Агрохимия, 2022, № 12, стр. 14-18

Влияние диэтилмалеата на активность глутатион-s-трансферазы имаго Musca domestica L.

А. Г. Кинарейкина 1, Е. А. Силиванова 1*

1 Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной энтомологии и арахнологии – филиал ТюмНЦ СО РАН
625517 Тюменская обл., Тюменский р-н, с. Мальково, ул. Мира, 5, Россия

* E-mail: sylivanovaea@mail.ru

Поступила в редакцию 07.07.2022
После доработки 10.08.2022
Принята к публикации 15.09.2022

Полный текст (PDF)

Аннотация

Диэтилмалеат (DEM) – синергист инсектицидных соединений, который применяют при изучении механизмов инсектицидной устойчивости насекомых. Оценена гибель самок и самцов комнатной мухи Musca domestica L. после топикального нанесения DEM в разных дозах (0.2–5.0 мкг/особь), а также активность глутатион-S-трансферазы (GST) у выживших особей через 1 и 48 ч после обработки. Доза DEM, не приводившая к гибели насекомых, составила 0.2 и 0.5 мкг/особь для самцов и самок соответственно. Топикальное нанесение DEM в дозе 2 мкг/особь не приводило к статистически значимому изменению активности GST у самок и самцов Musca domestica L. по сравнению с контрольными особями, при этом гибель насекомых не превышала допустимый уровень (5%). Использование DEM в качестве ингибитора GST в дозе 5 мкг/особь, вызывавшей 10–30%-ную гибель M. domestica обоего пола, может не приводить к угнетению активности целевого фермента у самок в отличие от самцов.

Ключевые слова: синергисты инсектицидов, ингибиторы, ферменты детоксикации, самки, самцы, комнатная муха.

ВВЕДЕНИЕ

Синергисты инсектицидов – это химические вещества, которые при использовании их в сублетальных концентрациях способны значительно повышать токсичность инсектицида для насекомых [1, 2]. Синергисты могут улучшать проникновение, транспортировку или доступность инсектицида, выступать в качестве суррогатных субстратов или ингибиторов ферментов детоксикации и белков-транспортеров, изменяя тем самым ответную реакцию насекомого на пестицид [1, 2]. Синергисты представляют коммерческий интерес, поскольку их сочетание с инсектицидами повышает эффективность последних, что помогает свести использование пестицидов к минимуму и является полезным в преодолении инсектицидной резистентности насекомых [2]. Синергисты, обладающие активностью в отношении специфических ферментных систем детоксикации, используют для изучения механизмов устойчивости к инсектицидам и определения конкретных метаболических путей [3].

Диэтилмалеат (Diethyl maleate, DEM) является синергистом, который обычно используют в качестве ингибитора глутатион-S-трансфераз (GSTs, КФ 2.5.1.18) насекомых для выявления метаболической устойчивости или для повышения эффективности инсектицидов [37]. Глутатион-S-трансферазы представляют семейство ферментов II фазы детоксикации, которые катализируют реакцию с восстановленным глутатионом (GSH) и конъюгируют ксенобиотические соединения через сульфгидрильную группу, образуя более растворимое соединение, которое может выводиться из организма [8]. DEM способен конъюгировать GSH, что снижает способность GSTs использовать его для конъюгации с инсектицидами или с продуктами окислительного стресса, который они вызывают [9].

Как правило, синергистические соединения применяют в концентрациях и дозах, которые не приводят или приводят к очень низкой смертности насекомых, но являются достаточно высокими для достижения максимального ингибирования целевых ферментов детоксикации [2]. Диапазон концентраций DEM, используемых при изучении механизмов резистентности, довольно широк и составляет от 0.96 [10] до 25–50 мкг/особь [7, 11] для разных видов насекомых. В опубликованных исследованиях механизмов инсектицидной устойчивости комнатной мухи Musca domestica (вид, который является модельным при тестировании инсектицидов) приведены разные дозы DEM для взрослых особей: 1 мкг/самка [5, 6], 7 мкг/самка [12], 10 мкг/самка [13], 40 мкг/особь [9]. Однако крайне мало работ, демонстрирующих ингибирование GSTs в организме насекомых под воздействием DEM [14]. Цель работы – оценка влияния диэтилмалеата на активность глутатион-S-трансферазы самок и самцов Musca domestica при его топикальном нанесении.

МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ

Объектом исследования были самки и самцы 3–5-суточного возраста лабораторной линии Musca domestica L., содержавшейся в стандартных условиях [15]. В предварительных экспериментах методом топикального нанесения устанавливали дозу синергиста, не приводящую к гибели насекомых. На вентральную часть грудного отдела насекомых наносили ацетоновые растворы DEM в объеме 1 мкл. Всего было протестировано 5 доз DEM в диапазоне 0.2–5.0 мкг/особь. В контроле особей обрабатывали 1 мкл ацетона. Затем насекомых помещали в стеклянные стаканчики, снабженные поилками с 5%-ным раствором глюкозы. Учет гибели насекомых проводили через 24 и 48 ч.

Для оценки влияния DEM на активность GST из групп контрольных и обработанных синергистом насекомых отбирали часть особей (по 5–10 самок и самцов для каждой дозы) через 1 ч и 48 ч после обработки (использовали только выживших насекомых) и до исследования хранили при –80°С. Из каждой особи готовили гомогенаты в 0.1 М фосфатном буфере рН 7.6, содержащем 1 мМ DTE, 1 мM EDTA, 1 мM PTU, 1 мM PMSF. Активность GST и содержание белка определяли в супернатантах сразу после центрифугирования (10 000 g, 2 мин). Содержание белка в гомогенатах определяли по методу Лоури, используя бычий сывороточный альбумин в качестве стандарта. Определение активности GST проводили в 96-луночных микропланшетах (MiniMed, Россия) на микропланшетном фотометре Multiskan FC (Thermo Fisher Scientific Inc., Финляндия) с использованием синтетического субстрата 1-хлор-2,4-динитробензена при длине волны 340 нм в течение 20 мин в режиме кинетика [15]. Удельную активность фермента рассчитывали с учетом неферментативного преобразования субстрата, фактора разведения гомогената и содержания белка в пробе и выражали как изменение оптической плотности за 1 мин на мг белка (Δ OD/мин/мг белка). Статистический анализ результатов определения активности фермента проводили с использованием ANOVA и критерия Тьюки для множественных сравнений с помощью пакета программ Statistica 13.3 (StatSoft, Россия).

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Литературные сведения о дозе диэтилмалеата, применяемой в исследованиях на M. domestica разнятся [5, 6, 9, 12, 13], поэтому в предварительных экспериментах оценили смертность имаго при воздействии разными дозами синергиста. Согласно представленным в табл. 1 данным, при обработке взрослых особей M. domestica DEM нулевая гибель среди самцов отмечена при использовании дозы 0.2, среди самок – 0.2 и 0.5 мкг/особь. При обработке насекомых DEM в дозе до 2 мкг/особь включительно отмечали допустимый уровень гибели (до 5%) как среди самок, так и среди самцов. Нанесение DEM в дозе 5 мкг/особь приводило к увеличению смертности до 10% среди самок и до 30% среди самцов.

Таблица 1.

Гибель имаго Musca domestica через 24 и 48 ч после топикального нанесения диэтилмалеата (DEM)

Доза DEM, мкг/особь Самки Самцы
число особей в опыте, экз. число погибших особей, экз. (абс. %) число особей в опыте, экз. число погибших особей, экз. (абс. %)
через 24 ч через 48 ч через 24 ч через 48 ч
0 (контроль) 80 0 (0%) 1 (1.25%) 75 1 (1.33%) 1 (1.33%)
0.2 50 0 (0%) 0 (0%) 50 0 (0%) 0 (0%)
0.5 40 0 (0%) 0 (0%) 40 2 (5%) 2 (5%)
1 50 0 (0%) 1 (2%) 60 3 (5%) 3 (5%)
2 60 1 (1.7%) 1 (1.7%) 80 2 (2.5%) 2 (2.5%)
5 30 2 (6.7%) 3 (10%) 30 7 (23%) 9 (30%)

