1. На главную
  2. Электронные версии
  3. Биология внутренних вод
  4. № 3, 2022

Биология внутренних вод, 2022, № 3, стр. 332-336

Активное участие печени в реакции организма леща Abramis brama при инфицировании трипаносомами рода Trypanosoma

Т. Б. Лапирова a, *

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
пос. Борок, Некоузский р-н, Ярославская обл., Россия

* E-mail: ltb@ibiw.ru

Поступила в редакцию 23.06.2021
После доработки 05.11.2021
Принята к публикации 08.11.2021

Аннотация

Приведены данные биохимического анализа ткани печени зараженного трипаносомами леща Abramis brama L. Установлено, что присутствие паразитов вызвало изменения исследованных параметров (концентрации общего белка, иммунных комплексов, глюкозы и гликогена) по сравнению со здоровыми рыбами. Выявленные различия были статистически незначимы. В целом, характер изменений указывает на некоторое снижение пластических и энергетических ресурсов рыб-хозяев, а также на увеличение антигенной нагрузки. Общая клиническая картина на момент отлова рыб характерна для хронической стадии течения заболевания в условиях невысокого уровня паразитемии. Полученные результаты свидетельствуют об активном участии печени в реакции рыб на внедрение паразита.

Ключевые слова: лещ, Abramis brama, Угличское водохранилище, трипаносомоз, печень, белок, иммунные комплексы, глюкоза, гликоген

Список литературы

  1. Голицына Н.Б. 1985. Трипаносомы рыб // Экология паразитических организмов. Петрозаводск: Изд-во Карельского филиала АН СССР. С. 33.

  2. Гриневич Ю.А., Алферов А.Н. 1981. Определение иммунных комплексов в крови онкологических больных // Лаб. дело. № 8. С. 493.

  3. Дебольский В.К., Григорьева И.Л., Комиссаров А.Б. и др. 2010. Современная гидрологическая характеристика реки Волга и ее водохранилищ // Вода: химия и экология. № 11(29). С. 2.

  4. Лазарева Г.А. 2016. Оценка качества вод Угличского водохранилища по интегральным гидрохимическим показателям // Вестник Московского государственного областного университета. Серия: Естественные науки. № 2. С. 158. https://doi.org/ (Lazareva G.A. Estimation of water quality of Uglichsky reservoir by integrated hydrochemical factors // Bulletin of Moscow State Regional University. Series: Natural Sciences. 2016. № 2. Р. 158–164. https://doi.org/10.18384/2310-7189-2016-2-158-164).

  5. Логинов С.И., Смирнов П.Н., Трунов А.Н. 1999. Иммунные комплексы у животных и человека: норма и патология. Новосибирск: Изд-во СО РАСХН.

  6. Минеева Н.М., Семадени И.В., Макарова О.С. 2020. Содержание хлорофилла и современное трофическое состояние водохранилищ р. Волги (2017–2018 гг.) // Биология внутр. вод. № 2. С. 205.https://doi.org/10.31857/S0320965220020102

  7. Сигарева Л.Е., Тимофеева Н.А., Ложкина Р.А. 2021. Современное трофическое состояние бентали Иваньковского и Угличского водохранилищ по содержанию осадочных пигментов // Биология внутр. вод. № 2. С. 159. https://doi.org/10.31857/S0320965221020145

  8. Хайбулаев К.Х. 1970. О роли пиявок в жизненном цикле кровепаразитов рыб // Паразитология. Т. 4. Вып. 1. С. 13.

  9. Хайбулаев К.Х., Гусейнов М.А. 1985. Изучение развития трипаносом (Trypanosoma) и криптобий (Cryptobia) карпа и линя в пиявке Piscicola geometra // Паразитология. Т. 19. Вып. 1. С. 75.

  10. Bienek D.R., Plouffe D.A., Wiegertjes G.F. et al. 2002. Immunization of goldfish with excretory/secretory molecules of Trypanosoma danilewskyi confers protection against infection // Dev. Comp. Immunol. V. 26(7). P. 649. https://doi.org/10.1016/S0145-305X(02)00018-6

  11. Clauss T.M., Dove A.D.M., Arnold J.E. 2008. Hematologic Disorders of Fish // Veterinary Clinics: Exotic Animal Practice. V. 11. P. 445. https://doi.org/10.1016/j.cvex.2008.03.007

  12. Cooper C., Clode P.L., Peacock C. et al. 2017. Host–Parasite Relationships and Life Histories of Trypanosomes in Australia (Chapter Two) // Advances in Parasitology. V. 97. P. 47. https://doi.org/10.1016/bs.apar.2016.06.001

  13. Dalmo R.A., Ingerbrigtsen K., Bogwald J. 1997. Non-specific defense mechanism in fish with special reference to the reticuloendothelial system (RES) // J. Fish Dis. V. 20. P. 241.

  14. Evans D.L., Gratzek J.B. 1989. Immune Defense Mechanisms in Fish to Protozoan and Helminth Infections // Amer. Zool. V. 29. P. 409.

