Генетика, 2021, T. 57, № 9, стр. 1039-1053

Филогенетические связи видов Азиатской России подродов Phacoxytropis и Tragacanthoxytropis рода Oxytropis на основе полиморфизма маркеров хлоропластного и ядерного геномов

А. Б. Холина 1*, М. М. Козыренко 1, Е. В. Артюкова 1, М. Н. Колдаева 2, Д. В. Санданов 3, И. Ю. Селютина 4

1 Федеральный научный центр биоразнообразия наземной биоты Восточной Азии Дальневосточного отделения Российской академии наук
690022 Владивосток, Россия

2 Ботанический сад-институт Дальневосточного отделения Российской академии наук
690022 Владивосток, Россия

3 Институт общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук
670047 Улан-Удэ, Россия

4 Центральный Сибирский ботанический сад Сибирского отделения Российской академии наук
630090 Новосибирск, Россия

* E-mail: kholina@biosoil.ru

Поступила в редакцию 05.11.2020
После доработки 15.12.2020
Принята к публикации 18.01.2021

Полный текст (PDF)

Аннотация

На основе анализа нуклеотидного полиморфизма межгенных спейсеров psbA–trnH, trnL–trnF и trnS–trnG хлоропластной ДНК видов Oxytropis Азиатской России (O. tragacanthoides секции Hystrix подрода Tragacanthoxytropis, O. coerulea, O. filiformis и O. mandshurica секции Janthina и O. deflexa и O. glabra секции Mesogaea подрода Phacoxytropis) установлено, что все популяции характеризуются высоким гаплотипическим разнообразием (h изменяется от 0.676 до 1.000), кроме видов секции Mesogaea (h изменяется от 0 до 0.333). Обнаружены видоспецифичные маркеры у O. tragacanthoides, O. deflexa, O. glabra и O. mandshurica, а также специфичные маркеры для секции Mesogaea. Реконструкция филогенетических связей хлоротипов видов подродов Phacoxytropis, Tragacanthoxytropis и Oxytropis показала, что виды секции Janthina с высокой достоверностью объединяются в одну кладу с видами подродов Tragacanthoxytropis и Oxytropis, однако взаимоотношения их остались неразрешенными. Анализ генеалогических связей риботипов ITS ядерной ДНК выявил общий риботип у видов O. tragacanthoides, O. coerulea, O. lanata, O. chankaensis, O. oxyphylla и O. triphylla, относящихся к трем подродам. Выявленная генетическая близость при четких морфологических различиях характерна для таксонов с общим происхождением, испытавших относительно недавнюю быструю адаптивную радиацию. Полученные данные полиморфизма маркеров ядерного и хлоропластного геномов подтверждают статус O. coerulea, O. filiformis и O. mandshurica как самостоятельных видов.

Ключевые слова: Oxytropis, Fabaceae, генетическое разнообразие, филогенетические связи, хлоропластная ДНК, ITS.

Род Oxytropis DC. (сем. Fabaceae) сформировался предположительно около 5.6 млн лет назад на границе миоцена–плиоцена [1, 2] в ходе эволюции древних видов рода Astragalus L. подрода Phaca (L.) Bunge [2, 3]. По морфологическим признакам и экологии к ним наиболее близки виды Oxytropis deflexa (Pall.) DC. и O. glabra (Lam.) DC. секции Mesogaea Bunge подрода Phacoxytropis Bunge [24]. Только эти два вида секции представлены во флоре Азиатской России [5]. O. deflexa – это восточносибирско-североамериканский вид, который обнаруживает значительный полиморфизм на протяжении обширного прерывистого ареала [46]; считается реликтом, наиболее древним видом секции [3]; занесен в региональные Красные книги, так как существует в изолированных малочисленных популяциях. O. glabra – полиморфный вид, распространенный в европейской части России (Башкирия, р. Урал), Средней и Центральной Азии, Монголии и Северо-Западном Китае [57].

Подрод Phacoxytropis включает также секцию Janthina Bunge, виды которой морфологически сходны с видами секции Mesogaea [5]. В Азиатской России секция Janthina представлена шестью видами: O. kaspensis Krasnob. et Pschen., O. ladyginii Kryl., O. saposhnikovii Kryl., O. coerulea (Pall.) DC., O. filiformis DC., O. mandshurica Bunge, отношения между тремя последними видами довольно сложные [5]. Малышев [5] отмечал, что O. filiformis плохо отличается от O. coerulea и интрогрессирует с ней в Предбайкалье и Забайкалье; O. filiformis и O. mandshurica – это самостоятельные виды; O. caerulea (Pall.) DC. и O. coerulea Turcz. являются синонимами O. coerulea (Pall.) DC. Авторы работы “Флора Китая” [6] для O. filiformis в качестве синонима приводят O. coerulea Turcz., а для O. caerulea (Pall.) DC. – O. mandshurica, и относят O. filiformis и O. caerulea к секции Eumorpha (Bge.) Abduss., которую вместе с секциями Mesogaea и Janthina помещают в подрод Oxytropis ex genere Oxytropis DC. В дальнейшем исследование нуклеотидного полиморфизма маркеров хлоропластного генома видов Азиатской России подродов Oxytropis и Phacoxytropis [8] показало, что подроду Phacoxytropis корреспондирует лишь секция Mesogaea, а секция Janthina этого же подрода объединяется с секциями Orobia Bunge, Verticillares DC. и Xerobia Bunge подрода Oxytropis. Кроме того, были выявлены молекулярные различия между O. coerulea и O. mandshurica, которые свидетельствуют о самостоятельности этих таксонов. Однако до сих пор существуют противоречия и другие нерешенные вопросы.

