Биология моря, 2023, T. 49, № 4, стр. 253-260

Морфология клеток крови белухи Delphinapterus leucas (Pallas, 1776)

П. В. Мищенко 12*, В. А. Ячмень 12, Е. Н. Андрианова 2, П. Г. Захаренко 2

1 Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жирмунского (ННЦМБ) ДВО РАН
690041 Владивосток, Россия

2 НОК “Приморский океанариум” – филиал ННЦМБ ДВО РАН
690922 Владивосток, Россия

* E-mail: xpolli@mail.ru

Поступила в редакцию 13.01.2023
После доработки 30.03.2023
Принята к публикации 30.03.2023

Аннотация

Клинический анализ крови, наряду с цитоморфологическим исследованием, является важным диагностическим инструментом для оценки физиологического состояния животных. Цитоморфологические особенности клеток крови описаны для наземных млекопитающих, на их основе созданы хорошо иллюстрированные ветеринарные атласы, в которых отображены нормальные и патологические формы клеток крови животных. Однако для морских млекопитающих такая информация фактически отсутствует. Поэтому в данной статье мы приводим результаты изучения морфологии клеток крови белухи Delphinapterus leucas (Pallas, 1776), полученные путем суправитальной окраски препаратов мазков крови бриллиантовым крезиловым синим, метиленовым синим и стандартным методом по Романовскому–Гимзе. В работе представлены все основные типы клеток крови, типичные для млекопитающих. Описаны не только эритроциты, сегментоядерные нейтрофилы, эозинофилы, моноциты, лимфоциты, палочкоядерные нейтрофилы, но и редко встречающиеся базофилы.

Ключевые слова: белуха, Delphinapterus leucas, цитоморфология, клетки крови, лейкоциты, эритроциты, тромбоциты

Список литературы

  1. Бурмистров Е.Н. Шанс био: лабораторная диагностика. М.: Шанс-Био. 2014. 190 с.

  2. Григорьев И.П., Коржевский Д.Э. Современные технологии визуализации тучных клеток для биологии и медицины (обзор) // Соврем. технол. мед. 2021. Т. 13. № 4. С. 93–109.

  3. Кавцевич Н.Н. Морфологические и цитохимические особенности клеток крови морских млекопитающих в связи с адаптацией к среде обитания // Автореф. дис. … докт. биол. наук. Петрозаводск. 2011. 39 с.

  4. Луговская С.А., Почтарь М.Е. Гематологический атлас. 3-е изд., доп. М.: Кафедра КЛД. 2011. 368 с.

  5. Риган В., Сандерс Т., Деникола Д. Атлас по ветеринарной гематологии. М.: Аквариум. 2014. 136 с.

  6. Bessman D.J. Reticulocytes // Clinical methods: the history, physical, and laboratory examinations. Boston: Butterworths. 1990. 3rd ed. Ch. 156. 1118 p.

  7. Bossart G.D. Immunocytes of the Atlantic bottlenose dolphin (Tursiops truncatus) and West Indian manatee (Trichechus manatus latirostris): morphologic characterizations and correlations between healthy and di-sease states under free-ranging and captive conditions // Doctoral Dissertation, Florida International University Miami. Florida. 1995. 183 p. https://doi.org/10.25148/ETD.FI14051802

  8. Choy E.S., Campbell K.L., Berenbrink M. et al. Body condition impacts blood and muscle oxygen storage capacity of free–living beluga whales (Delphinapterus leucas) // J. Exp. Biol. 2019. V. 222. jeb191916.

  9. Cornell L.H., Duffield D.S., Joseph B.E. et al. Hematology and serum chemistry values in the beluga (Delphinapterus leucas) // J. Wildl. Dis. 1988. V. 24. P. 220–224.

  10. CRC Handbook of Marine Mammal Medicine. 2nd ed. Die-rauf L.A., Gulland F., Eds. Boca Raton: CRC Press. 2001.

  11. CRC Handbook of Marine Mammal Medicine. 3rd ed. Gulland F., Dierauf L.A., Whitman K.L., Eds. Boca Raton: CRC Press. 2018.

  12. Geraci J.R., Medway W., Fink H. et al. Studies on the hematology of the beluga whale Delphinapterus leucas (Pallas) // Proceedings of the second symposium on disea-ses and husbandry of aquatic mammals. Boca Raton: Florida. Florida Atlantic Univ. press. 1968. P. 63–74.

  13. Harvey J.W. Veterinary hematology: a diagnostic guide and color atlas. St. Louis: Saunders/Elsevier. 2012. 384 p.

  14. Henkel K.A., Swenson C.L., Richardson B. et al. Morphology, Cytochemical Staining and Ultrastructural Characteristics of Reindeer (Rangifer tarandus) Leukocytes // Veterinary Clinical Pathol. 1999. V. 28. № 1. P. 8–15.

