Биология внутренних вод, 2021, № 6, стр. 655-659

Поражение микопаразитами ветвистоусого рачка Daphnia cucullata (Crustacea, Cladocera, Daphniidae) в оз. Плещеево (Ярославская обл., Россия)

Л. В. Воронин a, С. М. Жданова b*

a Ярославский государственный педагогический университет им. К.Д. Ушинского
Ярославль, Россия

b Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
пос. Борок, Некоузский р-н, Ярославская обл, Россия

* E-mail: zhdanova@ibiw.ru

Поступила в редакцию 20.04.2021
После доработки 08.06.2021
Принята к публикации 14.06.2021

Полный текст (PDF)

Аннотация

Приведено описание распространения микопаразита Aphanomyces patersonii и уровня поражения им кладоцер Daphnia cucullata Sars, 1862 (Crustacea, Cladocera, Daphniidae) в оз. Плещеево (Ярославская обл., Россия) в летний период 2020 г. Выявлено, что наибольшая экстенсивность инвазии (42%) характерна для эпилимниона глубоководной части озера при высокой численности Daphnia cucullata.

Ключевые слова: микопаразиты, Aphanomyces patersonii, Daphnia

Дафнии – распространенная группа ветвистоусых ракообразных в пресных водоемах и водотоках. Они служат объектом питания молоди рыб и рыб-планктофагов (Коровчинский и др., 2021; Крылов и др., 2021). Высокая смертность дафний может подорвать кормовые ресурсы рыб и снизить способность экосистемы водоема к самоочищению. Одним из факторов, вызывающих смертность не от хищников (non-predatory mortality), является паразитизм (Wolinska et al., 2008; Tang et al., 2014). На дафниях могут паразитировать грибоподобные оомицеты из рода Aphanomyces (оомицеты) (Scott, 1961).

Озеро Плещеево (56°43′–56°48′ с.ш., 38°43′–38°50′ в.д.) ледникового происхождения (51.5 км2), имеет правильную овальную форму. Литоральная зона с глубиной ≤3 м достигает 21.2% общей площади озера, наибольшая глубина 24 м. Озеро относится к типичным димиктическим водоемам с весенней и осенней гомотермией, хорошо выраженным летним расслоением водной толщи и обратной зимней стратификацией водной массы (Экосистема…, 1989).

Водоем обследовали 25–27 июля 2020 г. В этот период в пелагиали озера наблюдалась термическая стратификация водной толщи. Металимнион располагался на глубине от 9–10 до 11–12 м. Температуру воды и концентрацию растворенного кислорода на станциях наблюдения измеряли термооксиметром YSI ProODO (YSI, Inc., USA) от поверхности до дна по горизонтам через 1 м глубины. В придонном слое вод зафиксировано низкое содержание растворенного кислорода (<2 мг/л) (табл. 1). В июле 2020 г. в г. Переславль-Залесский преобладали ветра юго-западного и западного направления (по данным сайта http://weatherarchive.ru).

Таблица 1.  

Абиотические факторы, численность зоопланктона и Daphnia cucullata на различных участках оз. Плещеево в июле 2020 г.

Показатель Пелагиаль Сублитораль Литораль
ЭЛ МЛ ГП
T, °С 18.7–20.5 12.5–17.2 9.2–11.9 18.6–20.3 20.6–21.1
O2, мг/л 9.7–11.2 7.2–8.1 1.5–7.4 9.2–11.3 11.3–12.0
Ntot, тыс. экз./м3 61.2–971.3 84–162.6 6.7–50.5 78.2–94.5 27.1–63.8
N, тыс. экз./м3 2.6–331.2 0.9–35.1 0–1.4 8.8–11.3 0.4–8.7
N, % 4–34 1–12 0–5 10–13 1–15
Э.И., % 42.06 ± 0.06 3.63 ± 0.18 0 1.40 ± 0.07 1.36 ± 0.12

Примечание. Приведены значения min—max. ЭЛ – эпилимнион, МЛ — металимнион, ГП – гиполимнион. T — температура воды, O2 — содержание растворенного кислорода; Ntot — общей численности зоопланктона; N — численность D. cucullata, N, % ее доля в общей численности зоопланктона. Э.И. — экстенсивность инвазии (приведены средние значения индекса и его ошибка).

