Биология моря, 2020, T. 46, № 6, стр. 384-391

Яровой экотип проходной микижи Parasalmo (Oncorhynchus) mykiss (Walbaum, 1792) (Salmonidae, Salmoniformes) на Камчатке

К. В. Кузищин 12*, М. А. Груздева 1, А. В. Семенова 1, Д. С. Павлов 12

1 Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
119234 Москва, Россия

2 Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН
119071 Москва, Россия

* E-mail: KK_office@mail.ru

Поступила в редакцию 05.07.2019
После доработки 16.12.2019
Принята к публикации 30.01.2020

Полный текст (PDF)

Аннотация

Впервые на Камчатке установлено существование ярового сезонного экотипа проходной микижи. Рыбы этого экотипа заходят в реки в мае, нерестятся с рыбами озимого экотипа в те же сроки и на тех же нерестилищах. Установлено, что яровой и озимый экотипы представляют единую популяцию, так как в результате анализа изменчивости микросателлитных локусов двух экотипов не обнаружено различий между ними. Яровой и озимый экотипы проходной микижи Камчатки не являются аналогами зимнего и летнего стальноголового лосося Северной Америки. Проходную микижу ярового экотипа из рек Камчатки можно рассматривать как временную адаптивную форму, свойственную теплым периодам крупномасштабных климатических и океанических флуктуаций в Северной Пацифике.

Ключевые слова: микижа, симпатричные сезонные экотипы, озимый, яровой, западная Камчатка, адаптации

Микижа Parasalmo mykiss (Walbaum) – полиморфный вид лососевых рыб. В его состав входят разные экологические группы: жилые, полупроходные и проходные; у проходной микижи известны сезонные экотипы (расы), которые рассматривают как важные элементы структуры вида. До недавнего времени считали, что озимый и яровой сезонные экотипы (расы) существуют в Северной Америке, а в Азии представлен лишь озимый экотип (Whitler, 1966; Light et al., 1989; Павлов и др., 2001; Behnke, 2002). Однако в начале XXI века появились, а к настоящему времени пополнились сведения о существовании яровой микижи на Камчатке (Кузищин и др., 2007).

Цели данного исследования – изучить биологические и морфологические особенности яровой микижи на Камчатке, определить уровень генетической дифференциации ярового и озимого экотипов, а также оценить разнообразие сезонных экотипов микижи в Азии и Северной Америке.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА

Материал собирали в мае–октябре в 2003–2008 гг. в реках Коль, Кехта и Утхолок. Река Коль горного и предгорного типа длиной около 130 км и шириной в устье около 70 м, расход воды в межень 55–57 м3/с, площадь водосборного бассейна 1580 км2; размножение микижи приурочено к тундровым притокам. Река Кехта тундровая, ее длина 62 км, площадь водосборного бассейна 657 км2, расход воды в межень в устье 2.2 м3/с; микижа размножается в основном русле среднего течения. Река Утхолок горно-тундровая, ее длина около 140 км, площадь водосборного бассейна 1350 км2, расход воды в межень 12.3 м3/с; микижа нерестится в основном русле и в тундровых притоках среднего течения (собственные данные).

У пойманных рыб измеряли длину и обхват тела, брали пробы чешуи и ткани для генетического анализа; затем рыб метили индивидуальными номерными метками. Большую часть рыб после измерений отпускали; несколько особей использовали для полного биологического и морфометрического анализа в соответствии с разрешениями Министерства природных ресурсов и экологии РФ (Павлов и др., 2001). Нерестилища микижи определяли по результатам обловов участков рек с последующим нелетальным сбором материала; проводили визуальные подводные наблюдения для изучения нереста. Соотношение яровых и озимых рыб определяли методом облова нерестилищ и визуально в ходе подводных наблюдений (продолжительность наблюдений 54 ч); принадлежность конкретной особи к сезонному экотипу устанавливали по окраске и строению чешуи.

Микросателлитный анализ. Методики выделения и амплификации ДНК опубликованы ранее (Павлов и др., 2011). Проанализированы 6 микросателлитных локусов, разработанных для исследований лососевых рыб: Ssa197, Ssa20.19, One103, One112, Oki10 и Ots3 (Sánchez et al., 1996; Small et al., 1998; Smith et al., 1998; Olsen et al., 2000). Эффективность и высокая разрешающая способность данной панели локусов для популяционно-генетического анализа микижи азиатской части ареала подтверждена нами ранее (Семенова и др., 2010; Павлов и др., 2011, 2019).

