 10.1134/S1070428015090201
129.93 (Cаром), 133.74 (Саром),
165.03
[OC(O)Ar],
9. Гарифуллин Б.Ф., Шарипова Р.Р., Стробыкина И.Ю.,
165.44 [OC(O)Ar], 176.92 (C19), 222.45 (С16). Спектр
Андреева О.В., Кравченко М.А., Катаев В.Е. ЖОрХ.
ЯМР 31P, δ, м.д.: -2.81 (β-PO4), -0.58 (α-PO4). Масс-
2015,
51,
1517.
[Garifullin B.F., Sharipova R.R.,
спектр, m/z: 873.68 [M + Na]+, 889.72 [M + K]+.
Strobykina I.Yu., Andreeva O.V., Kravchenko M.A.,
Найдено, %: C 66.31; H 7.51; Р 3.60. C47H63O12P.
Kataev V.E. Russ. J. Org. Chem. 2015, 51, 1488.] doi
Вычислено, %: C 66.34; H 7.46; Р 3.64. M 850.97.
10.1134/S1070428015100231
10. Garifullin B.F., Strobykina I.Yu., Sharipova R.R.,
БЛАГОДАРНОСТИ
Kravchenko M.A., Andreeva O.V., Bazanova O.B.,
Kataev V.E. Carbohyd. Res. 2016, 431, 15. doi 10.1016/
Авторы благодарят ЦКП-САЦ ФИЦ КазНЦ
j.carres.2016.05.007
РАН за техническую поддержку проведенных
11. Testai L., Strobykina I.Yu., Semenov V.V., Semenova M.,
исследований.
Da Pozzo E., Martelli A., Citi V., Martini C., Breschi M.C.,
Kataev V.E., Calderone V. Int. J. Mol. Sci. 2017, 18,
КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ
2056. doi 10.3390/ijms18102060
12. Liu Y., Wang T., Ling Y., Bao N., Shi W., Chen L.,
Авторы заявляют об отсутствии конфликта
Sun J., Sun J. Chem. Bio. Drug Des. 2017, 90, 473. doi
интересов.
10.1111/cbdd.12956
13. Khaybullin R.N., Zhang M., Fu J., Liang X., Li T.,
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
Katritzky A.R., Okunieff P., Qi X. Molecules. 2014, 19,
18676. doi 10.3390/molecules191118676
1. Хайбуллин Р.Н., Стробыкина И.Ю., Катаев В.Е.,
14. Wu Y., Liu C.-J., Liu X., Dai G.-F., Du J.-Y., Tao J.-C.
Лодочникова О.А., Губайдуллин А.Т., Мусин Р.З.
Helvetica Chim. Acta. 2010, 93, 2052. doi 10.1002/
ЖОХ. 2009, 79, 795. [Khaibullin R.N., Strobykina I.Yu.,
hlca.201000046
Kataev V.E., Lodochnikova O.A., Gubaidullin A.T.,
15. Huang T.-J., Yang C.L., Kuo Y.C., Chang Y.C.,
Musin R.Z. Russ, J. Gen. Chem. 2009, 79, 967.] doi
Yang L.-M., Chou B.-H., Lin S.-J. Bioorg. Med. Chem.
10.1134/S107036320905017X
2015, 23, 720. doi 10.1016/j.bmc.2014.12.064
2. Chatsudthipong V., Muanprasat C. Pharmacol. Ther.
16. Strobykina I.Yu., Belenok M.G., Semenova M.N.,
2009, 121, 41. doi 10.1016/j.pharmthera.2008.09.007
Semenov V.V., Babaev V.M., Rizvanov I.Kh.,
3. Ma J., Ma Z., Wang J., Milne R.W., Xu D., Davey A.K.,
Mironov V.F., Kataev V.E. J. Nat. Prod. 2015, 78,
Evans A.M. Diabetes Obes. Metab. 2007, 9, 597. doi
1300. doi 10.1021/acs.jnatprod.5b00124
10.1111/j.1463-1326.2006.00630.x
17. Шарипова Р.Р., Андреева О.В., Гарифуллин Б.Ф.,
4. Xu D., Li L., Wang J., Davey A.K., Zhang S., Evans A.M.
Стробыкина И.Ю., Стробыкина А.С., Волоши-
Life Sci. 2007, 80, 269. doi 10.1016/j.lfs.2006.09.008
на А.Д., Кравченко М.А., Катаев В.Е. ХПС. 2018, 54,
5. Mizushina Y., Akihisa T., Ukiya M., Hamasaki Y.,
81. [Sharipova R.R., Andreeva O.V., Garifullin B.F.,
Murakami-Nakai C., Kuriyama I., Takeuchi T.,
Strobykina I.Yu., Strobykina A.S., Voloshina A.D.,
Sugawara F., Yoshida H. Life Sci. 2005, 77, 2127. doi
Kravchenko M.A., Kataev V.E. Chem. Nat. Comp.
10.1016/j.lfs.2005.03.022
2018, 54, 92.] doi 10.1007/s10600-018-2267-5
6. Катаев В.Е., Милицина О.И., Стробыкина И.Ю.,
18. Стробыкина И.Ю., Гарифуллин Б.Ф., Шарипова Р.Р.,
Ковыляева Г.И., Мусин Р.З., Федорова О.В.,
Волошина А.Д., Стробыкина А.С., Добрынин А.Б.,
Русинов Г.Л., Зуева М.Н., Мордовской Г.Г.,
Катаев В.Е. ХПС. 2017, 53, 936. [Strobykina I.Yu.,
Толстиков А.Г. Хим.-фарм. ж.
2006,
40,
473.