Планктонных животных отбирали с помощью планктобатометра Ван Дорна объемом 4.2 л, с последующей фильтрацией через нейлоновое сито (размер ячеи 64 мкм). На глубоководных станциях (глубина 18–24 м) пробы собирали по горизонтам – один подъем батометра через каждые 2 м. Содержимое каждого подъема сливали в отдельные склянки. В сублиторали (глубина 4–9 м), пробы зоопланктона отбирали по одному подъему батометра через 1 м, содержимое всех подъемов сливали в одну склянку, такую интегрированную пробу принимали как среднюю для всей толщи воды на данной станции. На литоральных станциях (глубина 1–1.5 м) пробы собирали в поверхностном слое с помощью мерной емкости (объем профильтрованной воды 100 л). Пробы фиксировали 4%-ным формалином. Камеральную обработку проб проводили по общепринятой в гидробиологии методике (Методические…, 1984). Для видовой идентификации ветвистоусых ракообразных использовали Определитель… (2010), микопаразитов – руководства (Scott, 1961; Batko, 1975).

К пораженным особям относили рачков с различимыми гифами микопаразита (рис. 1а). Для количественной характеристики зараженности животных использовали общепринятый паразитологический показатель – экстенсивность инвазии (prevalence), который рассчитывают как отношение (в процентах) количества зараженных животных к общему числу обследованных (Беклемишев, 1970).

Рис. 1.

Daphnia cucullata, пораженная Aphanomyces patersonii, а – общий вид, б – проросшие за пределы тела гифы, в – удлиненно-цилиндрический зооспорангий с инцистированными зооспорами (стрелка слева) и оогоний с ооспорами (стрелка справа).

Летом Daphnia cucullata распространена на всей акватории оз. Плещеево (табл. 1), наибольшая ее концентрация характерна для эпилимниона глубоководных участков озера. Максимальные значения численности рачка (>330 тыс. экз./м3) зафиксированы в поверхностном слое северо-восточного углубления озера, что, вероятно, обусловлено сгонно-нагонными явлениями и преобладанием ветров юго-западного и западного направления. Минимальная концентрация вида характерна для открытой литорали озера. Кладоцера D. cucullata входила в состав доминантных видов в сублиторали озера и эпилимнионе глубоководной зоны (до 34% общей численности зоопланктона). Подобное распределение D. cucullata по акватории и толще вод озера описывали и ранее. В 1990-х гг. концентрация рачка в пелагиали достигала 200 тыс. экз./м3 (Столбунова, 2006). В 2012–2016 гг. во второй половине лета рачок был многочислен в сублиторали (в отдельные годы до 17% численности ракообразных) и пелагиали озера (до 22%) (Жданова и др., 2019).

В 2020 г. на особях D. cucullata в озере найден микопаразит, идентифицированный Л.В. Ворониным как грибоподобный вид из царства Chromista, отдела Oomycota, порядка Saprolegniales (http://indexfungorum.org) – Aphanomyces patersonii Scott (табл. 1, рис. 1). Ранее его обнаружили в штате Мичиган, США и описали как новый вид на Daphnia sp. (Scott, 1961). Наиболее высокая экстенсивность инвазии (>40%) зарегистрирована в эпилимнионе глубоководной части оз. Плещеево, в сублиторали и литорали она была значительно ниже (табл. 1). Максимальное количество пораженных особей (~260 тыс. экз./м3) отмечено в поверхностном слое в северо-восточном углублении озера при очень высокой численности рачка.

Летом 1996 г. в оз. Плещеево при температуре воды 24°С наблюдали массовую гибель D. cucullata, инфицированной (до 70% популяции) другим грибоподобным оомицетом из рода Aphanomyces (Столбунова, 2006). Л.В. Воронин идентифицировал его как A. bosminae Scott, найденный до того только на Bosmina sp. и реже на Cyclops sp. в штате Мичиган, США (Scott, 1961).

