РАДИОХИМИЯ, 2020, том 62, № 4, с. 345-348
УДК 100.02.3:546:547.15/17
МЕЧЕННЫЕ ТРИТИЕМ ПРОИЗВОДНЫЕ ДОФАМИНА,
СЕРОТОНИНА И ДОКСОРУБИЦИНА, СОДЕРЖАЩИЕ
НЕУСТОЙЧИВЫЕ В УСЛОВИЯХ ГИДРИРОВАНИЯ
ФРАГМЕНТЫ
© 2020 г. В. П. Шевченко*, Л. А. Андреева, К. В. Шевченко, И. Ю. Нагаев, Н. Ф. Мясоедов
Институт молекулярной генетики РАН, 123182, Москва, пл. Курчатова, д. 2
*e-mail: ATRegister@mail.ru
Получена 30.04.2019, после доработки 15.07.2019, принята к публикации 17.07.2019
Впервые синтезированы необходимые предшественники для получения меченных тритием Z-Gly-Pro-
DOPA, Z-Gly-Pro-Srt, Z-Gly-Pro-Dox, Ol-Gly-Pro-DOPA, Ol-Gly-Pro-Srt (Gly - глицин, Pro - пролин,
Ol - олеиновая кислота, DOPA - дофамин, Dox - доксорубицин, Srt - серотонин, Z - бензилоксикарбо-
нильная защита). С использованием меченных тритием пролина и глицина синтезированы пептидные
производные DOPA, Dox и Srt с разным распределением трития.
Ключевые слова: синтез, производные дофамина, серотонина, доксорубицина, тритий, пептиды
DOI: 10.31857/S0033831120040085
Для синтеза меченных тритием пептидных
Dox, Ol-Gly-[3Н]Pro-DOPA, Ol-Gly-[3Н]Pro-Srt, Ol-
производных биологически активных соединений
[3Н]Gly-Pro-DOPA, Ol-[3Н]Gly-Pro-Srt.
(БАС), содержащих неустойчивые в условиях ги-
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
дрирования фрагменты, необходимо введение три-
тия в соответствующий предшественник с после-
Катализаторы, реагенты и растворители - ком-
дующим включением его в искомое соединение.
мерческие препараты. Нерадиоактивные стандар-
Синтез и использование предшественников для
ты синтезировали по методикам [5-8]. Тритий в
получения меченых соединений могут осущест-
глицин (27-31 Ки/ммоль) вводили по методу [9].
вляться разными методами. Например, меченные
Исходные и конечные продукты характеризова-
тритием бензойные кислоты использовались для
ли с использованием метода высокоэффективной
получения меченых нейротоксинов (7,8-дигидро-
жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Препараты
батрахотоксин, аконитин), которые необходимы
очищали методом ВЭЖХ. Анализ проводили на
для изучения быстрых натриевых каналов электро-
хроматографе Милихром А-02 с использованием
возбудимых мембран [1]. Этим же методом полу-
колонки ProntoSIL-120-5-C18 AQ DB-2003 (2×
чены меченые аналоги нуклеотидов и ряда других
75 мм, размер частиц 5 мкм), в градиенте метанола
БАС [2-4]. При получении меченых производных
в 0.1%-ной уксусной кислоте (см. таблицу). Ско-
дофамина, серотонина и доксорубицина, в состав
рость подачи элюента - 0.2 мл/мин. длины волны
которых входили ненасыщенные жирные кислоты
210 нм.
или бензилоксикарбонильная защита (Z), необхо-
Радиоактивность измеряли на сцинтилля-
димо было прибегнуть к подобному подходу. При
ционном счетчике LKB1215 с эффективностью
использовании [3Н]Pro и [3Н]Gly получены мече-
регистрации трития около 30% в диоксановом
ные соединения с разным распределением трития.
сцинтилляторе. Для сбора и обработки хромато-
Целью данной работы являлся синтез Z-Gly-
графических данных использовали систему Муль-
[3Н]Pro-DOPA, Z-Gly-[3Н]Pro-Srt, Z-Gly-[3Н]Pro-
тиХром 1.5 (ЗАО «Амперсенд», Россия).
345
346
ШЕВЧЕНКО и др.