Подрод Tragacanthoxytropis Vass. является иной древней ветвью рода Oxytropis. Виды этого подрода представлены кустарничковыми формами и морфологически резко отличаются от видов других подродов [3, 9]. Одним из наиболее интересных видов подрода Tragacanthoxytropis является O. tragacanthoides Fisch. ex DC. секции Hystrix Bunge. Это горно-степной вид c прерывистым ареалом, встречается в Центральном и Юго-Восточном Алтае и Монголии, изредка отмечается в Тувинской котловине и Хакасии, где проходит северная граница ареала, а также в нескольких пунктах Прибайкалья [5, 9]. O. tragacanthoides считается реликтом миоцен-плиоценовой флоры [3, 9]; занесен в региональные Красные книги как вид уязвимый, находящийся под угрозой исчезновения, и как вид, возможно, исчезнувший.

Данная работа является продолжением популяционных исследований эндемичных видов Oxytropis [1014] и филогенетических связей видов секций Verticillares [15], Orobia [16], Arctobia [17] и подродов рода Oxytropis [8] по данным секвенирования межгенных спейсеров psbA–trnH, trnL–trnF и trnS–trnG хлоропластной ДНК (хпДНК) и ITS ядерной ДНК (рДНК).

Цель исследования – изучение генетического разнообразия и популяционной структуры видов Oxytropis Азиатской России секций Mesogaea и Janthina подрода Phacoxytropis, секции Hystrix подрода Tragacanthoxytropis и реконструкция филогенетических связей видов подродов Phacoxytropis, Tragacanthoxytropis и Oxytropis по данным изменчивости нуклеотидных последовательностей межгенных спейсеров psbA–trnH, trnL–trnF и trnS–trnG хпДНК и ITS рДНК.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Материалом служили 124 растения, относящиеся к шести видам: O. tragacanthoides (20 образцов) секции Hystrix подрода Tragacanthoxytropis, O. coerulea (18), O. filiformis (20) и O. mandshurica (34) секции Janthina, O. deflexa (25) и O. glabra (7) секции Mesogaea подрода Phacoxytropis из 22 природных местонахождений (табл. 1, рис. 1). Названия видов, секций и подродов рода Oxytropis приведены согласно обработке Малышева [5].

Таблица 1.

Исследуемые популяции видов Oxytropis подродов Tragacanthoxytropis и Phacoxytropis и параметры генетического разнообразия по данным хпДНК

Вид, местонахождение
(число образцов)
Координаты
с.ш., в.д.
Код Гаплотип Разнообразие
h (SD) π (SD)
Подрод Tragacanthoxytropis
Секция Hystrix
O. tragacanthoides
Республика Алтай, плато Укок, правобережье р. Жумалы, высота 2422 м (10) 49.51°, 88.06° TRA1 P1–P7 0.867 (0.107) 0.0048 (0.0027)
Республика Алтай, окр. с. Чаган-Узун, высота 1780 м (5) 50.10°, 88.38° TRA2 P8–P10 0.700 (0.218) 0.0008 (0.0006)
Монголия, Центральный аймак, окр. сомона Ундэрширээт, высота 1282 м (5) 47.55°, 105.11° TRA3 P11–P13 0.800 (0.164) 0.0005 (0.0004)
Подрод Phacoxytropis
Секция Janthina
O. coerulea
Республика Бурятия, окр. с. Заиграево, высота 675 м (5) 51.87°, 108.24° COE1 P14–P17 0.900 (0.161) 0.0017 (0.0012)
Иркутская обл., окр. с. Сарма, высота 476 м (12) 53.12°, 106.85° COE2 P18–P27 0.970 (0.044) 0.0046 (0.0025)
Иркутская обл., западное побережье оз. Байкал, окр. п. Сахюрта (1) 53.01°, 106.89° COE3 P28
O. filiformis
Забайкальский край, окр. оз. Ножий, высота 686 м (4) 50.82°, 114.72° FIL1 P29–P32
Монголия, Центральный аймак, окр. сомона Аргалант, высота 1488 м (5) 47.77°, 105.90° FIL2 P29,
P33–P36
1.000 (0.126) 0.0048 (0.0031)
Монголия, Восточный аймак, окр. сомона Гурванзагал, высота 837 м (2) 48.86°, 115.11° FIL3 P37, P38
Монголия, Восточный аймак, окр. сомона Гурванзагал, высота 797 м (9) 49.27°, 114.71° FIL4 P30, P37,
P39–P41
0.722 (0.159) 0.0012 (0.0008)
O. mandshurica
Приморский край, Сихотэ-Алинский заповедник, бух. Удобная (15) 44.95°, 136.55° MAN1 P42–P47 0.838 (0.061) 0.0015 (0.0009)
Приморский край, Сихотэ-Алинский заповедник, кордон “Благодатное” (4) 45.21°, 136.53° MAN2 P45
Приморский край, окр. г. Дальнегорск, падь Барачная (15) 44.57°, 135.62° MAN3 P42, P45, P48, P49 0.676 (0.101) 0.0004 (0.0003)
Секция Mesogaea
O. deflexa
Республика Бурятия, Джергинский заповедник, урочище Биранкур (2) 55.11°, 111.46° DEF1 P50, P51
Республика Тыва, Саянский перевал (1) 51.43°, 89.53° DEF2 P52
Магаданская обл., окр. г. Сусуман (9) 62.83°, 148.22° DEF3 P53, P54 0.222 (0.166) 0.0098 (0.0054)
Магаданская обл., окр. с. Оротук, надпойменная терраса р. Колыма (9) 62.10°, 148.49° DEF4 P54 0.000 (0.000) 0.0000 (0.0000)
Магаданская обл., п-ов Пьягина, мыс Средний, у ручья (1) 59.32°, 154.57° DEF5 P55
Магаданская обл., пос. Сеймчан (1) 62.93°, 152.39° DEF6 P55
Восточный Таймыр, район слияния рек Большая Лесная Рассоха и Новая (2) 72.60°, 101.26° DEF7 P55, P56
O. glabra
Республика Бурятия, окр. с. Оронгой, высота 528 м (6) 51.55°, 107.03° GLA1 P57, P58 0.333 (0.215) 0.0001 (0.0002)
Красноярский край, окр. с. Темра, берег оз. Гнилое (1) 55.43°, 89.27° GLA2 P59

