1. На главную
  2. Электронные версии
  3. Известия РАН. Серия биологическая
  4. № 5, 2023

Известия РАН. Серия биологическая, 2023, № 5, стр. 531-536

Гистологическая оценка кожных покровов лабораторных крыс после термических повреждений и их коррекции наносекундными микроволновыми импульсами

А. А. Гостюхина 1, 3, 2, *, В. В. Ярцев 2, 4, 3, А. В. Самойлова 1, 4, 3, М. А. Большаков 1, 3, С. С. Евсеева 2, 3, В. М. Мочалова 3, К. В. Зайцев 2, О. П. Кутенков 1, В. В. Ростов 1

1 ФГУН Институт сильноточной электроники СО РАН
634055 Томск, пр. Академический, 2/3, Россия

2 ФГБУ Федеральный научно-клинический центр медицинской реабилитации и курортологии Федерального медико-биологического агентства
141551 д. Голубое, Солнечногорский р-н, Московская обл., Россия

3 ФГАОУВО “Национальный исследовательский Томский государственный университет”
634050 Томск, пр. Ленина, 36, Россия

4 ГБОУВПО “Сибирский государственный медицинский университет” Министерства здравоохранения Российской Федерации
634050 Томск, Московский тракт, 2, Россия

* E-mail: antariks-tomsk2015@yandex.ru

Поступила в редакцию 17.03.2022
После доработки 21.12.2022
Принята к публикации 13.02.2023

Аннотация

На модели термического ожога кожных покровов лабораторных крыс показано, что после 4-кратного локального облучения наносекундным импульсно-периодическим микроволновым излучением (ИПМИ, 10 ГГц, длительность импульсов 100 нс, частота повторения импульсов 8 Гц, пиковая плотность потока мощности (пППМ) 140 Вт/см2) увеличивается скорость заживления ран за счет ускоренного образования грануляционной ткани и уменьшения толщины струпа, что обеспечивает безрубцовое заживление.

Ключевые слова: термический ожог, наносекундные импульсы, гистологический анализ, микроволновое излучение, лабораторные крысы

Список литературы

  1. Алексеев А.А., Бобровников А.Э., Малютина Н.Б. Экстренная и неотложная медицинская помощь после ожоговой травмы // Медицинский алфавит. 2016. Т. 2. № 15(278). С. 6–12.

  2. Бессонов А.Е., Чемерис Н.К., Гапеев А.Б. Репаративная регенерация тканей под воздействием электромагнитных волн миллиметрового, инфракрасного и части видимого диапазонов, генерируемых терапевтическим аппаратом “Минитаг” НИР НЦИМ “ЛИДО” // Физ.-хим. основы информ. медицины. ИБК РАН. Пущино. 2000. С. 18.

  3. Гапеев А.Б., Чемерис Н.К. Механизмы биологического действия электромагнитного излучения крайне высоких частот на уровне организма // Биомедицинская радиоэлектроника. 2007. № 8–9. С. 30–46.

  4. Гапеев А.Б. Механизмы противовоспалительного и противоопухолевого действия низкоинтенсивного электромагнитного излучения крайне высоких частот // Миллиметровые волны в биологии и медицине. 2012. № 3. С. 3.

  5. Гостюхина А.А, Самойлова А.В, Большаков М.А., Мочалова В.М., Зайцев К. В., Кутенков О.П., Ростов В.В. Стимуляция заживления ожоговых ран у крыс наносекундным импульсно-периодическим микроволновым излучением // Известия РАН. Серия биологическая. 2022. № 5. С. 530–537. https://doi.org/10.31857/S1026347022050080

  6. Князева И.Р., Медведев М.А., Жаркова Л.П., Гостюхина А.А., Кутенков О.П., Ростов В.В., Большаков М.А. Действие наносекундного импульсно периодического микроволнового излучения на процессы регенерации // Бюллетень сибирской медицины. 2011. № 6. С. 109–113.

  7. Коржевский Д.Э. Основы гистологической техники. Санкт-Петербург: СпецЛит, 2010. 95 с.

  8. URL: http://sun.tsu.ru/limit/2016/000550786/000550786.pdf.

  9. Лушников К.В., Гапеев А.Б., Шумилина Ю.В. Снижение интенсивности клеточного иммунного ответа и неспецифического воспаления при действии электромагнитного излучения крайне высоких частот // Биофизика. 2003. Т. 38. № 5. С. 918–925.