Статистическую обработку результатов микросателлитного анализа проводили с использованием программ GDA 1.0; Micro-Сhecker 2.2.3, GENEPOP 4.2, FSTAT 2.9.3 (Van Oosterhout et al., 2004; Rousset, 2008). Достоверность различий показателей генетической дифференциации между выборками оценивали с помощью однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA) в программе Excel.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Анадромная миграция производителей. Нерест. В 2005–2006 гг. впервые были получены неопровержимые доказательства весеннего захода проходной микижи в р. Кехта, куда она заходит только после прорыва устья реки в середине мая, так как с декабря до этого времени через блокированное устье невозможна анадромная или катадромная миграция любых рыб (Кузищин и др., 2007). Доказательства весеннего захода яровой микижи в реки Коль и Утхолок получены в результате обловов устьевой зоны.

Анадромная миграция микижи ярового экотипа происходит в разные сроки, но при сходных значениях температуры воды в реках и в прибрежной части моря (табл. 1). Река Утхолок расположена приблизительно на 450 км севернее двух других рек; этим обусловлен более поздний заход в нее яровой микижи. В южных реках Коль и Кехта период захода яровой микижи составляет 2–3 дня, в северной р. Утхолок – около недели (табл. 1).

Таблица 1.

 Особенности анадромной миграции микижи ярового экотипа в реках западной Камчатки

Река Cроки хода Температура, °С Соленость
воды в прибрежной зоне моря, ‰
в реке в прибрежной зоне моря
Коль 15–18.05 2.2–2.8 3.1–3.6 20–24
Кехта 15–16.05 3.2–3.8 3.1–3.6 20–24
Утхолок 28.05–05.06 3.0–3.5 3.0–3.5 18–22

По данным повторных поимок меченых рыб (n = 11) яровая микижа после захода из моря в реки Коль и Кехта за 4–5 дней достигает нерестилищ в среднем течении реки, преодолевая по 9–15 км (в среднем 13.4) в день. Визуальные наблюдения показали, что яровая микижа размножается совместно с озимой на одних и тех же нерестилищах. В р. Утхолок яровая микижа за 7–10 дней достигает нерестилищ, которые удалены от устья на 30–50 км. Здесь, как и в реках Кехта и Коль, особи разных экотипов нерестятся в одних и тех же местах и образуют совместные пары производителей.

Описание производителей ярового экотипа. При заходе из моря яровая микижа имеет типичную пелагическую окраску: верх головы и спина темно-серые с резким переходом на серебристые бока головы и тела, а низ головы, жаберные лучи и брюхо белые; розовая окраска на боках тела и голове отсутствует. Хвост темно-серый; нижние неветвистые лучи хвоста светлые, средние лучи серебристые с перламутровым отливом; парные плавники белые или светлые.

На нерестилищах проходная микижа ярового экотипа приобретает брачный наряд, который выражен слабее, чем у рыб озимого экотипа. Яровые рыбы зеленовато-оливковые; бока тела и жаберная крышка светло-розовые, однако серебристый оттенок боков тела не исчезает; брюхо светло-серое; серебристый цвет средних лучей хвостового плавника становится более блеклым, но не исчезает; чешуя не врастает в кожу. Достигшая нерестилищ озимая микижа бурого цвета, брюхо темное, на боках яркая красная полоса, все плавники почти черные, чешуя глубоко врастает в кожу. На нерестилищах яровая микижа хорошо отличается от озимой, особенно самки.

Строение чешуи. Особи яровой и озимой микижи хорошо различаются между собой по строению чешуи. У яровой микижи при заходе из моря (весна) наружный край сформирован 5–7 (в среднем 6.1) широкими склеритами после годовой морской зоны (рис. 1а). У озимой микижи при заходе из моря (осень) на наружном крае чешуи 3–5 узких (“зимних”) склеритов (рис. 1б). Весной на чешуе озимых рыб начинает формироваться нерестовая метка, которая у некоторых особей может появляться еще до нереста (рис. 1б).

Рис. 1.

Чешуя ярового и озимого экотипов проходной микижи на примере р. Кехта. а – яровая самка, возраст 3.3+, FL = 813 мм, 17.05.2006 г.; сплошной стрелкой указан наружный край, образованный семью широкими “весенними” склеритами после морского зимнего годового кольца. б – озимая самка, возраст 3.3, FL = 854 мм, 21.05.2006 г.; наружный край образован четырьмя узкими “зимними” склеритами; пунктирной стрелкой указана формирующаяся нерестовая метка. Черными точками обозначены границы годовых зон. Обозначения: 1 РГ–3 РГ – первый–третий речные годы; 1 МГ–3 МГ – первый–третий морские годы.

Соотношение экотипов. Во всех трех реках резко преобладала озимая микижа, яровая микижа составляла менее 5% локальной популяции (табл. 2).

Таблица 2.  