К сожалению, в научной литературе скудно представлены результаты исследований по влиянию разных доз синергистов на активность ферментов детоксикации у насекомых. В частности, в работе [14] изучали влияние DEM в концентрациях, не вызывающих гибель насекомых, на активность GST у 6-ти видов насекомых и обнаружили, что степень ингибирования фермента варьировалась от 18 до 48% в зависимости от вида. Согласно этим исследованиям, увеличение дозы DEM сопровождалось незначительным повышением или снижением степени ингибирования GST у отдельных видов насекомых [14]. Полученные нами результаты определения активности GST у самок и самцов M. domestica через 1 ч и 48 ч после топикального нанесения разных доз DEM представлены на рис. 1. Статистический анализ полученных данных не выявил значимого варьирования активности фермента между группами самок, обработанных разными дозами синергиста, через 1 ч после обработки. Напротив, варьирование активности GST между группами самцов в такой же период времени после нанесения тех же доз DEM было статистически значимым (p < < 0.001). Статистически значимого варьирования ферментативной активности как между группами самок, так и между группами самцов через 48 ч после обработки DEM не обнаружено (p = 0.260 и p = 0.0998 соответственно). Выявлено снижение активности GST у самцов в 1.70 (p = 0.0016) и 1.40 (p = 0.271) раза через 1 ч и 48 ч соответственно после воздействия DEM в дозе 5 мкг/особь по сравнению с активностью у контрольных особей. Отмеченное угнетение активности GST у самцов через 1 ч после обработки дозой 5 мкг/особь и частичное восстановление активности фермента через 48 ч, вероятно, были связаны с изменением уровня восстановленного глутатиона. Действительно, в опытах на самцах M. domestica обнаружили, что нанесение DEM в дозе 40 мкг/особь приводило к снижению содержания глутатиона [9]. Максимальное снижение (до 50% от начального уровня) авторы отмечали через 2 ч, а значительное, но не полное восстановление через 8 ч после обработки [9].

Рис. 1.

Активность глутатион-S-трансферазы у самок (а) и самцов (б) Musca domestica лабораторной культуры через 1 ч и 48 ч после топикального нанесения диэтилмалеата (DEM) в разных дозах. * Статистически значимо относительно контрольных особей, p < 0.01, ** статистически значимо относительно самок аналогичной группы, p < 0.05.

Наблюдали статистически значимые (p < 0.05) отличия в активности GST между самками и самцами в контроле и в группе особей, обработанных DEM в дозе 5 мкг/особь (через 1 ч после обработки): у самцов ферментативная активность была соответственно в 1.29 и в 1.98 раза ниже, чем у самок. Выявленные отличия в активности GST по полу в контрольной группе согласовались с литературными сведениями, согласно которым на протяжении имагинальной стадии M. domestica активность GST у самок почти в 2 раза выше, чем у самцов [8].

Проведенные ранее исследования показали, что DEM способен увеличивать токсичность инсектицидов для особей резистентных линий насекомых [7, 11], однако это не всегда бывает так [4, 10]. Что касается M. domestica, синергизм DEM по отношению к имидаклоприду наблюдали при использовании дозы 1 мкг/особь в опытах с самками 4-суточного возраста имидаклоприд-резистентной линии [5, 6]. В то время как в исследовании [13] применение DEM не оказало влияния на токсичность спиносада для M. domestica резистентной линии при нанесении синергиста на самок 4–6-суточного возраста в дозе 10 мкг/особь. Общепринято, что DEM выступает как ингибитор GSTs, и наблюдаемый синергистический эффект свидетельствует о возможном вкладе GSTs в формирование инсектицидной устойчивости [57, 11]. Отсутствие синергизма объясняют тем, что формирование резистентности происходит по механизму нечувствительности мишени к инсектициду вследствие мутаций (например, kdr-мутации в случае пиретроидов) либо тем, что GSTs не принимают участия в метаболизме данного инcектицида [4, 10, 13]. Следует отметить, что в упомянутых выше работах не приведены сведения об активности GST или других ферментов детоксикации у насекомых после обработки DEM. Согласно нашему исследованию, топикальное нанесение DEM в дозе 1 и 2 мкг/особь не сопровождалось статистически значимым изменением активности GST у имаго M. domestica лабораторной линии. Полученные результаты демонстрируют также, что использование DEM в качестве ингибитора GST в дозе 5 мкг/особь, вызывавшей 10–30%-ную гибель M. domestica обоего пола, может не приводить к угнетению активности целевого фермента у самок в отличие от самцов. Учитывая полученные результаты и литературные данные, считаем, что для уточнения механизма синергистического действия DEM в отношении инсектицидов необходимы дополнительные исследования по оценке его влияния на активность GST и других ферментов детоксикации у насекомых.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Синергисты являются важным инструментом для исследований инсектицидной устойчивости насекомых и находят широкое применение при разработке инсектицидных препаратов. Доза синергиста диэтилмалеата, при топикальном нанесении вызывавшая не более 5% гибели имаго Musca domestica, составила 2 мкг/особь. Однако при воздействии данной дозы DEM не обнаружено статистически значимого изменения активности GST ни у самок, ни у самцов по сравнению с контрольными особями. Применение более высокой дозы DEM (5 мкг/особь) приводило к увеличению смертности насекомых и только у самцов сопровождалось угнетением активности GST через 1 ч после обработки синергистом. У выживших особей (как самок, так и самцов) не отмечено статистически значимого снижения активности GST через 48 ч после нанесения DEM (5 мкг/особь). Обнаруженные особенности изменения активности одного из ферментов детоксикации у самок и самцов M. domestica в ответ на воздействие синергистом DEM необходимо учитывать при проведении исследований на данном виде насекомых.

