Агрохимия, 2020, № 10, стр. 72-78
Исследование влияния антибиотиков различных групп на целлюлозолитическую активность дерново-подзолистой почвы методом лабораторного моделирования
Т. А. Трифонова 1, 2, С. М. Чеснокова 1, А. Г. Космачева 1, *
1 Владимирский государственный университет им. А.Г. и Н.Г. Столетовых
600000 Владимир, ул. Горького, 87, Россия
2 Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
119991 Москва, Ленинские горы, 1, стр. 12, Россия
* E-mail: hijadelaluna@mail.ru
Поступила в редакцию 08.10.2019
После доработки 02.03.2020
Принята к публикации 10.07.2020
Аннотация
Исследовали влияние антибиотиков различных групп (бензилпенициллина, окситетрациклина и тилозина) на целлюлозолитическую активность окультуренной легкосуглинистой дерново-подзолистой почвы при индивидуальном и комбинированном воздействии в модельном эксперименте. Целлюлозолитическую активность почвы оценивали по потере массы хлопчатобумажной ткани в загрязненной антибиотиками почве. Установлено, что при индивидуальном воздействии эффекты проявлялись в зависимости от вида антибиотика и его концентрации. Тилозин оказывал явно выраженный эффект ингибирования целлюлозолитической активности, а бензилпенициллин и окситетрациклин стимулировали процесс разложения целлюлозы. При комбинированном воздействии окситетрациклина и тилозина отмечено ингибирование разложения хлопчатобумажного полотна. При комбинированном воздействии бензилпенициллина и тилозина биологические эффекты варьировались в зависимости от их концентрации в почве. При влиянии трехкомпонентной смеси использованных антибиотиков эффекты воздействия проявлялись весьма слабо, т.е. функционирование комплекса целлюлозоразрушающих микроорганизмов в исследованной почве не нарушалось. Определены корреляционные зависимости между концентрацией антибиотиков и эффектами их воздействия.
ВВЕДЕНИЕ
Целлюлозолитическая активность почв является наиболее чувствительным комплексным показателем нарушения деятельности микробиоценоза почв в результате ее загрязнения и в целом отражает экологическую ситуацию, т.к. целлюлоза в почве разрушается представителями разных систематических групп микроорганизмов – от грибов до аэробных и анаэробных бактерий [1–3]. Деятельность целлюлозоразрушающих микроорганизмов обеспечивает сопряжение биологических и геологических круговоротов в почве, уровень плодородия и биохимической активности почвы и зависит как от антропогенных, так и природных факторов [1]. В настоящее время достаточно хорошо изучено влияние на целлюлозолитическую активность почв тяжелых металлов [4], нефти и нефтепродуктов [5], минеральных и органических удобрений и способов обработки почв [6–8].
Тем не менее, слабо изучено влияние антибиотиков, как загрязнителей различных компонентов природной среды. Эти поллютанты во всех странах мира обнаружены в почвах, поверхностных и сточных водах, осадках сточных вод и отнесены к наиболее опасным загрязнителям различных экосистем вследствие их значительного негативного влияния на структуру микробиоценоза и ферментативную активность почвы [9–13], а также распространения в окружающей среде опасных для здоровья человека и животных антибиотикорезистентных патогенных микроорганизмов [14].
Значительная часть медицинских и ветеринарных антибиотиков хорошо растворимы в воде и из организма человека и животных выделяются в окружающую среду с мочой (до 90%) и экскрементами (≈75%) [9].
В почвы антибиотики поступают с навозом крупного рогатого скота, свиней и птицы и осадками сточных вод сооружений биологической очистки, используемых в качестве органического удобрения [9]. В отличие от стран ЕС и США, в России осуществляется только мониторинг содержания антибиотиков в продуктах питания органами Роспотребнадзора. В силу различных причин мониторинг загрязнения антибиотиками почв сельскохозяйственных угодий не проводят. Известно использование в России антибиотиков при исследовании вклада грибов и бактерий в субстрат-индуцированное дыхание почвы, определении структуры микробного сообщества (грибы/бактерии) в почвах разных экосистем и оценке вклада грибного и бактериального компонентов в продуцирование CO2 и N2O дерново-подзолистыми почвами постаграрных биогеоценозов [15–17].