Примечание. SD – стандартное отклонение.

Рис. 1.

Карта-схема с указанием мест сбора растений видов Oxytropis tragacanthoides секции Hystrix подрода Tragacanthoxytropis, O. coerulea, O. filiformis и O. mandshurica секции Janthina, O. deflexa и O. glabra секции Mesogaea подрода Phacoxytropis из 22 природных местонахождений. Код популяции см. табл. 1.

ДНК экстрагировали из лиофильно высушенных листьев. Буфер для экстракции содержал 100 мM Трис-HCl (pH 8.0), 0.7 M NaCl, 40 мМ EDTA, 1% СTAB (hexadecyltrimethylammonium bromide) и 10 мл/л β-меркаптоэтанола. Экстракт инкубировали при 65°С в течение 40 мин. ДНК депротеинизировали смесью хлороформ : октанол (24 : 1) и осаждали равным объемом изопропанола в присутствии 0.3 M ацетата натрия. ДНК промывали 75%-ным этанолом и растворяли в буфере, содержащем 10 мМ Трис-HCl (рН 8.0) и 1 мМ EDTA. Количество ДНК в образце определяли путем сравнения с ДНК фага лямбда известной концентрации методом электрофореза в 1.4%-ном агарозном геле [10]. Методы амплификации межгенных спейсеров psbA–trnH, trnL–trnF и trnS–trnG приведены в наших предыдущих работах [8, 12, 13]. ITS регион рДНК амплифицирован с праймерами ITS1 и ITS4 в реакционных условиях и температурном режиме, приведенных в работе [18]. Циклическое секвенирование обеих цепей фрагментов ДНК осуществляли с использованием набора флуоресцентно меченых нуклеотидов Big Dye Terminator v. 3.1 (Applied Biosystems, США). Нуклеотидные последовательности прямых и обратных цепей определяли на генетическом анализаторе ABI 3500 (Applied Biosystems), затем редактировали и собирали с помощью пакета программ Staden Package v. 1.5 [19]. Для каждого образца последовательности регионов выравнивали в программе SeaView v. 4.7 [20].

Матрицу объединенных последовательностей трех спейсеров хпДНК использовали для расчета гаплотипического (h) и нуклеотидного (π) разнообразия (для популяций с числом образцов пять и более), степени дивергенции (Dxy) между популяциями/видами на основе нуклеотидных замен, для анализа молекулярной дисперсии (AMOVA) и для идентификации гаплотипов с помощью пакетов программ Arlequin v. 3.5 [21] и DnaSP v. 5.0 [22]. Статистическую значимость (P) индексов фиксации (ΦST) оценивали на основе 1023 пермутаций. Филогенетический анализ проводили методами ML, MP и NJ с помощью пакета программ PAUP v. 4.0b10 [23]. Оптимальную модель эволюции нуклеотидных замен для ML-анализа выбирали в программе Modeltest v. 3.06 [24] с использованием иерархических тестов. Для ML и MP анализов применяли эвристический поиск оптимальной топологии с алгоритмом TBR (Tree Bisection-Reconnection). Статистическую достоверность порядка ветвления оценивали с помощью бутстреп-анализа 1000 альтернативных деревьев (BP, %). Кроме того, был использован баесовский подход (Bayesian Inference, BI) в программе MrBayes 3.1.6 [25] на портале CIPRES (http://www.phylo.org/) [26]. Для оценки достоверности определены апостериорные вероятности (Posterior Probabilities, РР). Значения BP < 50% и РР < 0.95 не рассматривались. В качестве внешней группы были использованы полученные нами ранее [8] нуклеотидные последовательности этих же спейсеров (LM653198, LM653161, LM653235) A. davuricus (Pall.) DC. Генеалогические связи риботипов ITS рДНК анализировали методом медианного связывания (MJ) в программе Network v. 5.0.1.1 [27], кодируя каждую делецию/вставку, независимо от ее размера, как единичное мутационное событие. В качестве внешней группы была использована полученная нами ранее последовательность ITS (LM653272) A. davuricus.

