1. На главную
  2. Электронные версии
  3. Известия РАН. Серия биологическая
  4. № 5, 2023

Известия РАН. Серия биологическая, 2023, № 5, стр. 520-530

Влияние pH на цитоморфологические параметры эритроцитов крови головастиков малоазиатской лягушки

Д. М. Гамидова 1, *, А. И. Рабаданова 1

Дагестанский государственный университет
367000 Махачкала, ул. Магомеда Гаджиева, 43а, Россия

* E-mail: Djamka_90@mail.ru

Поступила в редакцию 23.05.2022
После доработки 27.04.2023
Принята к публикации 28.04.2023

Аннотация

В статье представлены результаты исследований влияния кислых (4.0, 5.0) и щелочной (9.0) значений рН на цитоморфологические параметры эритроцитов крови головастиков малоазиатской лягушки. Показано негативное влияние рН 4.0 на цитоморфологические особенности эритроцитов, выражающееся в уменьшении их геометрических параметров (площади, объема), что в итоге приводит к ухудшению выполняемой ими функции. Изменения линейных и геометрических параметров клеток крови головастиков при воздействии рН 5.0 и 9.0 в обеих сериях эксперимента позволяют судить об их направленности на повышение эффективности транспорта кислорода, то есть носят компенсаторный характер.

Ключевые слова: эритроциты, кислотность среды, рН, головастики, малоазиатская лягушка

Список литературы

  1. Аскендеров А.Д. Земноводные Дагестана: распространение, экология, охрана: дис. … канд. биол. наук. Ин-т экологии Волжского бассейна РАН, 2017. 223 с.

  2. Донкова Н.В., Рубай А.А. Цитологические и морфометрические особенности клеток крови тритона до и после тотальной резекции конечностей // Вестник КрасГАУ. 2017. № 6. С. 57–64.

  3. Сурова Г.С. Изменение абиотических условий при содержании головастиков с разной плотностью (на примере личинок травяной лягушки-Rana temporaria и серой жабы-Bufo bufo) // Совр. герпетология. 2010. Т. 10. № 1/2. С. 26–39.

  4. Замалетдинов Р.И., Назаров Н.Г., Свинин А.О., Дробот Г.П., Сальникова Е.Ю. Биохимические особенности периферической крови особей прудовой лягушки Pelophylax lessonae (Camerano, 1882) из популяций, населяющих водоемы города Казани // Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. 2019. № 1(25). С. 41–49. https://doi.org/10.21685/2307-9150-2019-1-5

  5. Шварц С.С. Метод морфофизиологических индикаторов в экологии наземных позвоночных. Свердловск, 1968. 386 с.

  6. Arikan H. Anadolu’daki Rana ridibunda (Anura, Ranidae) populasyonlarinin kan hücrelerinin sayisi bakimindan incelenmesi // Turkish J. zoology, Ankara. 1989. V. 13. P. 54–59.

  7. Arikan H. Rana ridibunda (Anura, Ranidae) populasyonlari üzerinde morfolojik ve serolojik aratirmalar // Turkish J. zoology, Ankara. 1990. V. 14. P. 40–83.

  8. Arikan H., Çevik E.E., Kaya U., Mermer A. Anadolu’daki dag kurbagalarinda eritrosit ölçümleri // Anadolu university Journal of science and Technology, Eskiehir. 2001. V. 2. P. 387–391.

  9. Atatür M.K., Arikan H., Çevik E.E. Erythrocyte sizes of some anurans from Turkey // Turkish J. zoology, Ankara. 1999. V. 23. P. 111–114.

  10. Arserim S.K., Mermer A. Hematology of the Uludağ Frog, Rana macrocnemis Boulenger, 1885 in Uludağ National Park (Bursa, Turkey). E.U. Turk. // J. Fish. Aquat. 2008. Sc. 25. 39–46.