Другой представитель рода AphanomycesA. daphniae Prowse, 1954 описан как паразит на Daphnia hyalinа var. lacustris Sars в Шотландии (Prowse, 1954). Освобождение первичных зооспор у него чаще происходит ночью, обычно при температуре ≤20°С. При более высокой температуре зооспоры выходят, приобретая амебоидную активность. Этот же вид обнаружен в водоемах Финляндии как внеклеточный паразит полости тела D. hyalina Leydig и D. pulex Leydig с горизонтальной трансмиссией от мертвого хозяина (Еbert, 2005). Aphanomyces patersonii, A. bosminae и A. daphniae очень сходны по морфологии и биологии, они отличаются лишь размерами инцистированных зооспор и оогониев (ооспор). У A. patersonii из оз. Плещеево зооспоры были диаметром 10–12 мкм, оогонии – ≥33 мкм.

Зооспорические грибы, принадлежащие Chytridiomycota и Oomycota, считают обычными паразитами в пресноводных экосистемах, где они поражают широкий спектр организмов, включая рыб, амфибий и их икру, зоо- и фитопланктон (Sparrow, 1960). На Daphnia sp. в Канаде (Ванкувер) зарегистрирован оомицет Lagenidium giganteum Couch (Green, 1974). На Daphnia obtusa Kurz, D. longispina Müller, D. magna Straus и D. ambigua Scourfield в прудах и озерах Франции и Англии описан как хитридиальный гриб (Chytridiales) Blastulidium paedophthorum Perez (Green, 1974), который в настоящее время относят к грибоподобным из царства Chromista (класс Oomycetes, порядок Leptomytales). Из оомицетов порядка Peronosporales на D. pulex в Чехии отмечен Pythium jirovecii Cejp (Batko, 1975). На Daphnia longispina описан хитридиевый гриб Polycaryum laeve Stempell, 1903, который относится к филуму Chytridiomycota, порядку Blastocladiales. Он же зарегистрирован на Daphnia pulex в 1961 г. в Гренландии (Green, 1974).

В работе (Wolinska et al., 2008) на основе изучения вирулентности, условий культивирования и с учетом филогенетического анализа паразитов-оомицетов у дафний высказано предположение, что оомицеты служат важным фактором отбора в естественных популяциях дафний. На данный момент однозначных причин, вызывающих микопаразитические эпидемии и их распространение, не выявлено, но их значение в функционировании водных экосистем велико (Ebert et al., 2001; Miki et al., 2011; Caceres et al., 2014).

Представители рода Daphnia могут поражаться большим числом паразитов различной таксономической принадлежности. Первые сведения о микопаразите принадлежат И.И. Мечникову. Он описал одноклеточный дрожжевой организм на Daphnia magna Straus в аквариуме как Monospora bicuspidata (Metschnikoff, 1884), по современной номенклатуре, это Metschnikowia bicuspidata (Metschn.) Kamienski T. 1900 – дрожжевой организм из отделов Ascomycota, Saccharomycotina, Saccharomycetes. Его удлиненные (игловидные) клетки проходят через стенки пищеварительного тракта и проникают в полость тела дафнии.

Во многих экосистемах большой интерес представляют обитающие на разных живых организмах одноклеточные организмы из группы микроспоридий, которые найдены также на дафниях. В настоящее время принято считать микроспоридии особой группой в царстве Fungi, не имеющей четкого положения в макросистеме грибов. В Англии на Daphnia magna описана Agglomerata cladocera Pfeifer (Larson et al., 1996). Позже выявлен сибирский изолят этого вида с грушевидными спорами 2.3 × 4.0 мкм в р. Карасут и прилегающих водоемах Новосибирской обл. (Соколова, 2019). Также на Daphnia magna зафиксирована Binucleata daphniae Refardt, Decaestecker, Johnson, Vávra в Бельгии (Refardt et al., 2008). Несколько видов микроспоридий обнаружены на дафниях в скальных лужах на островах архипелага Тварминн (Tvärminne) в южной Финляндии (Ebert, 2005). Так, на Daphnia magna отмечен Flabelliforma magnivora Larsson – внутриклеточный паразит в жировом теле и яйцах с вертикальной (от родителя потомству) трансмиссией от хозяина, а также Octosporea bayeri Jírovec, поражающий те же ткани, но с вертикальной и горизонтальной (между инфицированными и восприимчивыми особями) трансмиссией. На Daphnia pulex и D. longispina зарегистрирован Gurleya vavrai Green – внутриклеточный паразит панциря, а на Daphnia magna и D. pulexGlugoides intestinalis (Chatton) – как внутриклеточный паразит стенки кишки с горизонтальной трансмиссией от живого хозяина. На Daphnia magna выявлен Ordospora colligata Larsson – тоже внутриклеточный паразит кишечника; на Daphnia magna, D. pulex и D. longispinaLarssonia obtusa (sin. L. daphniae) (Moniez) Vidtmann, Sokolova – внутриклеточный паразит жирового тела.