Оценки соотношения проходной микижи ярового и озимого экотипов в реках западной Камчатки

Река, год Доля обследованных
нерестилищ, %
Метод оценки Количество учтенных рыб, экз. Доля яровых рыб, %
озимые яровые
Коль, 2004 100 Контрольный облов 94 5 4.7
Коль, 2006 100 » 82 4 4.8
Кехта, 2004 ~70 Подводные наблюдения 4750 200 4.2
Кехта, 2006 ~65 » 4380 180 4.1
Утхолок, 2004 ~10 Контрольный облов 224 11 4.9

Размерный, весовой и половой состав. Длина и масса тела яровой и озимой микижи из отдельных рек сходны, хотя пределы варьирования показателей всегда были больше у озимых рыб (табл. 3). Среди ярового экотипа в разные годы и в разных реках самки составляли 50–60%; среди озимого экотипа доля самок достигала 63–74%. Плодовитость самок и диаметр икры у яровой и озимой микижи были сходны (табл. 4).

Таблица 3.  

Длина и масса тела у разных экотипов проходной микижи из рек западной Камчатки

Река Яровой экотип Озимый экотип
Коль $\frac{{743.3\,(720{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 792)[15]}}{{4758\,(4153{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 6012)}}$ $\frac{{739.3\,(594{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 854)[67]}}{{4476\,(2541{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 6852)}}$
Кехта $\frac{{712.6\,(703{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 813)[29]}}{{3822\,(3270{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 5850)}}$ $\frac{{745.2\,(688{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 850)[175]}}{{4132\,(3018{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 6675)}}$
Утхолок $\frac{{789.2\,(725{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 835)\,[34]}}{{5126\,(4004{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 5876)}}$ $\frac{{775.9\,(553{\kern 1pt} - {\kern 1pt} 873)[279]}}{{4953\,(1737 - {\kern 1pt} 7883)}}$

Примечание. Над чертой – длина тела по Смитту, мм; под чертой – масса тела, г. В круглых скобках – пределы варьирования; в квадратных скобках – число рыб, экз.

Таблица 4.  

Плодовитость и диаметр икры у самок ярового и озимого экотипов проходной микижи из рек западной Камчатки

Река Яровой экотип Озимый экотип
плодовитость, экз. диаметр икры, мм плодовитость, экз. диаметр икры, мм
Коль 7916 (6975–8753) [10 ] 5.35 (5.0–5.7) 7797 (6043–9964) [18 ] 5.34 (5.0–5.7)
Кехта 7477 (6885–8896) [16 ] 5.34 (5.1–5.6) 7803 (5979–10302) [23 ] 5.31 (5.0–5.6)
Утхолок 8071 (6696–9344) [12 ] 5.37 (5.1–5.6) 8005 (5270–11766) [34] 5.27 (5.1–5.5)

Примечание. Данные для весеннего периода года, все самки на 5-й стадии зрелости; у каждой самки брали 20 икринок и получали средний диаметр икринки у одной самки, затем данные по всем самкам усредняли. В круглых скобках – пределы варьирования, в квадратных скобках – число рыб, экз.

Возрастной состав микижи ярового и озимого экотипов был сходен. У озимого экотипа биографических групп было больше, чем у ярового, но модальная не различалась и составляла 3.3+ (табл. 5).

Таблица 5.  

Биографические группы ярового и озимого экотипов проходной микижи из рек западной Камчатки

Река Яровой экотип Озимый экотип
Коль 3.2+, 3.3+, 4.2+, 4.3+ 2.2+, 3.1+, 3.2+, 3.3+, 3.4+, 4.2+, 4.3+
Кехта 2.3+, 3.2+, 3.3+, 4.3+ 2.2+, 3.1+, 3.2+, 3.3+, 3.4+, 3.5+, 4.2+, 4.3+, 4.4+
Утхолок 2.3+, 3.2+, 3.3+, 4.3+ 2.3+, 2.4+, 3.1+, 3.2+, 3.3+, 3.4+, 3.5+, 3.6+, 4.1+, 4.2+, 4.3+, 4.4+

Примечание. Жирным шрифтом выделены модальные биографические группы.

Морфологические особенности. У микижи ярового и озимого экотипов из одной реки не выявлено достоверных различий в значениях меристических признаков (табл. 6).

Таблица 6.  