  11. Baraquet M. Intraspecific variation in erythrocyte sizes among populations of Hypsiboas cordobae (Anura: Hylidae) // Acta Herpetologica. 2013. № 8(2) P. 93–97. https://doi.org/10.13128/Acta_Herpetol-12954

  12. Baraquet M., Salas N.E., Martino A.L. Variation in the erythrocyte size among larvae, juveniles and adults of Hypsiboas cordobae(Anura, Hylidae) // Basic and Applied Herpetology. 2014. V. 28. P. 137–143. https://doi.org/10.11160/bah.12010

  13. Beebee T.J.C. Amphibian breeding and climate. Nature. 1995. V. 374. P. 219–220.

  14. Bondarieva A., Bibik Y.S., Samilo S.M., Shabanov D.A. Erythrocytes cytogenetic characteristics of green frogs from Siversky Donets centre of Pelophylax esculentus complex diversity // KarazinKharkiv Natl. Univ. Ser. Biol. 2012. V. 15. P. 116–123.

  15. Böhmer J., Rahmann H.Influence of surface water acidification on Amphibia // Fortsch. Zool. 1990. V. 38. P. 287–309.

  16. Claver J.A., Agustin I.E., Comparative Morphology, Development, and Function of Blood Cells in Nonmammalian Vertebrates // J. Ex. Pet Medicine. 2009. V. 18. P. 87–97. https://doi.org/10.1053/j.jepm.2009.04.006

  17. Cooke A.S. Tadpoles as indicators of harmful levels of pollution in the field // Environ. Pollut. 1981. V. 25. P. 23–133.

  18. Cummins C.P. Effects of aluminium and low pH on growth and development in Rana temporaria tadpoles // Qscologiab (Berlin). 1986. V. 69. P. 248–252.

  19. D’Amen M., Vignoli L., Bologna M.A. The effects of temperature and pH on the embryonic development of two species of Triturus (Caudata: Salamandridae) // Amphibia-Reptilia. 2007. V. 28. P. 295–300. https://doi.org/10.1163/156853807780202521

  20. Das M., Mahapatra P.K. Blood cell profiles of the tadpoles of the Dubois’s tree frog, Polypedates teraiensis Dubois, 1986 (Anura: Rhacophoridae) // Scientific World J. 2012. 701746. https://doi.org/10.1100/2012/701746

  21. Davis A.K. The use of leukocyte profiles to measure stress in vertebrates: a review for ecologist // Functional Ecology. 2008a. V. 22. P. 760–772. https://doi.org/10.1111/j.1365-2435.2008.01467.x

  22. Davis A.K. Ontogenetic changes in erythrocyte morphology in larval mole salamanders, Ambystoma talpoideum, measured with image analysis // Comp Clin Pathol. 2008б. V. 17. P. 23–28. https://doi.org/10.1007/s00580-007-0702-2

  23. Dönmez F., Tosunoğlu M., Gül Ç. Hematological values in hermaphrodite, Bufo bufo (Linnaeus, 1758) // NorthWestern J. Zoology. 2009. V. 5. P. 97–103.

  24. Freda J., Dunson W.A. Field and laboratory studies of ion balance and growth rates of Ranid tadpoles chronically exposed to low pH // Copeia 1985. P. 415˗423.

  25. Gao Z., Wang W., Abbas K., Zhou X., Yang Y., Diana J.S., Wang H., Wang H., Li Y., Sun Y. Haematological characterization of loach Misgurnus anguillicaudatus: Comparison among diploid, triploid and tetraploid specimens // Comp. Bio. Phys. A. 2007. V. 147. P. 1001–1008. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2007.03.006

  26. Gardner T. Declining amphibian population: a global phenomenon in conservation biology // Animal Biodiversity and Conservation. 2001. V. 24.2. P. 25–44.

  27. Gosner K.L. A simplified table for staging anuran embryos and larvae with notes on identification // Herpetologica. 1960. V. 16. P. 183–190.