  10. Ярцев В.В. Основы гистологической техники для зоологов: учебно-методическое пособие для биологических специальностей вузов [для студентов, обучающихся по направлению 06.04.01 Биология / авт.-сост.]. М-во науки и высш. образования, Нац. исслед. Том.гос. ун-т. Томск: Издательский Дом Томского государственного университета, 2019. 84 с.

  11. URL: http://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/vtls:000660316.

  12. Athanasiou A., Karkambounas S., Batistatou A. The effect of pulsed electromagnetic fields on secondary skin wound healing: an experimental study // Bioelectromagnetics. 2007. V. 28. P. 362–368.

  13. Atiyeh B.S, Costagliola M. Cultured epithelial autograft (CEA) in burn treatment: three decades later // Burns. 2007. V. 33. P. 405–413.

  14. Bainbridge P. Wound healing and the role of fibroblasts // J. Wound Care. 2013. V. 22. № 8. P. 407–412.

  15. Exbrayat J.M. Classical methods of visualization. Histochemical and cytochemical methods of visualization / Boca Raton, London, N.Y.: CRC Press Taylor and Francis Group, 2013. 367 p.

  16. Fox A., Smythe J., Fisher N., Tyler M.P.H., Mcgrouther D.A., Watt S.M., Harris A.L. Mobilization of endothelial progenitor cells into the circulation in burned patients // Br J Surg. 2008. V. 95. P. 244–251.

  17. Labus W., Kitala D., Klama-Baryla A., Szapski M., Kraut M., Smętek W., Glik J., Kucharzewski M., Rojczyk E., Utrata-Wesolek A., Trzebicka B., Szeluga U., Sobota M., Poloczek R., Kamiński A. Influence of electron beam irradiation on extracellular matrix of the human allogeneic skin grafts J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2022. V. 110(3). P. 547–563. https://doi.org/10.1002/jbm.b.34934

  18. Pilla A. Proposed electrochemical mechanism of EMF modulation of tissue repair // Thebioelectromagnetic society 30th annual meeting abstract collection, San Diego, California. 2008. P. 147.

  19. Rodrigo S.M., Cunha A., Pozza D.H., Blaya D.S., Moraes J.F., Blessmann J.B. Weber, Oliveira M.G. Analysis of the systemic effect of red and infrared laser therapy on wound repair // Photomed Laser Surg. 2009. V. 27(6). P. 929–935. https://doi.org/10.1089/pho.2008.2306

  20. Sakallioglu E.A., Basaran O., Ozdemir B.H., Arat Z., Yucel M., Haberal M. Local and systemic interactions related to serum transforming growth factor- b levels in burn wounds of various depths // Burns. 2006. V. 32. P. 980–985.

  21. Samoylova A.V., Gostyukhina A.A., Rostov V.V., Bolshakov M.A., Zaitsev K.V., Kutenkov O.P. Dynamics of Burn Wound Healing in Rats Irradiated by Nanosecond Microwave Pulses // Biomedical J. Scientific and Technical Research. 2020. V. 32. № 2. P. 24791–24792.

  22. Shpichka A., Butnaru D., Bezrukov E.A., Sukhanov R.B., Atal A., Burdukovskii V., Zhang Yu., Timashev P. Skin tissue regeneration for burn injury // Stem Cell Research & Therapy. 2019. V. 10. № 94. https://doi.org/10.1186/s13287-019-1203-3

  23. Strauch B., Herman C., Dabb R., Ignarro L.J., Pilla A.A. Evidence-based use of pulsed electromagnetic field therapy in clinical plastic surgery // Aesthet. Surg. J. 2009. № 29(2). P. 135–143. https://doi.org/10.1016/j.asj.2009.02.001

  24. Tracy L.E., Minasia R.A., Caterson E.J. Extracellular matrix and dermal fibroblast function in the healing wound // Adv Wound Care. 2016. V. 5. P. 119–136.

  25. Wang J.H.C., Thampatty B.P., Lin J.S., Im H.J. Mechanoregulation of gene expression in fibroblasts. Gene. 2007. V. 391. P. 1–15.

  26. Wood F.M., Kolybaba M.L., Allen P. The use of cultured epithelial autograft in the treatment of major burn injuries: a critical review of the literature // Burns. 2006. V. 32. P. 395–401.

Дополнительные материалы отсутствуют.

Инструменты

следующая статья выпуска предыдущая статья выпуска содержание выпуска

Известия РАН. Серия биологическая

Архивы выпусков Информация о журнале Отправить рукопись в журнал