Морфометрическая характеристика микижи ярового и озимого экотипов из рек западной Камчатки

Признак р. Коль р. Кехта р. Утхолок
яровой, n = 8 озимый, n = 18 яровой, n = 11 озимый, n = 25 яровой, n = 15 озимый, n = 50
ll 127.1 ± 1.1 (121–133) 127.6 ± 0.7 (119–134) 125.4 ± 1.1 (122–130) 126.1 ± 1.1 (123–130) 125.5 ± 1.0 (122–129) 126.4 ± 0.8 (124–130)
D 9.71 ± 0.12 (9–10) 9.83 ± 0.13 (9–11) 9.63 ± 0.16 (9–11) 9.85 ± 0.11 (9–11) 9.22 ± 0.19 (8–10) 9.00 ± 0.17 (8–10)
A 9.78 ± 0.13 (9–10) 9.50 ± 0.11 (9–10) 9.80 ± 0.15 (9–11) 9.76 ± 0.11 (9–10) 9.00 ± 0.24 (8–10) 8.88 ± 0.14 (8–10)
P 13.07 ± 0.16 (12–14) 13.21 ± 0.18 (11–14) 13.02 ± 0.17 (12–14) 12.84 ± 0.12 (12–14) 13.00 ± 0.20 (12–14) 12.68 ± 0.17 (12–15)
V 8.28 ± 0.10 (8–9) 8.45 ± 0.12 (8–10) 8.85 ± 0.18 (8–9) 8.61 ± 0.11 (8–9) 8.89 ± 0.11 (8–9) 8.78 ± 0.15 (8–9)
rb1 12.01 ± 0.19 (11–13) 11.73 ± 0.13 (10–12) 11.55 ± 0.19 (11–13) 11.84 ± 0.13 (11–13) 11.48 ± 0.31 (10–13) 12.00 ± 0.24 (11–13)
rb2 11.28 ± 0.12 (11–12) 11.08 ± 0.14 (10–12) 11.28 ± 0.21 (11–13) 11.38 ± 0.12 (11–13) 11.11 ± 0.21 (10–12) 11.44 ± 0.18 (11–13)
sp.br 19.00 ± 0.39 (17–21) 19.46 ± 0.18 (18–22) 19.27 ± 0.42 (18–21) 19.00 ± 0.25 (18–21) 19.56 ± 0.24 (19–21) 19.78 ± 0.22 (19–23)
рc 46.07 ± 1.55 (41–61) 49.12 ± 1.22 (38–63) 42.77 ± 1.78 (49–51) 49.23 ± 1.33 (44–56) 40.67 ± 1.04 (39–42) 41.40 ± 0.87 (38–44)
vert 63.85 ± 0.29 (62–65) 63.50 ± 0.20 (62–66) 62.22 ± 0.73 (61–64) 62.38 ± 0.56 (61–64) 62.00 ± 0.37 (60–63) 62.22 ± 0.40 (60–63)

Примечание. ll – число прободенных чешуй в боковой линии; D, A, P, V – число ветвистых лучей соответственно в спинном, анальном, грудных и брюшных плавниках; rb1 и rb2 – число жаберных лучей слева и справа; sp.br – число жаберных тычинок; pc – число пилорических придатков; vert – число позвонков.

Изменчивость микросателлитных локусов. Программа Micro-Checker не обнаружила возможных ошибок генотипирования или присутствия нуль-аллелей в выборках ни в одном из изученных локусов. Достоверных отклонений в распределении генотипов от теоретического равновесия Харди–Вайнберга не выявлено (табл. 7). Генотипические распределения при объединении в одну выборку яровой и озимой микижи из одной реки были также равновесны.

Таблица 7.  

Генетическая изменчивость микижи ярового и озимого экотипов из рек Коль, Кехта и Утхолок западной Камчатки по микросателлитным локусам