Работа проводилась с использованием оборудования ЦКП “Биотехнология и генетическая инженерия” ФНЦ Биоразнообразия ДВО РАН.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Нуклеотидные последовательности каждого из регионов psbA–trnH, trnL–trnF и trnS–trnG хпДНК у 124 образцов исследованных видов характеризуются относительно низкой нуклеотидной изменчивостью и разной длиной вследствие присутствия коротких (1–8 пн) и длинных (52–168 пн) инсерций/делеций (инделей), моно- и динуклеотидных повторов. Длина объединенной матрицы трех регионов после выравнивания составила 2769 сайтов. Обнаружено 42 вариабельные нуклеотидные замены, из них 38 были информативны согласно методу максимальной экономии и 4 единичные. Выявлено 59 хлоротипов (P1–P59), из них 40 (67.8%) уникальные, общих хлоротипов у видов не обнаружено (табл. 1). Последовательности хлоротипов депонированы в GenBank/ENA/EMBL-EBI, номера доступа приведены в табл. 2. У всех изученных видов, кроме O. coerulea и O. filiformis, обнаружены видоспецифичные маркеры. Так, последовательности O. mandshurica и O. tragacanthoides имеют нуклеотид A в позициях 862 и 1658 соответственно. У O. deflexa выявлены четыре нуклеотидные замены (T в позициях 332 и 1406, C в позиции 2105, G в позиции 1410) и вставка 97–110 пн (позиции 684–793); у O. glabra – шесть нуклеотидных замен (G в позициях 261, 332, 1935, 2099, 2597 и T в позиции 2346) и делеция нуклеотида А в позиции 861. Кроме того, обнаружены маркерные нуклеотидные замены, специфичные для секции Mesogaea: все последовательности представителей этой секции имеют шесть замен (G в позиции 136, T в позиции 618, С в позициях 650 и 1087, A в позициях 1393 и 1394) и шесть инделей длиной от 1 до 6 пн, отсутствующих у других. Популяции O. tragacanthoides подрода Tragacanthoxytropis и видов O. coerulea, O. filiformis и O. mandshurica секции Janthina подрода Phacoxytropis характеризуются высоким гаплотипическим и низким/средним нуклеотидным разнообразием, а популяция O. glabra – низким гаплотипическим и нуклеотидным разнообразием. В популяции O. deflexa DEF3 при низком гаплотипическом разнообразии выявлен достаточно высокий уровень нуклеотидного разнообразия, а популяция DEF4 оказалась мономорфной (табл. 1).

Таблица 2.

Хлоротипы видов Oxytropis и номера доступа в GenBank/ENA/EMBL-EBI нуклеотидных последовательностей межгенных спейсеров psbA–trnH, trnL–trnF и trnS–trnG хпДНК

Хлоротип Номер доступа
psbA–trnH trnL–trnF trnS–trnG
O. tragacanthoides
P1 MW172222 MW177548 MW177535
P2 MW172223 MW177549 MW177536
P3 MW172224 MW177550 MW177537
P4 MW172225 MW177551 MW177538
P5 MW172226 MW177552 MW177539
P6 MW172227 MW177553 MW177540
P7 MW172228 MW177554 MW177541
P8 MW172229 MW177555 MW177542
P9 MW172230 MW177556 MW177543
P10 MW172231 MW177557 MW177544
P11 MW172232 MW177558 MW177545
P12 MW172233 MW177559 MW177546
P13 MW172234 MW177560 MW177547
O. coerulea
P14 LR898256 LR898302 LR898413
P15 LR898257 LR898303 LR898414
P16 LR898258 LR898304 LR898415
P17 LR898259 LR898305 LR898416
P18 LR898260 LR898306 LR898417
P19 LR898261 LR898307 LR898418
P20 LR898262 LR898308 LR898419
P21 LR898263 LR898309 LR898420
P22 LR898264 LR898310 LR898421
P23 LR898265 LR898311 LR898422
P24 LR898266 LR898312 LR898423
P25 LR898267 LR898313 LR898424
P26 LR898268 LR898314 LR898425
P27 LR898269 LR898315 LR898426
P28 LR898270 LR898316 LR898427
O. filiformis
P29 LR898271 LR898317 LR898428
P30 LR898272 LR898318 LR898429
P31 LR898273 LR898319 LR898430
P32 LR898274 LR898320 LR898431
P33 LR898275 LR898321 LR898432
P34 LR898276 LR898322 LR898433
P35 LR898277 LR898323 LR898434
P36 LR898278 LR898324 LR898435
P37 LR898278 LR898325 LR898436
P38 LR898280 LR898326 LR898437
P39 LR898281 LR898327 LR898438
P40 LR898282 LR898328 LR898439
P41 LR898283 LR898329 LR898440
O. mandshurica
P42 LR898284 LR898330 LR898441
P43 LR898285 LR898331 LR898442
P44 LR898286 LR898332 LR898443
P45 LR898287 LR898333 LR898444
P46 LR898288 LR898334 LR898445
P47 LR898289 LR898335 LR898446
P48 LR898290 LR898336 LR898447
P49 LR898291 LR898337 LR898448
O. deflexa
P50 LR898292 LR898338 LR898449
P51 LR898293 LR898339 LR898450
P52 LR898294 LR898340 LR898451
P53 LR898295 LR898341 LR898452
P54 LR898296 LR898342 LR898453
P55 LR898297 LR898343 LR898454
P56 LR898298 LR898344 LR898455
O. glabra
P57 LR898299 LR898345 LR898456
P58 LR898300 LR898346 LR898457
P59 LR898301 LR898347 LR898458
O. triphylla*
H1 LT856461 LT856494 LT856527
H2 LT856462 LT856495 LT856528
H3 LT856463 LT856496 LT856529
H4 LT856464 LT856497 LT856530
H5 LT856465 LT856498 LT856531
H6 LT856466 LT856499 LT856532
H7 LT856467 LT856500 LT856533
H10 LT856472 LT856505 LT856538
O. lanata**
V1 LT994841 LT994895 LT994949
V3 LT994843 LT994897 LT994951
V4 LT994844 LT994898 LT994952
V5 LT994845 LT994899 LT994953
V7 LT994847 LT994901 LT994955
V9 LT994849 LT994903 LT994957
V13 LT994853 LT994907 LT994961
V14 LT994854 LT994908 LT994962
V16 LT994856 LT994910 LT994964
V18 LT994858 LT994912 LT994966
O. gracillima**
V58 MH174938 LT996062 LT996067
V59 LT996058 LT996063 LT996068
V60 LT996059 LT996064 LT996069
V61 LT996060 LT996065 LT996070
V62 LT996061 LT996066 LT996071
O. sordida***
H1 LS991870 LS991896 LS991922
H2 LS991871 LS991897 LS991923
H3 LS991872 LS991898 LS991924
H4 LS991873 LS991899 LS991925
H5 LS991874 LS991900 LS991926
O. ochotensis****
H1 MK806162 MK806201 MK806240
H2 MK806163 MK806202 MK806241
H3 MK806164 MK806203 MK806242
H4 MK806165 MK806204 MK806243
H5 MK806166 MK806205 MK806244
H7 MK806168 MK806207 MK806246
H9 MK806170 MK806209 MK806248
H11 MK806172 MK806211 MK806250
H12 MK806173 MK806212 MK806251
H14 MK806175 MK806214 MK806253