Изучали также влияние различных антибиотиков на структуру микробиоценоза и ферментативную активность чернозема обыкновенного: было показано, что наиболее токсичными для микробиоценоза этих почв являлись антибактериальные антибиотики, менее токсчичными – фунгицидные [18]. Изучено воздействие антибиотиков на активность пероксидазы, каталазы, полифенолоксидазы, дегидрогеназы, инвертазы, фосфотазы [18]. Однако влияние антибиотиков на целлюлозолитическую активность не изучали. Так как значительную часть пахотных земель Владимирской обл. составляют дерново-подзолистые почвы, представляло интерес исследование влияния наиболее широко используемых в медицине и ветеринарии антибиотиков на целлюлозолитическую активность такой почвы. Цель работы – исследование влияния антибиотиков различных групп на целлюлозолитическую активность дерново-подзолистой почвы при их индивидуальном и комбинированном воздействии методом лабораторного моделирования.
МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ
Объект исследования – дерново-подзолистая легкосуглинистая почва с участка сельскохозяйственного назначения на территории Суздальского р-на Владимирской обл. [19]. Почвенные образцы отбирали из верхнего слоя почвы (0–20 см) в соответствии с ГОСТ 17.4.4.02-84. Агрохимические показатели почвы приведены в табл. 1.
Таблица 1.
Показатель | Величина показателя | Методика исследования |
---|---|---|
Кислотность солевой вытяжки, pHKCl, ед. pH | 5.83 ± 0.1 | ГОСТ 26483-85 |
Кислотность обменная, ммоль/100 г почвы | 0.03 ± 0.01 | ГОСТ 26484-85 |
Кислотность гидролитическая, ммоль/100 г почвы | 1.53 ± 0.18 | ГОСТ 26212-91 |
P2O5 подвижный, мг/кг | 178 ± 35.60 | ГОСТ Р 54650-2011 |
K2O подвижный, мг/кг | 161.0 ± 24.15 | ГОСТ Р 54650-2011 |
Органическое вещество (гумус), % | 2.38 ± 0.48 | ГОСТ 26213-91 |
Азот аммонийный, мг/кг | 1.64 ± 0.33 | ГОСТ 26489-85 |
Азот нитратный, мг/кг | 2.44 ± 0.73 | ГОСТ 26951-86 |
Содержание глины, % | 27.8 ± 0.03 | ГОСТ 12536-2014 |
Целлюлозолитическую активность почвы определяли в лабораторных условиях модифицированным аппликационным методом Кристенсена [20]. Данный метод основан на выявлении доли (в %) разложившейся целлюлозы. Преимущество лабораторного метода состоит в возможности поддержания заданных оптимальных условий (температуры и влажности) для жизнедеятельности целлюлозолитических микроорганизмов. Опыт проводили в четырехкратной повторности. В качестве источника целлюлозы использовали хлопчатобумажное полотно. Для проведения эксперимента на дно каждой стерильной чашки Петри помещали кусок хлопчатобумажной ткани размером 3 × 4 см, предварительно выдержанный в сушильном шкафу при 105°С в течение 2 ч и взвешенный на аналитических весах с погрешностью 0.0001 г. Далее в каждую чашку Петри добавляли 50 г исследуемой почвы, увлажненной до 60% ПВ и загрязненной антибиотиками в концентрациях, соответствующих 50–700 мг/кг почвы. Антибиотики в образцы почв вводили в виде водных растворов, приготовленных путем разбавления исходного раствора с концентрацией 10 мг/см3. В качестве контроля использовали почву без внесения антибиотиков. Чашки Петри взвешивали, помещали в термостат и инкубировали при температуре 27°С в течении 30 сут. Ежедневно чашки взвешивали и доводили до исходной массы дистиллированной водой. По прошествии 30 сут остатки ткани извлекали из чашек Петри, очищали от почвы, высушивали при 105°C и взвешивали на аналитических весах. Показателем целлюлозолитической активности почвы служит разница в массе ткани (%), разложившейся за время опыта.