Времена удерживания Z- и Ol-содержащих произво-
20 мкл Et3N и 10 мкл ди-трет-бутилпирокарбона-
дных дофамина, серотонина и доксорубицина
та (Вос2О) в 0.4 мл изопропанола и перемешивали
Времена удерживания,
реакционную смесь 17 ч. Растворитель и летучие
Соединение
мин (градиент, %)
вещества удаляли упариванием. Остаток лиофи-
Z-Gly-Pro-DOPA
4.97 (30-100)
лизировали, промывали петролейным эфиром (2×
Z-Gly-Pro-Srt
5.25 (30-100)
0.2 мл) и растворяли в 4 мл метанола. Выход
Z-Gly-Pro-Dox
9.18 (30-100)
Boc-[3H]Gly 90%.
Ol-Gly-Pro-DOPA
7.80 (70-100)
77 мКи (3 мкмоль) Boc-[3H]Gly растворяли в
Ol-Gly-Pro-Srt
7.76 (70-100)
0.5 мл сухого диоксана. Затем прибавляли 1.5 мг
Синтез [3H]Pro. Раствор 5 мг дегидропроли-
(7.3 мкмоль) ДЦГК и 1.1 мг (10 ммоль) N-окси-
на (ΔPro) в 0.15 мл воды в присутствии 10 мг 5%
сукцинимида. Через 7 ч раствор упаривали, рас-
PdO/BaSO4 помещали в реакционную ампулу, за-
творяли осадок в 0.5 мл этанола и добавляли
мораживали жидким азотом и вакуумировали до
20 мкл Et3N и 1.0 мг (6 мкмоль) HCl·ProOМе.
0.1 Па. Напускали 70-80%-ный газообразный три-
Раствор перемешивали 15 ч при комнатной тем-
тий (давление 400 гПа), и при комнатной темпера-
пературе. Раствор упаривали, остаток растворяли
туре перемешивали раствор 1.5 ч. Раствор вновь
в 4 мл этилацетата и промывали 1 мл 1 н. HCl и
замораживали жидким азотом и удаляли избы-
дважды водой. Анализ проводили на хроматогра-
точный тритий адсорбцией последнего на уране
фе Милихром А-02, как описано выше. Выделе-
с последующим вакуумированием. Катализатор
ние меченого соединения проводили ВЭЖХ, как
отфильтровывали и промывали метанолом (3×
описано выше. Вос-[3Н]Gly-ProОМе растворяли в
1 мл). Лабильный тритий удаляли упариванием
0.3 мл смеси хлороформа с трифторуксусной кис-
лотой и упаривали через 40 мин. Выход меченого
реакционной смеси с 80%-ным водным метанолом
[3Н]Gly-ProОМе 69%.
(3×3 мл). Выход меченого пролина 95% (молярная
активность 35-40 Ки/ммоль).
Синтез Ol-[3H]Gly-Pro и Ol-Gly-[3H]Pro. 43 мг
(0.14 ммоль) олеата натрия обрабатывали раство-
Синтез Z-Gly-[3H]Pro. К раствору
7.5 мг
ром 0.1 мл хлористого тионила в 0.4 мл хлорофор-
(30 мкмоль) Z-Gly в 0.5 мл диоксана прибавля-
ма. Через 2 ч упаривали и растворяли в 2 мл хло-
ли 6.2 мг (54 мкмоль) N-оксисукцинимида (Su) и
роформа.