  28. Gregory T.R. The bigger the value, the larger the cell: genome size and red blood cell size in vertebrates // Blood Cells, Molecules, and Diseases. 2001. V. 27. P. 830˗843. https://doi.org/10.1006/bcmd.2001.0457

  29. Grenat P.R., Bionda C.L., Salas N.E., Martino A.L. Variation in erythrocyte size between juveniles and adults of Odontophrynus americanus // Amphibia-Reptilia. 2009a. V. 30. P. 141–145.

  30. Grenat P.R., Salas N.E., Martino A.L. Erythrocyte size as diagnostic character for the identification of live cryptic Odontophrynus americanus and O. cordobae (Anura: Cycloramphidae) // Zootaxa. 2009b. V. 2049. P. 67–68. https://doi.org/10.11646/zootaxa.2049.1.3

  31. Griffiths R.A., de Wijer P. Differential effect of pH and temperature on embryonic development in the British newts (Triturus) // J. Zool., Lond. 1994. V. 234. P. 613–622.

  32. Kozlowski J., Czarnoleski M., François-Krassowska A., Maciak S., Pis T. Cell size is positively correlated between different tissues in passerine birds and amphibians, but not necessarily in mammals // Biol Lett. 2010. V. 6. P. 792–796. https://doi.org/10.1098/rsbl.2010.0288

  33. Mazanaeva L.F. The distribution of Amphibians in Daghestan // Advances in Amphibian Research in the Former Soviet Union. Sophia. 2000. V. 5. P. 141–156.

  34. Mueller R.L., Gregory T.R., Gregory S.M., Hsieh A., Boore J.L. Genome size, cell size, and the evolution of enucleated erythrocytes in attenuate salamanders // Zoology (Jena). 2008. V. 111(3). P. 218–230. https://doi.org/10.1016/j.zool.2007.07.010

  35. Muths E., Campbell D.H., Corn P.S. Hatching success in salamanders and chorus frog at two sites in Colorado USA: effects of acidic deposition and climate // Amphibia-Reptilia. 2003. V. 24. P. 27–36. https://doi.org/10.1163/156853803763806911

  36. Passantino L., Massaro M.A., Jirillo F., Modugno D. Di., Ribaud M.R., Modugno G.Di., Passantino G.F., Jirillo E. Antigenically activated avian erythrocytes release cytokine-like factors: a conserved phylogenetic function discovered in fish // Immunopharmacol Immunotoxicol. 2007. V. 29. P. 141–152. https://doi.org/10.1080/08923970701284664

  37. Pierce B.A., Wooten D.K. Acid tolerance of Ambystoma texanum from central Texas // J. Herp. 1992. V. 26. P. 230–232.

  38. Pough F.H., Wilson R.E. Acid precipitation and reproductive success of Ambystoma salamanders / Proc. Internat. Symp. Acid Rain and Forest Ecosystem 1. 1976. P. 531–544.

  39. Pounds J.A. Climate and amphibian declines // Nature. 2001. V. 410. P. 639–640. https://doi.org/10.1038/35070683

  40. Saber P.A., Dunson W.A. Toxicity of bog water to embryonic and larval anuran amphibians. J. Exp. Zool 1978. V. 204. P. 33–42.

  41. Zhelev Z.M., Angelov M.V., Mollov I.A. A Study of some metric parameters of the erythrocytes in Rana ridibunda (Amphibia: Anura) derived from an area of highly developed chemical industry // Acta Zool. Bulgar. 2006. V. 58. P. 235–244.

  42. Velcheva I., Arnaudov A., Gecheva G., Mollov I. A study on some physiological parameters of three hydrobiotic species under the influence of copper // Proceedings of 2nd International Symposium of Ecologists of Montenegro, Kotor. 2006. P. 155–161.

Дополнительные материалы отсутствуют.

Инструменты

следующая статья выпуска предыдущая статья выпуска содержание выпуска

Известия РАН. Серия биологическая

Архивы выпусков Информация о журнале Отправить рукопись в журнал