Примечание. Номера доступа, выделенные курсивом, приведены в предыдущих исследованиях: * – [12], ** – [15], *** – [14], **** – [16].

Согласно результатам AMOVA (табл. 3), самые большие и значимые межпопуляционные различия у O. deflexa и у O. tragacanthoides (ΦST = 0.81602 и ΦST = 0.75975 соответственно, P < 0.0001), около 35% от общей генетической изменчивости приходится на межпопуляционную компоненту у O. coerulea и у O. mandshurica (ΦST = 0.34055, P < 0.05 и ΦST = 0.33889, P < 0.0001 соответственно). Статистически незначимая высокая дифференциация определена между популяциями O. glabra (ΦST = 0.71429, P > 0.05), а у O. filiformis дифференциация между популяциями отсутствует (ΦST = = –0.08489, P > 0.05). Другим показателем степени генетической разобщенности между популяциями является дивергенция нуклеотидных последовательностей (Dxy). У O. tragacanthoides межпопуляционные значения Dxy (среднее число нуклеотидных замен на один сайт и среднее число нуклеотидных различий (число фиксированных различий)) изменяются от 0.00142 до 0.00226 и от 3.400 (3) до 5.400 (2) соответственно. Наименьшие значения Dxy определены между популяциями у O. mandshurica и у O. filiformis (табл. 4), наибольшие – между популяциями O. deflexa, между двумя популяциями O. glabra дивергенция отсутствует (табл. 5).

Таблица 3.

Распределение генетической изменчивости (AMOVA) между группами Oxytropis

Источник дисперсии Генетические различия (%) между
группами популяциями внутри групп особями в популяции
Популяции видов Oxytropis
Одна группа: (популяции O. tragacanthoides) 75.97* 24.03
Одна группа: (популяции O. coerulea) 34.05** 65.95
Одна группа: (популяции O. filiformis) –8.49 ns 108.49
Одна группа: (популяции O. mandshurica) 33.89* 66.11
Одна группа: (популяции O. deflexa) 81.60* 18.4
Одна группа: (популяции O. glabra) 71.43 ns 28.57
Две группы: (популяции O. coerulea) и (популяции O. filiformis) 19.72 ns 16.51** 32.98*
Три группы: (популяции O. coerulea), (популяции O. filiformis) и (популяции O. mandshurica) 57.41* 10.03** 32.56*
Две группы: (популяции O. deflexa) и (популяции O. glabra) 74.74** 21.17* 4.09*
Две группы: (популяции видов секции Janthina) и (популяции видов секции Mesogaea) 89.75* 8.91* 1.33*
Две группы: (популяции O. tragacanthoides) и (популяции видов секции Janthina) 32.23** 44.68* 23.09*
Две группы: (популяции O. tragacanthoides) и (популяции видов секции Mesogaea) 79.94** 18.32* 1.74*

Примечание. * P < 0.0001; ** P < 0.05; ns – незначимое. Уровень значимости определен на основе 1023 пермутаций.

Таблица 4.

Нуклеотидная дивергенция между популяциями видов Oxytropis coerulea, O. filiformis и O. mandshurica секции Janthina подрода Phacoxytropis

Популяция COE1 COE2 COE3 FIL1 FIL2 FIL3 FIL4 MAN1 MAN2 MAN3
COE1 3.917 (2) 4.000 (4) 0.000 (0) 0.200 (0) 0.000 (0) 0.000 (0) 4.067 (4) 4.000 (4) 4.000 (4)
COE2 0.00164 4.250 (2) 3.917 (2) 4.117 (2) 3.917 (2) 3.917 (2) 6.317 (4) 6.250 (4) 6.250 (4)
COE3 0.00168 0.00178 4.000 (4) 4.200 (4) 4.000 (4) 4.000 (4) 4.067 (4) 4.000 (4) 4.000 (4)
FIL1 0.00000 0.00164 0.00168 0.200 (0) 0.000 (0) 0.000 (0) 4.067 (4) 4.000 (4) 4.000 (4)
FIL2 0.00008 0.00173 0.00176 0.00008 0.200 (0) 0.200 (0) 4.267 (4) 4.200 (4) 4.200 (4)
FIL3 0.00000 0.00164 0.00168 0.00000 0.00008 0.000 (0) 4.067 (4) 4.000 (4) 4.000 (4)
FIL4 0.00000 0.00164 0.00168 0.00000 0.00008 0.00000 4.067 (4) 4.000 (4) 4.000 (4)
MAN1 0.00170 0.00265 0.00170 0.00170 0.00179 0.00170 0.00170 0.067 (0) 0.067 (0)
MAN2 0.00167 0.00262 0.00167 0.00167 0.00176 0.00167 0.00167 0.00003 0.000 (0)
MAN3 0.00167 0.00262 0.00167 0.00167 0.00176 0.00167 0.00167 0.00003 0.00000

Примечание. Выше диагонали – среднее число нуклеотидных различий (число фиксированных различий), ниже диагонали – среднее число нуклеотидных замен на один сайт. Код популяции см. табл. 1.