Локус Показатель Экотип
р. Коль р. Кехта р. Утхолок
яровой озимый яровой озимый яровой озимый
Ssa197 n 6 10 7 21 12 27
A/AR 2/2 2/1.99 2/2 2/1.99 2/1.5 1/1
HE 0.303 0.394 0.362 0.470 0.083 0.000
HO 0.333 0.500 0.428 0.428 0.083 0.000
р 1.000 1.000 1.000 1.000 1.000
Ssa20.19 n 6 10 7 21 12 26
A/AR 3/3 3/3 3/2.9 3/2.8 3/2.7 3/2.8
HE 0.621 0.568 0.604 0.605 0.583 0.601
HO 0.666 0.400 0.571 0.523 0.666 0.692
р 1.000 0.266 1.000 0.460 1.000 4.434
One103 n 6 10 7 21 12 27
A/AR 2/2 2/1.95 2/2 2/1.95 2/1.98 2/1.97
HE 0.409 0.268 0.494 0.315 0.344 0.372
HO 0.500 0.100 0.428 0.285 0.250 0.333
р 1.000 0.159 1.000 1.000 0.402 0.616
One112 n 6 9 7 21 12 26
A/AR 7/7 6/4.9 7/6.5 9/5.5 8/5.7 10/5.2
HE 0.893 0.778 0.879 0.797 0.807 0.729
HO 0.833 0.889 0.857 0.809 0.750 0.653
р 0.734 0.528 0.404 0.340 0.445 0.054
Oki10 n 6 9 6 20 12 27
A/AR 7/7 7/5.8 5/5 10/5.7 4/3.9 6/4.1
HE 0.878 0.810 0.575 0.805 0.764 0.765
HO 0.833 0.778 0.666 0.800 0.916 0.851
р 0.763 0.763 1.000 0.139 0.969 0.065
Ots3 n 6 10 7 21 12 27
A/AR 3/3 3/2.6 3/2.7 3/2.7 2/1.5 2/1.2
HE 0.439 0.352 0.274 0.430 0.083 0.037
HO 0.500 0.300 0.285 0.523 0.083 0.037
р 1.000 0.310 1.000 0.767 1.000 1.000
Среднее n 6 9.6 6.8 20.8 12 26.6
A/AR 4/4 3.8/3.4 3.7/3.5 4.8/3.4 3.5/2.9 4/2.7
HE 0.590 0.528 0.531 0.570 0.444 0.417
HO 0.611 0.494 0.539 0.561 0.458 0.428
р 1.000 0.574 0.999 0.771 0.898 0.083
Среднее в выборках разных рек n 15.6 27.6 38.6
A/AR 4.5/4.5 5/4.4 4.3/3.5
HE 0.545 0.564 0.422
HO 0.538 0.556 0.437
р 0.727 0.697 0.233

Примечание. А – число аллелей; AR – аллельное разнообразие, скорректированное на размер выборки; HE – ожидаемая гетерозиготность; HO – наблюдаемая гетерозиготность, р – значение вероятности отклонения распределения генотипов от теоретического распределения Харди−Вайнберга.

У микижи обоих экотипов из р. Утхолок значения генетического разнообразия были меньше, чем у яровой и озимой микижи из рек Коль и Кехта (табл. 7), однако достоверных различий между всеми выборками ни по оценкам средней ожидаемой гетерозиготности, ни по аллельному разнообразию не обнаружено (ANOVA, HE: p = 0.83; AR: p = 0.87). Ни в одной из изученных рек не выявлено достоверных различий по оценкам генетического разнообразия между яровой и озимой микижей в пределах одной реки (р > 0.05).

Общая оценка генетической дифференциации микижи из разных рек достоверна: θ = 0.039 с 95% доверительным бутстреп-интервалом СI [0.007; 0.092]. В пределах каждой реки между микижей с разными экотипами отсутствовали достоверные генетические различия: р. Утхолок θ = –0.017, 95% CI [–0.0027; –0.004]; р. Коль θ = –0.017, 95% CI [–0.0027; –0.004]; р. Кехта θ = 0.012, 95% CI [–0.013; 0.034]. Все точные тесты общей дифференциации для каждого локуса отдельно, рассчитанные на основании частот аллелей и генотипов, также недостоверны.

Попарные сравнения по FST-показателям недостоверны для яровой и озимой микижи из одной реки, а также для микижи из рек Коль и Кехта. Яровая и озимая микижа из р. Утхолок в большинстве попарных сравнений достоверно отличалась от микижи из рек Коль и Кехта (табл. 8).

Таблица 8.  

Оценки попарной генетической дифференциации FST яровой (Я) и озимой (О) микижи из рек западной Камчатки

  Коль-Я Коль-О Кехта-Я Кехта-О Утхолок-Я Утхолок-О
Коль-Я ///
Коль-О –0.026 ///
Кехта-Я –0.006 0.027 ///
Кехта-О –0.007 –0.018 0.010 ///
Утхолок-Я 0.013 0.038 0.031 0.043 ///
Утхолок-О 0.049 0.057 0.048 0.061 –0.017 ///

Примечание. Жирным шрифтом выделены cтатистически достоверные значения (р < 0.05).

ОБСУЖДЕНИЕ

Полученный материал убедительно доказывает существование на Камчатке ярового экотипа проходной микижи, важнейшей особенностью которого является отсутствие изоляции от микижи озимого экотипа. В пределах одной реки яровая и озимая микижа характеризуются близкими значениями показателей генетической изменчивости и отсутствием генетической дифференциации по исследованным локусам, что предполагает отсутствие репродуктивной изоляции между ними. Значительная пространственная генетическая дифференциация камчатских популяций вида, выявленная с помощью сходной панели микросателлитных локусов (Павлов и др., 2011, 2019), позволяет считать выводы об отсутствии генетической дифференциации между микижей разных экотипов обоснованными и не связанными с недостаточной разрешающей способностью выбранных генетических маркеров. Отличие микижи р. Утхолок от остальных азиатских популяций вида было показано и ранее (Павлов и др., 2011, 2019); оно обусловлено значительной географической удаленностью. Генетическое сходство микижи рек Коль и Кехта можно объяснить близостью этих рек и возможным обменом мигрантами между ними. Таким образом, данные микросателлитного анализа позволяют заключить, что яровой и озимый экотипы микижи внутри одной речной системы представляют собой репродуктивно единую популяцию.