Целлюлозолитическая активность исследованной почвы без внесения антибиотиков (контроль) равнялась 47.4 ± 4.2%, что соответствовало средней интенсивности разрушения целлюлозы [20]. Невысокий уровень целлюлозолитической активности исследованной почвы связан с низким содержанием в ней нитратного азота [21].
В работе использовали препараты антибиотиков окситетрациклина и бензилпенициллина в виде порошков для приготовления инъекционного раствора, расфасованные в пенициллиновые склянки в количестве 1 г (1 000 000 ЕД), тилозин – в лекарственной форме раствора для инъекций с концентрацией 200 мг д.в./см3. Исходные растворы антибиотиков с концентрацией 10 мг/см3 готовили путем разбавления препаратов в дистиллированной воде. Исследованные концентрации антибиотиков были выбраны на основании литературных данных об их количествах, обнаруженных в почвах [18], и для рассмотрения эффектов их влияния в случаях экстремального загрязнения почв санитарных защитных зон фармацевтических предприятий и крупных животноводческих комплексов и птицефабрик.
Для статистической обработки результатов исследования использовали программы Microsoft Excel и Statistica 8. В качестве погрешности указаны величины стандартной ошибки эксперимента.
В работе использовали окситетрациклин – бактериостатический антибиотик, подавляет синтез белка на рибосомах. Образуется бактериями рода Streptomyces. Обладает широким антибиотическим спектром в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий. Окситетрациклин применяют в медицинской практике и ветеринарии для лечения ряда бактериальных заболеваний и риккетсиозов, а также в животноводстве для увеличения скорости роста и массы животных и птиц [22, 23]. Этот эффект достигается за счет изменения структуры микрофлоры кишечника и повышения усвояемости растительной пищи животными [23].
Бензилпенициллин относится к группе β-лактамных антибиотиков, образуется мицелиальными грибами рода Penicillium. Эффективен против некоторых грамположительных бактерий, не оказывает действия на грамотрицательные бактерии, грибы и другие группы организмов. Механизм действия основан на ингибировании синтеза пептидогликана – основного компонента клеточной стенки бактерий. Проявляет как бактерицидное, так и бактериостатическое действие. Антибиотик широко применяют в медицине и ветеринарии [22].
Тилозин – антибиотик группы макролидов. Образуется культурой Streptomyces fradiae. Оказывает бактериостатическое действие, подавляя синтез белка, воздействуя на бактериальные рибосомы, применяется в животноводстве, в качестве добавок к кормам животных, а также как консервант в пищевой промышленности для подавления развития плесневых грибков при хранении продуктов [22, 24].
В почвы антибиотики обычно попадают вместе с навозом, осадками сточных вод и стоками с территорий птицефабрик и ферм крупного рогатого скота.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
Было установлено, что эффекты индивидуального воздействия антибиотиков на целлюлозолитическую активность исследованной почвы зависели как от их свойств, так и от их концентрации (рис. 1). Биологические эффекты их воздействия на целлюлозоразрушающую микробиоту в разной степени возрастали при увеличении их концентраций.
Тилозин во всем диапазоне исследованных концентраций ингибировал процесс разрушения хлопчатобумажного полотна, проявляя слабую острую (EC 10 = 100 мг/кг) и слабую хроническую токсичность (EC 50 = 680 мг/кг). Вероятно, этот эффект был связан с угнетением тилозином комплекса целлюлозолитических ферментов, выделяемых микобиотой – основного участника разложения целлюлозы в дерново-подзолистых почвах и целлюлозоразрушающих прокариотов [2, 3, 16–18, 25, 27].
При индивидуальном воздействии бензилпенициллина и окситетрациклина происходила достаточно заметная стимуляция разрушения хлопчатобумажного полотна в чашках Петри, что, по-видимому, было связано со смещением структуры микробиоценоза почвы в сторону увеличения биомассы грибов из-за снижения количества бактерий [22, 26]. Эти результаты хорошо согласуются с данными, полученными при изучении воздействия сульфамидов и тетрациклина на структуру почвенной микробиоты [26].