  15. Grybchuk-Ieremenko A., Losev A., Kostygov A.Yu. et al. 2014. High prevalence of trypanosome co-infections in freshwater fishes // Folia Parasitol. V. 61(6). P. 495. https://doi.org/10.14411/fp.2014.064

  16. Gupta N., Gupta D.K. 2012. Erythropenia in piscine trypanosomiasis // Trends in Parasitol. V. 1. P. 1.

  17. Hayes P.M., Lawton S.P., Smit N.J. et al. 2014. Morphological and molecular characterization of a marine fish trypanosome from South Africa, including its development in a leech vector // Parasites & Vectors. V. 7(50). https://doi.org/10.1186/1756-3305-7-50

  18. Lapirova T.B., Zabotkina E.A. 2018. Effect of trypanosomiasis on hematologic characteristics of bream (Abramis brama) // Regul. Mech. Biosyst. V. 8(3). P. 309. https://doi.org/10.15421/021845

  19. Lemos M., Fermino B.R., Simas-Rodrigues C. et al. 2015. Phylogenetic and morphological characterization of trypanosomes from Brazilian armoured catfishes and leeches reveal high species diversity, mixed infections and a new fish trypanosome species // Parasites & Vectors. V. 8(573). https://doi.org/10.1186/s13071-015-1193-7

  20. Lowe-Jinde L. 1980. Observations of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, infected with Cryptobia salmostica // J. Fish Biol. V. 17. P. 23. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1980.tb02739.x

  21. Mehlhorn H. 2015. Trypanosoma Species of Fish // Encyclopedia of Parasitol. https://doi.org/10.1007/978-3-642-27769-6_4440-1

  22. Minhorst A., Liebezeit G. 2003. Determination of Glycogen in Tissues of the Blue Mussel Mytilus edulis L. // Senckenbergiana maritima. V. 32. № 1–2. P. 191.

  23. Morrison L.J., McLellan S., Sweeney L. et al. 2010. Role for parasite genetic diversity in differential host responses to Trypanosoma brucei infection // Infect. Immun. V. 78. P. 1096. https://doi.org/10.1128/IAI.00943-09

  24. Nair R.M., George K.C., Sanil N.K., Sobhana K.S. 2003. Reticuloendothelial system of defense in Oreochromis mossambicus (Peters) // Indian J. Fish. V. 50. № 2. P. 139.

  25. Nordlie R.C., Foster J.D., Lange A.J. 1999. Regulation of glucose production by the liver // Ann. Rev. Nutrition. V. 19. P. 379. https://doi.org/10.1146/annurev.nutr.19.1.379

  26. Olsen O.W. 1986. Animal Parasites: Their Life Cycles and Ecology. Baltimor: University Park Press.

  27. Osman H.A.M., Fadel N.G., Ali A.T. 2009. Biochemical and histopathological alterations in catfish, Clarias gariepinus, infected with trypanosomiasis with special reference to immunization // J. Egypt. Com. Path. Clinic. Path. V. 22. P. 164.

  28. Overath P., Haag J., Mameza M. G., Lischke A. 1999. Freshwater fish trypanosomes: definition of two types, host control by antibodies and lack of antigenic variation // Parasitol. V. 119. Pt. 6. P. 591. https://doi.org/10.1017/s0031182099005089

  29. Parker G.A., Picut C.A. 2005. Liver Immunobiology // Toxicol. Pathol. V. 33. P. 52. https://doi.org/10.1080/01926230590522365

  30. Saleh M.A., Al-Salahy M.B., Sanousi S.A. 2009. Oxidative stress in blood of camels (Camelus dromedaries) naturally infected with Trypanosoma evansi // Vet. Parasitol. V. 162. P. 192.

  31. Sazmand A., Rasooli A., Nouri M. et al. 2011. Serobiochemical alterations in subclinically affected dromedary camels with Trypanosoma evansi in Iran // Pakistan Vet. J. V. 31(3). P. 223.

  32. Shahi N., Yousuf A.R., Rather M.I. et al. 2013. First report of blood parasites in fishes from Kashmir and their effect on the haematological profile // Open Vet. J. V. 3(2). P. 89.

  33. Takeet M.I., Fagbemi B.O. 2009. Haematological, pathological and plasma biochemical changes in rabbits experimentally infected with Trypanosoma congolense // Science World Journal. V. 4(2). P. 29.

  34. Wang M., Yan S., Wang Yu et al. 2015. Occurrence of trypanosomiasis in net cage cultured groupers (Cromileptes altivelis and Epinephelus fuscoguttatus) in Nanshan port of Sanya, Hainan province, China // Aquacult. Res. V. 46(5). P. 1039. https://doi.org/10.1111/are.12261

  35. Woo P.T.K. 2001. Cryptobiosis and its control in North American fishes // Int. J. Parasitol. V. 31. P. 566. https://doi.org/10.1016/S0020-7519(01)00169-2

Дополнительные материалы отсутствуют.

Инструменты

предыдущая статья выпуска содержание выпуска

Биология внутренних вод

Архивы выпусков Информация о журнале Отправить рукопись в журнал