Обнаружение яровой расы микижи стало возможным благодаря мониторингу, проводимому с 1965 г. по настоящее время. Полученный материал указывает на более сложную, чем считали ранее, структуру этого вида в азиатской части ареала. Необходимо отметить, что яровой и озимый экотипы проходной микижи Камчатки отличаются от сезонных экотипов проходной микижи из рек Северной Америки.

В Северной Америке описаны два сезонных экотипа проходной микижи: стальноголовый лосось зимнего хода (winter run steelhead – WRS), который заходит из моря в реки в декабре–марте со зрелыми половыми продуктами и размножается через несколько недель после захода, а также стальноголовый лосось летнего хода (summer run steelhead – SRS), заходящий на нерест из моря в реки в августе–ноябре с незрелыми половыми продуктами и нерестящийся через 6–8 мес. весной следующего года. Данные экотипы имеют мозаичное распространение: WRS населяет относительно короткие реки к западу от Скалистых гор; SRS приурочен к крупным речным системам и выделен в особую филогенетическую группировку в ранге подвида (Withler, 1966; Busby et al., 1996; Behnke, 2002; Brannon et al., 2004). При симпатрии в крупном речном бассейне экотип WRS для размножения использует притоки нижнего течения, а экотип SRS нерестится далеко вверх по течению (Leider et al., 1984; Busby et al., 1996; Brannon et al., 2004). В коротких реках побережья экотипы SRS и WRS также встречаются совместно, однако и в этом случае наблюдаются пространственное разобщение нерестилищ и репродуктивная изоляция между ними (Leider et al., 1984; Van Hulle, 1989; Matala et al., 2009) и, как следствие, генетические различия между экотипами (Busby et al., 1996; Nielsen, Fountain, 1999; Brannon et al., 2004).

В реках Северной Америки сезонные экотипы проходной микижи представляют собой обособленные самостоятельные дивергировавшие группировки, тогда как экотипы проходной микижи на Камчатке – это неразделимые компоненты одной нерестовой совокупности, элементы изменчивости на внутрипопуляционном уровне организации. Таким образом, яровой и озимый экотипы проходной микижи на Камчатке, несмотря на некоторые черты сходства, не тождественны экотипам WRS и SRS Северной Америки, поэтому их следует рассматривать как особые единицы природного разнообразия вида.

В 1970-е гг., когда были начаты исследования биологии вида на Камчатке, яровой экотип проходной микижи не был обнаружен (Савваитова и др., 1973), хотя его поиск был одной из задач экспедиций 1965–1973 гг. (персональное сообщение К.А. Савваитовой, 2006 г.). Предположение о существовании яровой микижи в р. Большая высказывал В.А. Максимов (1976), однако ему не удалось найти достоверных доказательств. Поэтому есть основания полагать, что в 1960–1970-х гг. яровой экотип проходной микижи в реках Камчатки отсутствовал. Обнаружение в начале XXI века на Камчатке яровой проходной микижи может быть следствием масштабных климатических изменений, происходящих в Северной Пацифике. В морских водах северной части Тихого океана с начала ХХ века до конца 1970-х гг. наблюдалась “холодная эпоха”, а с конца 1990-х гг. здесь отмечено повышение температуры воды (Mantua, Hare, 2002; Overland et al., 2008). Это обусловило смещение в северном направлении нагульной части ареала лососей, особенно в западной части Тихого океана (Welch et al., 2000; Abdul-Aziz et al., 2011; Myers et al., 2016).

Проходная микижа в период морской фазы жизненного цикла чувствительна к температуре поверхностных вод. Низкая температура воды особенно в зимнее время стала причиной ее отсутствия в бассейне Берингова моря (Light et al., 1989; Burgner et al., 1992). В связи с этим представляется вероятным, что на фоне устойчивого увеличения температуры поверхностных морских вод зона нагула проходной микижи Камчатки также изменилась. Известно, что часть проходной микижи Камчатки нагуливается и зимует в районе южных Курильских островов (Коваленко и др., 2005). Следовательно, повышение температуры поверхностных вод в западной Пацифике в первое десятилетие XXI века могло привести к смещению на север мест зимнего морского обитания микижи, а более ранний прогрев морских и прибрежных вод обеспечил возможность ее миграции к рекам для размножения весной в мае. Известно, что проходная микижа может совершать морские миграции при температуре 2.8–3.0°С в прибрежной зоне с пониженной соленостью (Burgner et al., 1992; Welch et al., 2000; Myers et al., 2016).