При комбинированном воздействии бинарных смесей антибиотиков тилозин подавлял эффекты стимуляции целлюлозолитической активности бензилпенициллином и окситетрациклином (рис. 2). Причем эффект комбинированного воздействия тилозина и окситетрациклина был идентичен эффекту индивидуального воздействия тилозина, т.е. происходило существенное ингибирование активности целлюлозоразрушающих микроорганизмов.
Исходя из этого, можно полагать, что при длительном систематическом поступлении в дерново-подзолистые почвы антибиотиков бензилпенициллина и окситетрациклина, в результате увеличения целлюлозолитической активности микобиоты, может произойти нарушение баланса углерода в почве и снижение ее плодородия.
При комбинированном воздействии окситетрациклина и бензилпенициллина в целом происходила стимуляция целлюлозолитической активности почвы. Однако эти эффекты были меньше, чем при индивидуальном воздействии этих антибиотиков, т.е. наблюдали эффект антагонизма.
Эффекты комбинированного воздействия бензилпенициллина и тилозина варьировались в зависимости от их концентрации. В интервале концентраций 50–100 и 400–700 мг/кг происходила незначительная стимуляция разложения хлопчатобумажного полотна. В интервале концентраций 150–300 мг/кг отмечена суммация положительного (стимуляция) и отрицательного (ингибирование) биологических эффектов.
При комбинированном воздействии смеси 3-х антибиотиков в интервале концентраций 50–300 мг/кг наблюдали незначительную стимуляцию разложения полотна, а в интервале 400–700 мг/кг процесс разложения целлюлозы практически не происходил.
Рассчитаны корреляционные зависимости “доза–эффект” при индивидуальном и комбинированном воздействии бинарных и трехкомпонентных смесей антибиотиков на процесс разложения целлюлозы в модельном эксперименте с указанием доверительных интервалов (табл. 2). Показано, что существует высокая корреляционная зависимость между степенью ингибирования разрушения целлюлозы и концентрацией антибиотиков при воздействии тилозина и комбинированном влиянии смеси тилозина и окситетрациклина. Также отмечена высокая корреляционная зависимость между степенью стимулирования целлюлозолитической активности и концентрацией бензилпенициллина при его индивидуальном воздействии; средняя корреляционная зависимость – между степенью стимулирования разрушения целлюлозы и концентрацией окситетрациклина. Корреляционная зависимость не обнаружена между концентрацией и их биологическими эффектами при комбинированном воздействии бинарных смесей бензилпенициллина и окситетрациклина, бензилпенициллина и тилозина, а также трехкомпонентной смеси антибиотиков.
Таблица 2.
Вариант | Коэффициент корреляции (r) | Доверительный интервал (p) |
---|---|---|
Окситетрациклин | 0.67 | 0.04 |
Бензилпенициллин | 0.79 | 0.01 |
Тилозин | –0.90 | 0.00 |
Окситетрациклин + + тилозин | –0.95 | 0.00 |
Бензилпенициллин + + тилозин | –0.50 | 0.15 |
Окситетрациклин + + бензилпенициллин | 0.17 | 0.64 |
Смесь 3-х антибиотиков | –0.29 | 0.41 |
Исходя из полученных результатов, можно предположить, что наибольшую опасность для исследованной дерново-подзолистой почвы представляет ее загрязнение антибиотиками только какой-либо одной группы, которое может вызвать либо существенное замедление разложения пожнивных остатков, либо, наоборот, значительное ускорение их разложения, но что во всех случаях будет приводить к снижению почвенного плодородия.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Таким образом, впервые изучены эффекты воздействия антибиотиков различных групп на целлюлозолитическую активность дерново-подзолистой почвы методом лабораторного моделирования при индивидуальном и комбинированном воздействии бинарных и трехкомпонентных смесей. Было установлено, что эффекты влияния антибиотиков на целлюлозолитическую активность легкосуглинистой дерново-подзолистой почвы при индивидуальном воздействии зависели от вида препарата и возрастали с увеличением их концентрации в почве. Тилозин ингибировал процессы разрушения целлюлозы, благодаря широкому бактериостатическому спектру действия как против грамположительных, так и против грамотрицательных организмов. Кроме этого, в связи с содержанием в препарате дополнительных веществ (пропандиола и бензилового спирта), обладающих антисептическими свойствами [28, 29], возможно он способен проявлять и фунгицидное воздействие, вследствие чего подавляется активность микроскопических грибов – основных разрушителей целлюлозы в дерново-подзолистой почве.