  15. Lauderdale L.K., Walsh M.T., Mitchell K.A. et al. Health reference intervals and values for common bottlenose dolphins (Tursiops truncatus), Indo–Pacific bottlenose dolphins (Tursiops aduncus), Pacific white–sided dolphins (Lagenorhynchus obliquidens), and beluga whales (Delphinapterus leucas) // PLoS One. 2021. V. 16. № 8. P. e0250332.

  16. Lynch E.C. Peripheral blood smear, in Clinical Methods: the History, Physical, and Laboratory Examinations. 3rd Ed. Chapter 155. Boston: Butterworths. 1990.

  17. MacNeil A.C. Blood values for some captive cetaceans // Canadian Veterinary J. 1975. V. 16. P. 187–193.

  18. Meyer D.J., Harvey J.W. Veterinary laboratory medicine. Interpretation and diagnosis. St. Louis: Saunders. 2004. 3rd ed. p. 368.

  19. Norman S.A., Beckett L.A., Miller W.A. et al. Variation in hematologic and serum biochemical values of belugas (Delphinapterus leucas) under managed care // J. Zoo Wildl. Med. 2013. V. 44. № 2. P. 376–388.

  20. Norman S.A., Goertz C.E., Burek K.A. et al. Seasonal hematology and serum chemistry of wild beluga whales (Delphinapterus leucas) in Bristol Bay, Alaska // J. Wildl. Dis. 2012. V. 48. P. 21–32.

  21. Pabst D.A., Rommel S.A., McLellen W.A. The functional morphology of marine mammals, in Biology of Marine Mammals. Washington: Smithsonian Institution Press. 1999. P. 15–72.

  22. Palmer L., Briggs C., McFadden S. et al. ICSH recommendations for the standardization of nomenclature and grading of peripheral blood cell morphological features // Int. J. Lab. Hem. 2015. V. 37. P. 287–303.

  23. Quay W.B. The blood cells of Cetacea with particular reference to the beluga (Delphinapterus leucas Pallas, 1776) // Saugetierkundliche Mitteil. 1954. V. 2. P. 49–54.

  24. Robier C. Platelet morphology // J. Lab. Med. 2020. V. 44. № 5. P. 231–239.

  25. Romanov V.V., Shpak O.V., Naydenko S.V. et al. Hematology, plasma chemistry, and hormonal status as health indices in newly captured beluga whales (Delphinapterus leucas). International association for aquatic animal medicine 47th annual IAAAM meeting and conference (Virginia, 2016). Virginia Beach. 2016.

  26. Sakulwira K., Pothiwong W., Prachammuang P. et al. Ultrastructures of red blood cells, white blood cells and platelets in four species of macaques in Thailand // Thai J. Vet. Med. 2008. V. 38. № 3. P. 19–25.

  27. Satyaningtijas A.S., Indrawati A., Syarafina R.F. et al. Erythrocytes and leukocytes profiles of bottlenose dolphins (Tursiops aduncus) at conservation site // Biodiversitas. 2020. V. 21. № 7. P. 3359–3363.

  28. Somporn L., Wangnaitham S., Sutanonpaiboon J. et al. Morphological, cytochemical and ultrastructural studies of blood cells in Irrawaddy river dolphin (Orcaella brevirostris): a case study // The Thai Vet. Med. 2010. V. 40. № 3. P. 331–335.

  29. Stacy N.I., Nollens H.H. Hematology of Marine Mammals // Schalm’s Veterinary Hematology. New York: John Wiley & Sons, Inc. 2022. 7th ed. Ch. 122. P. 1104–1113.

  30. St. Aubin D.J., Geraci J.R. Adaptive changes in hematologic and plasma chemica constituents in captive beluga whales, Delphinapterus leucas // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1989. V. 46. № 5. P. 796–803.

  31. St. Aubin D.J., Dierauf L.A. Stress and Marine Mammals // CRC Handbook of marine mammal medicine. Boca Raton: CRC Press. 2001. 2nd ed. P. 253–269.

  32. Sweeney J.C., Reddy M.L., Lipscomb T.P. et al. Handbook of cetacean cytology. San Diego: Dophin Quest, Inc. 1999. 1st ed. P. 41.

  33. Tryland M., Thoresen S.I., Kovacs K.M. et al. Serum che-mistry of free–ranging white whales (Delphinapterus leucas) in Svalbard // Vet. Clin. Pathol. 2006. V. 35. P. 199–203.

  34. Wartzok D., Ketten D.R. Marine mammal sensory systems // Biology of marine mammals. Washington: Smithsonian Institution Press. 1999. P. 117–175.

  35. Weiss D.J., K. Wardrop J. Schalm’s Veterinary Hematology. New York: John Wiley & Sons. 2010. 6th ed. P. 1232.

  36. Williams C.R. III, Chapman G.B., Blake A.S. Ultrastructu-ral study of the blood cells of the beluga whale, Delphinapterus leucas // J. Morphol. 1991. V. 209. № 1. P. 97–110.

Дополнительные материалы отсутствуют.