7.6 мг (37 ммоль) N,N-дициклогексилкарбодиими-
да (ДЦГК). Через 7 ч 0.25 мл раствора отбирали и
а. Раствором 50 мкмоль хлорангидрида олеино-
упаривали. Остаток растворяли в 400 мкл этано-
вой кислоты (OlCl) обрабатывали 9 мг (0.1 ммоль)
ла и добавляли 15 мкл Et3N. Реакцию с 15 мкмоль
солянокислого метилового эфира глицина в 2 мл
Z-Gly-Su начинали прибавлением
260 мКи
хлороформа с 0.1 мл триэтиламина и перемешива-
(7 мкмоль) [3Н]Pro в 250 мкл смеси воды и этано-
ли 2 ч. Упаривали, растворяли в 3 мл этилацетата и
ла (1 : 2) и вели при перемешивании 15 ч. Раствор
промывали 2 мл 1 н. HCl, затем три раза по 0.4 мл
упаривали, остаток растворяли в 4 мл этилацетата
воды. Органическую фазу упаривали, лиофилизи-
и промывали 1 мл 1 н. HCl и дважды водой. Анализ
ровали. Для удаления олеиновой кислоты раствор
проводили на хроматографе Милихром А-02, как
реакционной смеси в 2 мл эфира промывали 1 мл
описано выше. Выделение меченого соединения
0.2 н. NaOH. Эфирный раствор упаривали, оста-
проводили методом ВЭЖХ на колонке Kromasil
ток растворяли в 4 мл метанола и добавляли 1 мл
100C18 (8×150 мм, размер частиц 7 мкм). Элюент
0.2 н. NaOH. Через 1 ч образовался Ol-Gly. Выход
А - метанол-вода-AcOH-трифторуксусная кисло-
препарата 70%.
та (TFA) (20 : 80 : 0.1 : 0.01); элюент В - метанол;
б. К раствору 18.9 мг (56 мкмоль) Ol-Gly в 1 мл
линейный градиент от 0 до 100% В за 30 мин. Ско-
диоксана прибавляли 7 мг (61 мкмоль) N-оксисук-
рость подачи элюента 2 мл/мин, детектор по ради-
цинимида и 12.0 мг (58 мкмоль) ДЦГК, перемеши-
оактивности. Время удерживания 16.5 мин. Выход
вали смесь 7 ч и упаривали.
меченого Z-Gly-[3Н]Pro 69%.
25% полученного Ol-GlySu (14 мкмоль) рас-
Синтез Boc-[3H]Gly и [3H]Gly-ProОМе. К
творяли в 400 мкл этанола и добавляли 15 мкл
раствору 88 мКи глицина в 1 мл воды добавляли
Et3N. Реакцию с Ol-GlySu начинали прибавлением
РАДИОХИМИЯ том 62 № 4 2020
МЕЧЕННЫЕ ТРИТИЕМ ПРОИЗВОДНЫЕ ДОФАМИНА
347
260 мКи (7 мкмоль) [3Н]Pro в 0.2 мл смеси воды
б. В аналогичных условиях проводили получе-
и этанола (1 : 3) и вели при перемешивании 15 ч.
ние и очистку Ol-[3H]Gly-Pro-Srt. Выход Ol-[3H]
Раствор упаривали, остаток растворяли в 4 мл
Gly-Pro-Srt 50%, время удерживания 30.9 мин.
этилацетата и промывали 1 мл 1 н. HCl и дважды
Синтез Ol-Gly-[3H]Pro-Srt, Ol-Gly-[3H]Pro-
водой. Анализ и очистку проводили, как описано
DOPA. К раствору 175 мКи (5 мкмоль) Ol-Gly-
выше. Выход Ol-Gly-[3Н]Pro 55%.
[3H]Pro и 1.2 мг (10 мкмоль) N-оксисукцини-
75% сукцинимидного производного Ol-Gly
мида в 0.5 мл сухого диоксана добавляли 2.3 мг
(42 мкмоль) растворяли в 400 мкл этанола и добав-
(11 мкмоль) ДЦГК и перемешивали 5 ч при 23°С. За-
ляли 50 мкл Et3N. Реакцию с Ol-GlySu начинали
тем растворитель упаривали. Осадок растворяли в
прибавлением 10 мг (66 мкмоль) Pro·HCl в 0.2 мл
1 мл этанола.
смеси воды и этанола (1 : 3) и вели при перемеши-
К 0.5 мл этанольного раствора прибавляли
вании 15 ч. Продукт выделяли, как описано выше.
15 мкл триэтиламина и 10 ммоль дофамина или
Строение Ol-Gly-Pro подтверждено масс-спектро-
серотонина. Растворы перемешивали при комнат-
метрическими данными, полученными на прибо-
ной температуре в течение ночи. Соединения очи-
ре LCQ Advantage MAX (ThermoElectron, США)
щали, как описано выше. Выход Ol-Gly-[3H]Pro-
с ионизацией электрораспылением, прямым вво-
DOPA 42%, Ol-Gly-[3H]Pro-Srt 41%.