Таблица 5.

Нуклеотидная дивергенция между популяциями видов Oxytropis deflexa и O. glabra секции Mesogaea подрода Phacoxytropis

Популяция DEF1 DEF2 DEF3 DEF4 DEF5 DEF6 DEF7 GLA1 GLA2
DEF1 4.000 (2) 4.000 (2) 4.000 (2) 6.000 (4) 6.000 (4) 6.000 (4) 15.000 (13) 15.000 (13)
DEF2 0.00175 0.000 (0) 0.000 (0) 3.000 (3) 3.000 (3) 3.000 (3) 14.000 (14) 14.000 (14)
DEF3 0.00167 0.00000 0.000 (0) 3.000 (3) 3.000 (3) 3.000 (3) 16.000 (16) 16.000 (16)
DEF4 0.00167 0.00000 0.00000 3.000 (3) 3.000 (3) 3.000 (3) 16.000 (16) 16.000 (16)
DEF5 0.00263 0.00131 0.00131 0.00131 0.000 (0) 0.000 (0) 12.000 (12) 12.000 (12)
DEF6 0.00263 0.00131 0.00131 0.00131 0.00000 0.000 (0) 12.000 (12) 12.000 (12)
DEF7 0.00263 0.00131 0.00131 0.00131 0.00000 0.00000 12.000 (12) 12.000 (12)
GLA1 0.00661 0.00639 0.00705 0.00705 0.00547 0.00547 0.00547 0.000 (0)
GLA2 0.00661 0.00638 0.00705 0.00705 0.00547 0.00547 0.00547 0.00000

Примечание. См. примечание к табл. 4.

В табл. 6 приведены значения Dxy между видами. Низкая дивергенция определена между O. coerulea и O. filiformis, значение которой ниже таковых между популяциями O. coerulea (табл. 4). Дивергенция между O. filiformis и O. mandshurica соответствует межпопуляционным значениям, а дивергенция O. coerulea от O. mandshurica в ≈ 1.4 раза превышает межпопуляционную. Нуклеотидная дивергенция O. tragacanthoides от видов секций Janthina в ≈ 1.8 раз выше межпопуляционных значений, а от видов секции Mesogaea в ≈ 5 раз выше (табл. 6). По данным иерархического AMOVA (табл. 3), дифференциация между O. coerulea и O. filiformis низка и незначима (ΦCT = 0.19727, P > 0.075), а дифференциация между тремя видами секций Janthina составляет более 57% (ΦCT = 0.57412, P < 0.0001). Наибольшие различия выявлены между секциями Mesogaea и Janthina (ΦCT = 0.89754, P < 0.0001), чуть меньшие – между O. tragacanthoides и секцией Mesogaea (ΦCT = 0.79942, P < 0.004), а генетические различия между O. tragacanthoides и секцией Janthina оказались ниже популяционных значений (ΦCT = 0.32227, P < 0.009).

Таблица 6.

Нуклеотидная дивергенция между видами Oxytropis подродов Tragacanthoxytropis и Phacoxytropis

Вид O. tragacanthoides O. coerulea O. filiformis O. mandshurica O. deflexa O. glabra
O. tragacanthoides 7.939 (2) 7.600 (5) 7.579 (5) 22.910 (14) 22.800 (20)
O. coerulea 0.00334 2.883 (0) 5.529 (2) 24.829 (16) 24.389 (21)
O. filiformis 0.00320 0.00121 4.079 (4) 23.490 (18) 23.050 (23)
O. mandshurica 0.00318 0.00232 0.00171 21.549 (17) 22.029 (22)
O. deflexa 0.01097 0.01193 0.01128 0.01034 13.600 (10)
O. glabra 0.01031 0.01106 0.01044 0.00994 0.00620

Примечание. См. примечание к табл. 4.

Для реконструкции филогенетических связей в матрицу, включающую 46 из 59 выявленных хлоротипов видов двух подродов (некоторые уникальные хлоротипы были исключены в связи с большой представленностью), добавлены полученные нами ранее последовательности хлоротипов пяти видов подрода Oxytropis: O. triphylla (Pall.) Pers. (8 хлоротипов) секции Xerobia Bunge, O. lanata (Pall.) DC. (10) и O. gracillima Bunge (5) секции Verticillares DC., O. sordida (Willd.) Pers. (5) и O. ochotensis Bunge (10) секции Orobia Bunge (табл. 2). Длина объединенной матрицы 84 последовательностей хлоротипов трех регионов после выравнивания составила 2790 сайтов. Обнаружено 48 вариабельных нуклеотидных замен, из них 43 были информативны согласно методу максимальной экономии и 5 единичные. Общих хлоротипов у видов не обнаружено. Филогенетический анализ методами MP, NJ, ML дал деревья сходной топологии. На рис. 2 представлено MP-дерево (консенсус 10 000 деревьев: длина 413 шагов, CI = = 0.5617, HI = 0.4383, RI = 0.8002), в котором хлоротипы видов Oxytropis формируют две сестринские клады. Клада I с высокой степенью поддержки только в MP-анализе объединяет хлоротипы O. deflexa и O. glabra секции Mesogaea подрода Phacoxytropis, при этом хлоротипы каждого из видов формируют высокоподдержанные группы (рис. 2). Клада II с высокой степенью поддержки во всех анализах объединяет хлоротипы видов подродов Tragacanthoxytropis, Oxytropis и секции Janthina подрода Phacoxytropis, но взаимоотношения между ними остались неразрешенными. Хорошо поддержанные группы образуют хлоротипы видов O. mandshurica, O. sordida, O. gracillima, O. lanata. Следует отметить, что три хлоротипа O. tragacanthoides (P1, P3 и P4) подрода Tragacanthoxytropis объединились в одну группу со средней поддержкой в MP, ML, NJ и высокой в BI анализах с хлоротипами O. triphylla секции Xerobia подрода Oxytropis (рис. 2).