Garifullin B.F., Sharipova R.R., Voloshina A.D.,
[Kataev V.E., Militsina O.I., Strobykina I.Yu., Kovy-
Strobykina A.S., Dobrynin A.B., Kataev V.E. Chem.
lyaeva G.I., Musin R.Z., Fedorova O.V., Rusinov G.L.,
Nat. Comp. 2017, 53, 1011.] doi 10.1007/s10600-017-
Zueva M.N., Mordovskoi G.G., Tolstikov A.G. Pharm.
2210-1
Chem. J. 2006, 40, 473.] doi 10.1007/s11094-006-0157-9
19. Стробыкина И.Ю., Андреева О.В., Гарифуллин Б.Ф.,
7. Al-Dhabi N.A., Arasu M.V., Rejiniemon T.S. Evid.-
Шарипова Р.Р., Катаев В.Е. ЖОХ. 2017, 87, 523.
Bas. Compl. Altern. Med. 2015, 2015, 164261. doi
[Strobykina I.Yu., Andreeva O.V., Garifullin B.F.,
10.1155/2015/164261
Sharipova R.R., Kataev V.E. Russ. J. Gen. Chem. 2017,
87, 579.] doi 10.1134/S1070363217030331
8. Андреева О.В., Шарипова Р.Р., Стробыкина И.Ю.,
Кравченко М.А., Стробыкина А.С., Волошина А.Д.,
20. Стробыкина И.Ю., Гарифуллин Б.Ф., Стробыки-
Мусин Р.З., Катаев В.Е. ЖОрХ. 2015, 51,
1349.
на А.С., Волошина А.Д., Шарипова Р.Р., Катаев В.Е.
ЖУРНАЛ ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ том 55 № 4 2019
614
ШАРИПОВА и др.
ЖОХ. 2017, 87, 694. [Strobykina I.Yu., Garifullin B.F.,
Чижов А.О., Кононов Л.О. Изв. АН. Сер. хим. 2016,
Strobykina A.S., Voloshina A.D., Sharipova R.R.,
2776. [Ahiadorme D.A., Podvalnyy N.M., Orlova A.V.,
Kataev V.E. Russ. J. Gen. Chem. 2017, 87, 890.] doi
Chizhov A.O., Kononov L.O. Russ. Chem. Bull. 2016,
10.1134/S1070363217030331
65, 2776.] doi 10.1007/s11172-016-1654-y
21. Sanki A.K., Boucau J., Srivastava P., Adams S.S.,
26. Gao M., Chen Y., Tan S., Reibenspies J.H.,
Ronning D.R., Sucheck S.J. Bioorg. Med. Chem. 2008,
Zingaro R.A. Heteroat. Chem. 2008, 19, 199. doi
16, 5672. doi 10.1016/j.bmc.2008.03.062
10.1002/hc.20388
22. Ferrier R.J., Haines S.R. J. Chem. Soc. Perkin. Trans. 1.
27. Lopez G., Nugier-Chauvin C., Remond C., O’Donohue M.
1984, 1689. doi 10.1039/P19840001689
Carbohyd. Res.
2007,
342,
2202. doi
10.1016/
23. Nishizono N., Nair V. Nucleos. Nucleot. Nucleic Acids.
j.carres.2007.06.001
2000, 19, 283. doi 10.1080/15257770008033010
28. Korochkina M., Fontanella M., Casnati A., Arduini A.,
24. Podvalnyy N.M., Sedinkin S.L., Abronina P.I.,
Sansone F., Ungaro R., Latypov Sh., Kataev V.,
Zinin A.I., Fedina K.G., Torgov V.I., Kononov L.O.
Alfonsov V. Tetrahedron. 2005, 61, 5457. doi 10.1016/
Carbohyd. Res.
2011,
346,
7.
doi
10.1016/
j.tet.2005.03.127
j.carres.2010.11.002
29. Aitken A.A., Collet C.J., Mesher Sh.T.E. Synthesis.
25. Ахиадорме Д.А., Подвальный Н.М., Орлова А.В.,
2012, 44, 2515. doi 10.1055/s-0031-1290823
Phosphorylated Glycoconjugates on the Basis of Diterpenoid
Isosteviole, D-Arabinofuranose, and D-Ribofuranose
R. R. Sharipova, M. G. Belenok, I. Yu. Strobykina, and V. E. Kataev*
Arbuzov Institute of Organic and Physical Chemistry, FRC Kazan Scientific Center, RAS,
420088, Russia, Tatarstan, Kazan, ul. Akademika Arbuzova 8
*e-mail: kataev@iopc.ru
Received April 5, 2018
Revised February 10, 2019
Accepted February 19, 2019
The first representatives of the phosphorylated glycoconjugates of diterpenoid isosteviol (16-oxo-ent-beyeran-
19-oic acid) obtained by acid hydrolysis of the glycosides of the plant Stevia rebaudiana were synthesized in
three stages. In the first stage, glycoconjugates in which isosteviol was connected to a carbohydrate residue via
the C5 atom were obtained by the reaction of isosteviol with methyl-5-O-p-tosyl-2,3-di-O-benzoyl-D-
ribofuranoside and arabinofuranoside. In the second stage, the anomeric methoxy groups of glycoconjugates
were replaced by a bromine atom to form 2,3-di-O-benzoyl-D-ribofuranosyl and 2,3-di-O-benzoyl-D-
arabinofuranosyl bromides which in the third stage were converted to the target phosphorylated glycoconjugates
by the reaction with dibutylphosphate.
Keywords: isosteviol, arabinofuranose, ribose, glycoterpenoids, glycoconjugates, glycosides
ЖУРНАЛ ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ том 55 № 4 2019