Список литературы

  1. Bbernard C., Philogene B.J.R. Insecticide synergists – role, importance, and perspectives // J. Toxicol. Environ. Health. 1993. V. 38 (2). P. 199–223.

  2. Snoeck S., Greenhalgh R., Tirry L., Clark R.M., Van Leeuwen T., Dermauw W. The effect of insecticide synergist treatment on genome-wide gene expression in a polyphagous pest // Sci. Rep. 2017. V. 7. № 13440.

  3. Еремина О.Ю. Синергисты как инструмент энтомотоксикологических исследований: исследование ферментных систем комнатных мух Musca domestica L. Сообщ. 1 // Прикл. энтомол. 2011. № 1. С. 27–37.

  4. Еремина О.Ю., Олифер В.В., Лопатина Ю.В. Механизмы резистентности к циперметрину и фипронилу у рыжего таракана Blattella germanica (L.) (Blattodea: Ectobiidae) // Мед. паразитол. и паразитар. болезни. 2019. № 2. С. 37–47.

  5. Li J., Wang Q., Zhang L., Gao X. Characterization of imidacloprid resistance in the housefly Musca domestica (Diptera: Muscidae) // Pest. Biochem. Physiol. 2012. V.102 (2). P. 109–114. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2011.10.012

  6. Ma Z., Li J., Zhang Y., Shan C., Gao X.W. Inheritance mode and mechanisms of resistance to imidacloprid in the house fly Musca domestica (Diptera: Muscidae) from China // PLOS ONE. 2017. V. 12 (12). № 0189343.

  7. Gonzalez-Morales M.A., Romero A. Effect of synergists on deltamethrin resistance in the common bed bug (Hemiptera: Cimicidae) // J. Economic Entomol. 2019. V. 112 (2). V. 786–791.

  8. Clark A.G. The comparative enzymology of the glutathione S-transferases from non-vertebrate organisms // Comp. Biochem. Physiol. 1989. V. 92 (3). V. 419–46.

  9. Wang W., Mo J.C., Cheng J.A., Zhuang P.J., Tang Z.H. Selection and characterization of spinosad resistance in Spodoptera exigua (Hubner) (Lepidoptera : Noctuidae) // Pest. Biochem. Physiol. 2006. V. 84 (3). P. 180–187.

  10. Pang S., You W.Y., Duan L.S., Song X.Y., Li X.F., Wang C.J. Resistance selection and mechanisms of oriental tobacco budworm (Helicoverpa assulta Guenee) to indoxacarb // Pest. Biochem. Physiol. 2012. V. 103 (3). P. 219–223.

  11. Ahmadi E., Khajehali J., Rameshgar F. Evaluation of resistance to permethrin, cypermethrin and deltamethrin in different populations of Musca domestica (L.), collected from the Iranian dairy cattle farms // J. Asia-Pacific Entomol. 2020. V. 23 (2). P. 277–284. https://doi.org/10.1016/j.aspen.2020.01.014

  12. Shono T., Scott J.G. Spinosad resistance in the housefly, Musca domestica, is due to a recessive factor on autosome 1 // Pest. Biochem. Physiol. 2003. V. 75 (1–2). P. 1–7. https://doi.org/10.1016/S0048-3575(03)00011-7

  13. Welling W., de Vries J.W. Synergism of organophosphorus insecticides by diethyl maleate and related compounds in house flies // Pest. Biochem. Physiol. 1985. V. 23 (3). P. 358–369. https://doi.org/10.1016/0048-3575(85)90097-5

  14. Wu G., Miyata T., Kang C. Y., Xie L. H. Insecticide toxicity and synergism by enzyme inhibitors in 18 species of pest insect and natural enemies in crucifer vegetable crops // Pest. Manag. Sci. 2007. V. 63 (5). P. 500–510.

  15. Силиванова Е.А., Шумилова П.А., Левченко М.А. Активность ферментов детоксикации у имаго комнатной мухи Musca domestica L. при селекции хлорфенапиром // Биомика. 2020. Т. 12. № 4. С. 492–503.

Дополнительные материалы отсутствуют.