Рис. 2.

MP-дерево филогенетических связей хлоротипов хпДНК видов Oxytropis подродов Tragacanthoxytropis, Phacoxytropis и Oxytropis. Числами над ветвью обозначены значения индекса бутстрепа, рассчитанные для MP/NJ/ML методов (>50%), под ветвью – значения апостериорной вероятности, рассчитанные для BI анализа (>0.95). Названия видов, секций и подродов рода Oxytropis приведены согласно обработке Малышева [5].

Регион ITS рДНК отсеквенирован у 49 образцов: O. tragacanthoides (13), O. coerulea (11), O. filiformis (7), O. mandshurica (9), O. deflexa (6) и O. glabra (3), представляющих большинство выявленных в данной работе хлоротипов хпДНК. ITS регион характеризуется одинаковой длиной (603 пн) и низкой нуклеотидной изменчивостью: 592 сайта были мономорфными и 11 вариабельными и информативными согласно методу максимальной экономии. Шесть замен (позиции 57, 68, 90, 122, 200, 201) обнаружено в спейсере ITS1 и пять (позиции 422, 427, 513, 548, 555) – в ITS2. Выявлено шесть риботипов: O. coerulea принадлежат два риботипа (RP1 и RP2), у всех других видов по одному: O. filiformis – RP3, O. mandshurica – RP4, O. deflexa – RP5, O. glabra – RP6, O. tragacanthoides – RP1, который является общим с O. coerulea. Последовательности риботипов видов депонированы в GenBank/ENA/ EMBL-EBI под номерами доступа MW186811, LR898459–LR898464. Для выявления генеалогических связей в матрицу риботипов видов двух подродов были добавлены полученные нами ранее последовательности ITS видов подрода Oxytropis: O. triphylla (MW015143) секции Xerobia, O. lanata (LM653259, LM653260), O. chankaensis Jurtz. (FR839001, FR839010) и O. oxyphylla (Pall.) DC. (FR839000) секции Verticillares и O. ochotensis (MK795939, MK795941–MK795943) секции Orobia, а также A. davuricus в качестве внешней группы. Построенная медианная сеть представлена на рис. 3. Наиболее близким видом к Astragalus является O. deflexa, риботип которого через 42 мутационных шага и гипотетический риботип (вымерший или не выявленный в данном исследовании) связан с риботипом A. davuricus. Пять мутационных шагов и гипотетический риботип разделяют виды O. deflexa и O. glabra секции Mesogaea подрода Phacoxytropis. К ним близки риботипы O. mandshurica и O. filiformis секции Janthina этого же подрода. Наиболее распространенный и общий для шести видов, относящихся к трем подродам, риботип RP1 занимает центральное положение в сети и образует звездчатую структуру с другими риботипами, связанными одномутационными переходами (рис. 3).

Рис. 3.

Генеалогическая сеть риботипов ITS рДНК видов Oxytropis подродов Tragacanthoxytropis (RP1), Phacoxytropis (RP1–RP6) и Oxytropis (RP1, RP7–RP12), построенная с помощью MJ-метода. Размер окружностей отражает частоту встречаемости риботипов, маленькие черные кружки – гипотетические гаплотипы, поперечные тонкие штрихи на ветвях – мутационные события.

ОБСУЖДЕНИЕ

Генетическое разнообразие исследованных популяций видов O. tragacanthoides подрода Tragacanthoxytropis и O. coerulea, O. filiformis и O. mandshurica секции Janthina подрода Phacoxytropis характеризуется сочетанием высоких значений гаплотипического и низких/средних значений нуклеотидного разнообразия (табл. 1), которое было отмечено для ряда эндемичных видов Oxytopis [12], некоторых популяций O. glandulosa [13] и O. ruthenica [16], а также других представителей сем. Fabaceae – Astragalus onobrychis L. [28], видов рода Sophora L. [29]. Это указывает на быстрый рост популяции после падения численности, сопровождающийся восстановлением гаплотипической изменчивости за счет мутационного процесса [28, 30]. Низкое гаплотипическое разнообразие в популяциях видов O. deflexa и O. glabra секции Mesogaea подрода Phacoxytropis (табл. 1) может быть следствием дрейфа генов в изолированных малочисленных популяциях и влияния отбора в суровых условиях существования. Высокий уровень межпопуляционной дифференциации у O. deflexa (табл. 3) объясняется, в первую очередь, значительной географической удаленностью местонахождений (Южная Сибирь, Магаданская обл., Таймыр, рис. 1). Отсутствие нуклеотидной дивергенции между удаленными популяциями O. glabra (табл. 5) может быть проявлением анцестрального полиморфизма широко распространенного вида. У O. deflexa и O. glabra выявлены видоспецифичные маркерные нуклеотидные замены хпДНК, а также маркерные замены для секции Mesogaea. Виды секции Mesogaea значительно дивергированы от видов секции Janthina этого же подрода и O. tragacanthoides подрода Tragacanthoxytropis (табл. 6). Базальная позиция риботипов ITS рДНК O. deflexa и O. glabra в генеалогической сети (рис. 3) свидетельствует об их более древнем происхождении. Обособленное положение было показано ранее для O. deflexa [31] по данным полиморфизма маркеров TRPT ядерного и matK хлоропластного геномов, а также для O. deflexa и O. glabra по изменчивости ITS рДНК [32]. Кроме этого, изучение полиморфизма межгенного спейсера trnL–trnF и интрона trnL хпДНК видов Oxytropis, обитающих в Турции, показало, что O. kotschyana секции Mesogaea значительно дивергирована как от видов секции Janthina, так и от видов других подродов [33].