Микопаразиты оказывают негативное влияние на популяции представителей рода Daphnia. В условиях мезокосма экспериментальные исследования показали уменьшение плотности популяции и снижение продуктивности дафнии при развитии дрожжевого гриба Metschnikowia bicuspidata, вирулентность паразита возрастала при повышении температуры воды от 17 до 20°С (Hall et al., 2011). Этот дрожжевой гриб отмечен на Daphnia magna, D. pulex и D. longispina как внеклеточный паразит в полости тела в наскальных озерках архипелага Тварминн в южной Финляндии, у него горизонтальная трансмиссия от мертвого хозяина (Ebert, 2005). Эксперименты во взаимоотношениях хозяина (разные виды дафний – D. dentifera Forbes, D. magna, D. laevis (Birge), D. galeata Sars) и паразита (Metschnikowia bicuspidata) показали влияние на них антропогенных загрязнителей (натриевая селитра – NaNO3) и температуры (Dallas, 2016). Загрязнение способствовало большему заражению взрослых хозяев при сравнительно низкой температуре (12°С), когда движение зооспор паразита более активно.

В 2003 г. в 14 озерах Северной Америки обнаружена инфекция хитридиевым грибом Polycaryum laeve на Daphnia pulicaria Forbes (Johnson et al., 2006). Инфицированные дафнии гибли за 42 cут (Johnson et al., 2006). Инфекция приводила к увеличению смертности, редукции роста и размножения дафнии, поражались в основном половозрелые особи. Плотность популяции D. pulicaria снижалась на 10–50% во время пиковых уровней заражения грибом (Johnson, 2009). Зооспоры выходили из спорангиев в течение 48 ч и через несколько часов инцистировались на подходящем субстрате. Зооспоры заражали дафний путем горизонтальной трансмиссии, но возможно и заражение с помощью свободноживущей стадии. Polycarium laeve характеризовался видоспецифичностью, поскольку другие виды дафнии поражались им очень редко.

Выводы. Высокий уровень поражения грибковой инфекцией Aphanomyces patersonii доминантного вида зоопланктона – ветвистоусого рачка Daphnia cucullata в оз. Плещеево – указывает на неблагоприятные условия обитания кладоцер. Необходимы дальнейшие исследования для выявления причин и прогнозирования развития грибковых инфекций ветвистоусых ракообразных, которые могут оказывать немалое влияние на трофическую структуру и функционирование экосистемы озера.

Список литературы

  1. Беклемишев В.Н. 1970. Биоценологические основы сравнительной паразитологии. Москва: Наука.

  2. Жданова С.М., Сабитова Р.З., Цветкова М.В. 2019. Состав и структура зоопланктона озера Плещеево // Тр. Ин-та биологии внутр. вод им. И.Д. Папанина РАН. Вып. 86(89). С. 57.

  3. Коровчинский Н.М., Котов А.А., Бойкова О.С., Смирнов Н.Н. 2021. Ветвистоусые ракообразные (Crustacea: Cladocera) Северной Евразии. Т. I. Москва: Товарищество науч. изданий КМК.

  4. Крылов А.В., Айрапетян А.О., Овсепян А.А. и др. 2021. Межгодовые изменения весеннего зоопланктона пелагиали оз. Севан (Армения)в ходе повышения ихтиомассы // Биология внутр. вод. № 1. С. 95. https://doi.org/10.7868/S0320965216020091

  5. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах. 1984. Зоопланктон и его продукция. Ленинград: ГосНИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва.

  6. Определитель зоопланктона и зообентоса пресных вод Европейской России. 2010. Т. 1. Зоопланктон. Москва: Товарищество науч. изданий КМК.

  7. Соколова Ю.Я. 2019. Биология клетки и биоразнообразие микроспоридий: Дис. … докт. биол. наук. Санкт-Петербург.

  8. Столбунова В.Н. 2006. Зоопланктон озера Плещеево. Москва: Наука.