Так как к середине мая температура воды в прибрежной морской зоне вблизи устьев рек Коль и Кехта составляет почти 3°С, а соленость существенно ниже океанической, становится возможным подход яровых проходных рыб к устьям рек в середине мая до начала нереста. Скорее всего, яровые особи проходной микижи Камчатки – это часть локальных популяций, которые по каким-то причинам (возможно, из-за более низкого темпа роста, чем у озимых) за лето–осень предыдущего года не достигли физиологического состояния, необходимого для захода в реки, но были готовы к размножению уже следующей весной.

Разные авторы указывают на то, что изменение температурного режима морских вод может приводить к изменениям в структуре популяций лососей. Так, в некоторых реках Калифорнии в локальных стадах стальноголового лосося из-за прогрева морских вод появились так называемые полуфунтовики – особи с 3–4 месяцами морского нагула, которые возвращаются в реки неполовозрелыми. Ранее их здесь не отмечали (Hayes et al., 2016).

В связи с этим появление на Камчатке среди локальных популяций ярового экотипа микижи представляется вполне вероятным адаптивным ответом на масштабные изменения в морской среде обитания. Данная гипотеза объясняет то, что, несмотря на значительные усилия, в 1965–1971 гг. яровая микижа на Камчатке не была обнаружена. В эти годы в морских водах Северной Пацифики наблюдался период низких температур.

Таким образом, яровой экотип проходной микижи Камчатки может рассматриваться как временная адаптивная форма, свойственная теплым периодам крупномасштабных климатических и океанических флуктуаций в Северной Пацифике. Численность и соотношение данного экотипа с озимым экотипом характеризуются изменчивостью и, скорее всего, определяются сложной системой обратных связей в морских экосистемах.

Список литературы

  1. Коваленко С.А., Шубин А.О., Немчинова И.А. Распределение и биологическая характеристика микижи Parasalmo mykiss (Salmonidae) в прикурильских водах Тихого океана и в Охотском море // Вопр. ихтиологии. 2005. Т. 45. № 1. С. 70–80.

  2. Кузищин К.В., Мальцев А.Ю., Груздева М.А. и др. Симпатричные сезонные расы микижи Parasalmo mykiss (Walb.) на Камчатке // Сохранение биоразнообразия Камчатки и прилегающих морей: Материалы VIII международ. науч. конф., посвященной 250-летию с начала Второй Камчатской экспедиции (1732–1733 гг.). (Петропавловск-Камчатский, 27–28 ноября 2007 г.). Петропавловск-Камчатский: Изд-во Камчатпресс. 2007. С. 56–59.

  3. Максимов В.А. Экология популяций камчатской микижи Salmo mykiss (Walbaum) р. Большой (западная Камчатка) // Вопр. ихтиологии. 1976. Т. 16. Вып. 1 (96). С. 16–20.

  4. Павлов Д.С., Савваитова К.А., Кузищин К.В. и др. Тихоокеанские благородные лососи и форели Азии. М.: Научный мир. 2001. 200 с.

  5. Павлов С.Д., Семенова А.В., Рубцова Г.А., Афанасьев К.И. Анализ изменчивости микросателлитных локусов у камчатской микижи (Parasalmo (Oncorhynchus) mykiss) // Генетика. 2011. Т. 47. № 10. С. 1346–1356.

  6. Павлов С.Д., Семенова А.В., Мельникова М.Н. Дифференциация камчатских популяций микижи Parasalmo (Oncorhynchus) mykiss по локусам микросателлитной ДНК // Изв. РАН. Сер. биол. 2019. Т. 46. № 2. С. 144–153.

  7. Савваитова К.А., Максимов В.А., Мина М.В. и др. Камчатские благородные лососи. Воронеж: Воронежский ГУ. 1973. 120 с.

  8. Семенова А.В., Рубцова Г.А., Афанасьев К.И., Павлов С.Д. Анализ микросателлитной ДНК у камчатской микижи (Parasalmo (Oncorhynchus) mykiss). Подбор локусов и оптимизация методики // Генетика. 2010. Т. 46. № 7. С. 1004–1008.

  9. Abdul-Aziz O.I., Mantua N.J., Myers K.W. Potential climate change impacts on thermal habitats of Pacific salmon (Oncorhynchus spp.) in the North Pacific Ocean and adjacent seas // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2011. V. 68. P. 1660–1680.

  10. Behnke R.J. Trout and Salmon of North America. New York, London, Toronto, Sydney, Singapore: The Free Press. 2002. 359 p.

  11. Brannon E.L., Powell M.S., Quinn T.P., Talbot A. Population structure of Columbia River basin Chinook salmon and steelhead trout // Rev. Fish. Sci. 2004. V. 12. P. 99–232.