Эффекты стимуляции разложения целлюлозы при индивидуальном воздействии наблюдали для антибиотиков с антибактериальным спектром действия (бензилпенициллина и окситетрациклина). Можно предположить, что это было связано со смещением структуры микробиоценоза почвы в сторону увеличения доли микобиоты при снижении количества прокариотических организмов, исходя из аналогичных данных, описанных в литературе [22, 26]. При комбинированном воздействии различных антибиотиков на почвенную биоту разрушение целлюлозы было слабовыраженным.
Обнаружена корреляционная зависимость между степенью ингибирования целлюлозолитической активности и концентрацией при индивидуальном воздействии тилозина (r = 0.90) и комбинированном воздействии тилозина и окситетрациклина (r = 0.95), а также между степенью стимулирования целлюлозолитической активности бензилпенициллином (r = 0.79) и окситетрациклином (r = 0.67).
Присутствие антибиотиков в дерново-подзолистой почве оказывало неоднозначное влияние на процесс разложения клетчатки: они могли как стимулировать, так и ингибировать целлюлозолитическую активность почвенных микроорганизмов.
Список литературы
Полянская Л.М., Звягинцев Д.Г. Содержание и структура микробной биомассы как показатель экологического состояния почв // Почвоведение. 2005. № 6. С. 706–714.
Шипилин Н.Н. Техногенно загрязненные почвы пашни и их биоиндикация: Автореф. дис. … канд. с.-х. наук. Барнаул, 1996. 20 с.
Мишустин Е.Н. Ассоциации почвенных микроорганизмов. М.: Наука, 1975. 169 с.
Громакова Н.В., Минкина Т.М., Манджиева С.С., Чаплыгин В.А., Бауэр Т.В., Сушкова С.Н. Влияние подвижных форм тяжелых металлов на показатели целлюлозоразлагающей и уреазной активности чернозема обыкновенного (модельный эксперимент) // Агрохимия. 2017. № 2. С. 73–81.
Колесников С.И., Казеев К.Ш., Вальков В.Ф., Азнаурьян Д.К., Жаркова М.К. Биодиагностика экологического состояния почв, загрязненных нефтью и нефтепродуктами. Ростов н/Д.: Росиздат, 2007. 192 с.
Щур А.В., Виноградов Д.В., Валько В.П. Целлюлозолитическая активность почв при различных уровнях агротехнического воздействия // Вестн. КрасГАУ. 2015. № 7. С. 45–49.
Климкина Ю.М. Влияние удобрений на урожайность ячменя и целлюлозолитическую активность дерново-подзолистой почвы // Агрохим. вестн. 2015. № 3. С. 34–36.
Зинченко М.К., Бибик Т.С., Стоянова Л.Г. Влияние систем удобрения на жизнедеятельность отдельных физиологических групп микроорганизмов в серой лесной почве Владимирского ополья // Фундамент. исслед-я. 2014. № 12. С. 552–557.
Kaczala F., Blum S.E. The Occurrence of veterinary pharmaceuticals in the environment: A Review // Current Analyt. Chem. 2016. V. 12. P. 169–182.
Chen W., Liu W., Pan N., Jiao W., Wang M. Oxytetracycline on functions and structure of soil microbial community // J. Soil Sci. Plant Nutr. 2013. V. 13. P. 967–975.