дом раствора образца с концентрацией 10 мкг/мл
Синтез Z-Gly-[3H]Pro-Dox, Z-Gly-[3H]Pro-
в 0.1%-ной уксусной кислоте и дальнейшей фраг-
Srt, Z-Gly-[3H]Pro-DOPA. К раствору 2.5 мг
ментацией молекулярного иона в анализаторе ме-
(8.2 мкмоль) Z-Gly-[3H]Pro и 1.2 мг (10 мкмоль)
тодом ионных соударений при 35 эВ.
N-оксисукцинимида в 0.5 мл сухого диоксана до-
в. К раствору OlCl (5 мкмоль) в 0.1 мл хлорофор-
бавляли 2.3 мг (11 мкмоль) ДЦГК и перемешивали
ма прибавляли 52 мКи (2 мкмоль) [3Н]Gly-ProО-
7 ч при 23°С. Затем растворитель упаривали. Оса-
Ме. Через 2 ч реакционную смесь обрабатывали
док растворяли в 1.5 мл этанола.
метанолом и лиофилизировали. К раствору Ol-
К 0.5 мл этанольного раствора прибавляли
[3Н]Gly-ProОСН3 в 0.5 мл метанола при переме-
15 мкл триэтиламина и 10 ммоль дофамина, док-
шивании прибавляли 0.5 мл 2 н. NaОН. Через 7 ч
сорубицина или серотонина. Растворы переме-
раствор подкисляли 1 н. HCl и упаривали. Остаток
шивали при комнатной температуре 15 ч. Со-
растворяли в 3 мл этилацетата и промывали водой
единения очищали, как описано выше. Выход
до нейтрального рН. Выход Ol-[3Н]Gly-Pro 90%.
Z-Gly-[3H]Pro-DOPA 55%, Z-Gly-[3H]Pro-Srt 65%,
Синтез Ol-[3H]Gly-Pro-Srt, Ol-[3H]Gly-Pro-
Z-Gly-[3H]Pro-Dox 46%.
DOPA. а. При перемешивании к раствору 13 мк-
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
моль Ol-[3H]Gly-Pro в 0.5 мл диоксана при комнат-
ной температуре прибавляли 2.3 мг (20 мкмоль)
Для введения трития в пептидные производные
N-оксисукцинимида и 4 мг (19 мкмоль) ДЦГК.
дофамина, серотонина и доксорубицина, которые
Через 7 ч растворитель упаривали, остаток раство-
содержат фрагменты, нестабильные в условиях
ряли в 1 мл этанола.
гидрирования, метку необходимо заблаговременно
К этанольному раствору (0.5 мл) прибавляли
вводить в аминокислоту с последующим встраива-
30 мкл Et3N и 2.5 мг (13 мкмоль) DOPA. Пере-
нием ее в соединение. В пролин изотоп водорода
мешивание продолжали 16 ч. Этанол упаривали.
можно ввести гидрированием ΔPro [7], а в Gly -
изотопным обменом [9].
Хроматографическое выделение проводили на ко-
лонке Kromasil 100C18 (8×150 мм, размер частиц
При использовании
[3Н]Pro, полученного
7 мкм). Элюент А - метанол-вода-AcOH-TFA
из ΔPro, его конденсировали с Z-GlyOSu или с
(50 : 50 : 0.1 : 0.01); элюент В - метанол; линей-
Ol-GlyOSu. Z-GlyOSu синтезировали обработкой
ный градиент от 0 до 100% В за 30 мин, затем
Z-Gly N-оксисукцинимидом и ДЦГК. Для син-
100% B в течение 5 мин. Скорость подачи элюен-
теза Ol-GlyOSu сначала ненасыщенную жирную
та 2 мл/мин, детектор по радиоактивности. Выход
кислоту превращали в хлорангидрид, который
Ol-[3H]Gly-Pro-DOPA 45%, время удерживания
обрабатывали GlyОМе. Метиловый эфир уда-
30.5 мин.