  12. Burgner R.L., Light J.T., Margolis L. et al. Distribution and origins of steelhead trout (Oncorhynchus mykiss) in offshore waters of the North Pacific Ocean // Int. North Pac. Fish. Comm. Bull. 1992. № 51. 92 p.

  13. Busby P.J., Wainwright T.C., Bryant G.J. et al. Status review of west coast steelhead from Washington, Idaho, Oregon, and California // NOAA Technical Memorandum NMFS-NWFSC-27. Springfield, VA: U.S. Department of Commerce. 1996. 223 p.

  14. Hayes S.A., Ammann A.J., Harding J.A. et al. Observations of steelhead in the California Current lead to a marine-based hypothesis for the “half-pounder” life history, with climate change implications for anadromy // North Pac. Anadromous Fish Comm. Bull. 2016. № 6. P. 97–105.

  15. Leider S.A., Chilcote M.W., Loch J.J. Spawning characteristics of sympatric populations of steelhead trout (Salmo gairdneri): evidence for partial reproductive isolation // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1984. V. 41. P. 1454–1462.

  16. Light J.T., Harris C.K., Burgner R.L. Ocean distribution and migration of steelhead (Oncorhynchus mykiss, formerly Salmo gairdneri) // International North Pacific Fisheries Commission, no. FRI-UW-8912, Seattle: Fisheries Research Institute, University of Washington 1989. 50 p.

  17. Mantua N.J., Hare S.R. The Pacific decadal oscillation // J. Oceanogr. 2002. V. 58. P. 35–44.

  18. Matala A.P., French R., Olsen E., Ardren W.R. Ecotype distinctions among steelhead in Hood River, Oregon, allow real-time genetic assignment of conservation broodstocks // Trans. Am. Fish. Soc. 2009. V. 138. № 6. P. 1490–1509.

  19. Myers K.W., Irvine J.R., Logerwell E.A. et al. Pacific salmon and steelhead: life in a changing winter ocean // North Pac. Anadromous Fish Comm. Bull. 2016. № 6. P. 113–138.

  20. Nielsen J.L., Fountain M.C. Microsatellite diversity in sympatric reproductive ecotypes of Pacific steelhead (Oncorhynchus mykiss) from the Middle Fork Eel River, California // Ecol. Freshwater Fish. 1999. V. 8. P. 159–168.

  21. Olsen J.B., Wilson S.L., Kretschemer E.J. et al. Characterization of 14 tetranucleotide microsatellite loci derived from sockeye salmon // Mol. Ecol. 2000. V. 9. № 12. P. 2185–2187.

  22. Overland J., Rodionov S., Minobe S., Bond N. North Pacific regime shifts: definitions, issues and recent transitions // Prog. Oceanogr. 2008. V. 77. P. 92–102.

  23. Rousset F. Genepop'007: a complete reimplementation of the Genepop software for Windows and Linux // Mol. Ecol. Res. 2008. V. 8. P. 103–106.

  24. Sánchez J.A., Clabby C., Ramos D. et al. Protein and microsatellite single locus variability in Salmo salar L. (Atlantic salmon) // Heredity. 1996. V. 77. P. 423–432.

  25. Small M.P., Beachem T.D., Withler R.E., Nelson R.J. Discriminating coho salmon (Oncorhynchus kisutch) populations within the Fraser River, British Columbia, using microsatellite DNA markers // Mol. Ecol. 1998. V. 7. № 2. P. 141–155.

  26. Smith C.T., Koop B.F., Nelson R.J. Isolation and characterization of coho salmon (Oncorhynchus kisutch) microsatellites and their use in other salmonids // Mol. Ecol. 1998. V. 7. № 11. P. 1614–1616.

  27. Van Hulle F.D. Steelhead trout. Wildlife Notebook Series, Alaska Dep. of Fish and Game. Tech. rep. 4. 112 p.

  28. Van Oosterhout C., Hutchinson W.F., Wills D.P.M., Shipley P. MICRO-CHECKER: software for identifying and correcting genotyping errors in microsatellite data // Mol. Ecol. Notes. 2004. V. 4. P. 535–538.

  29. Welch D.W., Ward B.R., Smith B.D., Everson J.P. Temporal and spatial responses of British Columbia steelhead (Oncorhynchus mykiss) populations to ocean climate shifts // Fish. Oceanogr. 2000. V. 9. P. 17–32.

  30. Withler I.L. Variability in life history characteristics of steelhead trout (Salmo gairdneri) along the Pacific coast of North America // J. Fish. Res. Board Can. 1966. V. 23. P. 365–393.

Дополнительные материалы отсутствуют.