Liu W., Pan N., Chen W., Jiao W., Wang M. Effect of veterinary oxytetracycline on functional diversity of soil microbial community // Pant Soil Environ. 2012. V. 58. P. 295–301.
Grenni P., Ancona V., Caracciolo A.B. Ecological effects of antibiotics on natural ecosystems: A review // Microchem. J. 2018. V. 136. P. 25–39.
van de Vijver L., Verwer C., Smolders G., Hospers-Brands M., van Eekeren N. The cycle of veterinary antibiotics in the ecosystem. Louis Bolk Institute, 2016. P. 31.
Всемирная организация здравоохранения. Глобальная стратегия ВОЗ по сдерживанию устойчивости к противомикробным препаратам. Женева: ВОЗ, 2001. 168 с.
Ананьева Н.Д., Сусьян Е.А., Чернова О.В., Чернов И.Ю., Макарова О.Л. Соотношение грибов и бактерий в биомассе разных типов почв, определяемое селективным ингибированием // Микробиология. 2006. Т. 5. № 6. С. 807–813.
Сусьян Е.А., Ананьева Н.Д., Благодатская Е.В. Разделение грибного и бактериального субстрат-индуцированного дыхания с использованием антибиотиков в почвах разных экосистем // Микробиология. 2005. Т. 74. № 3. С. 394–400.
Ананьева Н.Д., Стольникова Е.В., Сусьян Е.А., Ходжаева А.К. Грибная и бактериальная микробная биомасса (селективное ингибирование) и продуцирование CO2 и N2O дерново-подзолистыми почвами постаграрных биогеоценозов // Почвоведение. 2010. № 11. С. 1387–1393.
Акименко Ю.В. Влияние загрязнения антибиотиками на биологические свойства чернозема обыкновенного: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Ростов-н/Д., 2015. 24 с.
Герасимова М.И., Красильников П.В. Мировая реферативная база почвенных ресурсов 2014. Международная система почвенной классификации для диагностики почв и создания легенд почвенных карт. Исправл. и допол. верс. 2015. Продовольственная и сельскохозяйственная организация объединенных наций, Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова. Рим, 2018. 216 с.
Основные микробиологические и биохимические методы исследования почвы: метод. рекоменд. / Под ред. Возняковской Ю.М. Л.: ВНИИСХМ, 1987. 47 с.
Лазарев А.П., Абрашин Ю.И., Гордеюк Л.Л. Целлюлозолитическая активность обрабатываемого чернозема обыкновенного лесостепной зоны Ишимской равнины // Почвоведение. 1997. № 10. С. 1230–1234.
Егоров Н.С. Основы учения об антибиотиках. М.: Изд-во МГУ, 2004. 528 с.
Хохрин Н.С. Кормление сельскохозяйственных животных. М.: КолосС, 2004. 692 с.
Голубев В.Н., Чичева-Филатова Л.В., Шленская Т.В. Пищевые и биологически активные добавки. М.: Академия, 2003. 208 с.
Титова В.И., Козлов А.В. Методы оценки функционирования микробиоценоза почвы, участвующего в трансформации органического вещества: Научн.-метод. пособ. / Нижегородская СХА. Н. Новгород, 2012. 64 с.
Thiele-Bruhn S., Beck I.C. Effects of sulfonamide and tetracycline antibiotics on soil microbial activity and microbial biomass // Chemosphere. 2005. V. 59. P. 457–465.
Благовещенская Г.Г., Духанина Т.М. Микробные сообщества почв и их функционирование в условиях применения средств химизации // Агрохимия. 2004. № 2. С. 80–88.
Encyclopedia of Toxicology. 2nd Edit. / Eds. Anderson B., de Peyster A., Gad S.C., Hakkinen P.J.B., Kamrin M., Locey B., Mehendale H.M., Pope C., Shugart L., Wexler P. Academic Press, 2005. 2000 p.
Химическая энциклопедия: в 5 т. / Под ред. Зефирова Н.С. М.: БРЭ, 1995. Т. 4. С. 103–104.
Дополнительные материалы отсутствуют.