  9. Экосистема озера Плещеево. 1989. Ленинград: Наука.

  10. Batko A. 1975. Zarys hydromikologii. Warszawa: PWN. P. 478.

  11. Caceres C., Davis G., Duple S. et al. 2014. Complex Daphnia interactions with parasites and competitors // Math. Biosci. V. 258. P. 148. https://doi.org/10.1016/j.mbs.2014.10.002

  12. Dallas T. 2016. Biotic and abiotic factors influencing host-pathogen dynamics in a zooplankton-fungus system. Athenes; Georgia: University of Georgia.

  13. Ebert D. 2005. Ecology, epidemiology and evolution of parasitism in Daphnia. Basel: Bethesda (MD).

  14. Ebert D., Hottinger J.W., Pajunen V.I. 2001. Temporal and spatial dynamics of parasite richness in a Daphnia metapopulation // Ecology. V. 82. P. 3417. https://doi.org/10.2307/2680162

  15. Green J. 1974. Parasites and epibionts of Cladocera // Trans. Zool. Soc. London. V. 32. P. 417.

  16. Hall S.R., Recker C.R., Duffy M.A., Cáceres C.E. 2011. Epidemic size determines population level effects of fungal parasites on Daphnia hosts // Oecologia. V. 166. P. 833. https://doi.org/10.1007/s00442-011-1905-4

  17. Johnson P.T.J., Longcore J.E., Stanton D.E. et al. 2006. Chytrid infections of Daphnia pulicaria: development, ecology, pathology and phylogeny of Polycarium leave // Freshwater Biol. V. 51. P. 634. https://doi.org/10.1111/j.1365-2427.2006.01517.x

  18. Johnson P.T.J., Ives A.R., Lathrop R.C. et al. 2009. Long-term disease dynamics in lakes: causes and consequences of chytrid infections in Daphnia populations // Ecology. V. 90. P. 132. https://doi.org/10.1890/07-2071.1

  19. Larson J.I.R., Ebert D., Várva J. 1996. Ultrastructural study of Glugea cladocera Pfeiffer, 1895, and transfer to the genus Agglomerata (Microspora, Dubosqiidae) // Europ. J. Protistol. V. 32. № 4. P. 412.

  20. Metschnikoff E. 1884. Ueber eine Sprosspilzkrankheit der Daphnien. Beitrag zur Lehre iiber den Kampf der Phagocyten gegen Krankheitserreger // Archiv für pathologische Anatomie und Physiologie und für klinische Medicin. V. 96. P. 177.

  21. Miki T., Takimoto G., Kagami M. 2011. Roles of parasitic fungi in aquatic food webs: a theoretical approach // Freshwater Biol. V. 56. P. 1173. https://doi.org/10.1111/j.1365-2427.2010.02562.x

  22. Prowse G.A. 1954. Aphanomyces daphniae sp. nov., parasitic on Daphnia hyalina // Trans. Brit. Mycol. Soc. V. 37. P. 22.

  23. Refardt D., Decaestecker E., Jonson P.T.J., Várva J. 2008. Morphology, molecular phylogeny, and ecology of Binucleata daphniae n.g., n.sp. (Fungi, Microsporidia), a parasite of Daphnia magna Straus, 1820 (Crustacea: Branchipoda) // J. Eucaryot. Microbiol. V. 55. № 5. P. 393. https://doi.org/10.1111/j.1550-7408.2008.00341.x

  24. Scott W.W. 1961. A monograph of the genus Aphanomyces // Technical Bulletin. Virginia Agricultural experiment station.

  25. Sparrow F.K. 1960. Aquatic Phycomycetes. Ann Arbor: University of Michigan Press.

  26. Tang K., Gladyshev M.I., Dubovskaya O.P. et al. 2014. Zooplankton carcasses and non-predatory mortality in freshwater and inland sea environments // J. Plankton Res. V. 36. № 3. P. 597. https://doi.org/10.1093/plankt/fbu014

  27. Wolinska J., King K.C., Vigneux F., Lively C.M. 2008. Virulence, cultivating conditions, and phylogenetic analyses of oomycete parasites in Daphnia // Parasitology. P. 1. https://doi.org/10.1017/S0031182008005052

Дополнительные материалы отсутствуют.