ляли омылением Ol-GlyОМе. Образовавшийся
РАДИОХИМИЯ том 62 № 4 2020
348
ШЕВЧЕНКО и др.
Ol-Gly превращали в Ol-GlyOSu, который затем
зидиума РАН «Инновационные разработки в био-
обрабатывали [3Н]Pro. По той же методике Z-Gly-
медицине» и «Постгеномные технологии и пер-
[3Н]Pro и Ol-Gly[3Н]Pro превращали в Z-Gly-[3Н]·
спективные решения в биомедицине».
ProOSu и Ol-Gly[3Н]ProOSu. При использовании
КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ
этих реагентов искомые соединения получали кон-
денсацией с DOPA, доксорубицином и Srt. Недо-
Авторы заявляют об отсутствии конфликта
статком такой методики является необходимость
интересов.
проведения большого количества стадий с мече-
ными предшественниками.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
В результате проведенной работы получены
1.
Нагаев И.Ю., Шевченко В.П., Мясоедов Н.Ф. //
Z-Gly-Pro-DOPA, Z-Gly-Pro-Srt, Z-Gly-Pro-Dox,
Радиохимия. 1999. Т. 41, № 4. C. 289.
Ol-Gly-Pro-DOPA, Ol-Gly-Pro-Srt, содержащие
2.
Coombs M.E., Kingston L.P., Lockley W.J.S.,
тритий в пролине. Молярная радиоактивность та-
Mather A.N., Wilkinson D.J. //Seventh Int. Symp. «The
ких препаратов 35-40 Ки/ммоль.
Synthesis and Applications of Isotopically Labelled
Получение соединений, меченных по глицину,
Compounds«: Abstracts., Dresden, Germany, 2000,
является более сложной задачей. С использовани-
P. 147.
ем [3H]Gly нельзя получить перечисленные выше
3.
Gibbs A.R., Morimoto H., VanBrocklin H.F., Willi-
вещества с Z-защитой. Возможно лишь получение
ams Ph.G., Biegon A. // J. Label. Compd. Radiopharm.
соединений с ненасыщенными жирными кислота-
2002. Vol. 45, N 5. P. 395.
ми. Для этого необходимо предварительно изгото-
вить OlOSu. Затем провести реакцию с [3H]Gly.
4.
Shevchenko V.P., Nagaev I.Yu., Myasoedov N.F.,
К сожалению, данная реакция проходит с низ-
Susan A.B., Switek K-H., Braunger H. // J. Label.
ким выходом. Более высокий выход удалось по-
Compd. Radiopharm. 2006. Vol. 49, N 5. P. 421.
лучить, конденсируя OlCl с [3Н]Gly-ProОМе. Но
5.
Шевченко К.В., Андреева Л.А., Нагаев И.Ю., Шев-
для реализации этого подхода необходимо сначала
ченко В.П., Мясоедов Н.Ф. // Биомед. хим. 2019. Т. 65,
синтезировать Boc-[3H]Gly, затем сконденсировать
№ 6. С. 498
его с ProОМе и снять Вос-защиту. Удалить метиль-
6.
Шевченко В.П., Андреева Л.А., Нагаев И.Ю., Мясое-
ную группу с пролина оказалось намного труднее,
дов Н.Ф. // Докл. АН. 2019. Т. 485, № 2. С. 182.
чем с глицина. Следующие стадии проводили ана-
логично синтезам пептидных производных дофа-
7.
Шевченко В.П., Андреева Л.А., Нагаев И.Ю., Мясое-
мина и серотонина. Молярная радиоактивность
дов Н.Ф. // Докл. АН. 2019. Т. 487, № 1. С. 41.
препаратов 26 Ки/ммоль.
8.
Гершкович А.А., Кибирев В.К. Химический синтез
ФОНДОВАЯ ПОДДЕРЖКА
пептидов. Киев: Наук. думка, 1992. 360 с.
Работа проведена при частичной поддержке
9.
Шевченко В.П., Андреева Л.А., Нагаев И.Ю., Мясое-
Программ фундаментальных исследований Пре-
дов Н.Ф. // Докл. АН. 2018. Т. 483, № 2. С. 159.
РАДИОХИМИЯ том 62 № 4 2020