В данном исследовании секция Janthina представлена тремя видами. У O. filiformis отсутствует межпопуляционная дифференциация (табл. 3) и выявлен очень низкий уровень нуклеотидной дивергенции (табл. 4), что обусловлено, вероятно, активным обменом генами между близко расположенными популяциями. У O. coerulea популяции значительно дивергированы друг от друга (табл. 4), при этом такой же уровень нуклеотидной дивергенции выявлен между популяциями O. coerulea и O. filiformis, а между популяцией СОЕ1 O. coerulea, расположенной восточнее оз. Байкал (Бурятия), и популяциями FIL1, FIL3 и FIL4 O. filiformis из Забайкалья и Монголии нуклеотидная дивергенция отсутствует (табл. 4). Результаты анализа полиморфизма межгенных спейсеров хпДНК (отсутствие видоспецифичных маркеров хпДНК и значимой генетической дифференциации у O. coerulea и O. filiformis и объединение хлоротипов в одну, хотя и слабо поддержанную, филогруппу (рис. 2)), указывают на генетическую близость этих двух видов, тем не менее отсутствие общих хлоротипов и наличие разных риботипов ITS рДНК подтверждают самостоятельность O. coerulea и O. filiformis. У O. mandshurica выявлен видоспецифичный маркер в спейсере trnL–trnF хпДНК, хлоротипы образуют высокоподдержанную филогруппу (рис. 2), отмечен индивидуальный риботип. Эти результаты, а также высокий уровень дифференциации между видами секции Janthina (табл. 3), все в целом подтверждает статус O. mandshurica как самостоятельного вида.

Между популяциями O. tragacanthoides выявлены значительная нуклеотидная дивергенция и высокая межпопуляционная дифференциация, что может быть связано с изоляцией местонахождений и приуроченностью вида к специфическим экотопам, а также с наличием кариологических рас. Так, у O. tragacanthoides обнаружены как диплоидные (2n = 16), так и тетраплоидные (2n = 32) представители [5, 9, 34]. Выявленные хлоротипы O. tragacanthoides в MP-дереве разделились на две группы, в одной из них со средней в MP, ML, NJ и высокой в BI анализах поддержками (рис. 2) три хлоротипа объединены с хлоротипами O. triphylla секции Xerobia подрода Oxytropis, который является диплоидом с 2n = 16 [35]. Кроме этого, эти виды имеют один общий риботип ITS (рис. 3). Однако морфологически O. tragacanthoides и O. triphylla резко отличаются как друг от друга, так и от других видов Oxytropis. Представители подрода Tragacanthoxytropis – это подушковидные колючие кустарнички, а характерной особенностью O. triphylla являются листья с одной, редко двумя парами листочков, в целом по морфологическим признакам вид выделяют в особый олиготипный ряд Triphyllae внутри секции Xerobia [5]. Можно предположить, что генетическая близость этих реликтовых видов, обитающих в Южной Сибири, обусловлена широким распространением предковых форм Oxytropis на данной территории [9].

Филогенетические связи хлоротипов видов Oxytropis Азиатской России подродов Tragacanthoxytropis, Oxytropis и секции Janthina подрода Phacoxytropis, образующих высокоподдержанную кладу II (рис. 2), остались неразрешенными. Кроме того, анализ генеалогических связей риботипов ITS рДНК выявил у видов O. tragacanthoides, O. coerulea, O. lanata, O. chankaensis, O. oxyphylla и O. triphylla, относящихся к этим трем подродам, общий риботип RP1 (рис. 3). Все это может быть проявлением сетчатой эволюции, отмеченной для видов рода Oxytropis [5]. Выявленная генетическая близость при четких морфологических различиях характерна для таксонов с общим происхождением, испытавших относительно недавнюю быструю адаптивную радиацию, что отмечено для ряда родов сем. Fabaceae [1]. Учитывая обособление группы бобовых, в которую входят Astragalus и Oxytropis, около 39 млн лет назад [36], можно сказать, что дивергенция рода Oxytropis, появившегося на границе миоцена–плиоцена около 5.6 млн лет назад, была относительно недавней. Быстрая адаптивная радиация показана для видов Oxytropis [1] и других родов сем. Fabaceae: Pultenaea [37], Astragalus [38], Sophora [29] и др. Определенный вклад в полученную картину взаимосвязей видов Oxytropis трех подродов может вносить и происходившая на ранних этапах эволюции рода гибридизация между не полностью специализированными таксонами после быстрой радиации, но перед расхождением генеалогических линий, как это было отмечено для видов рода Pultenaea [37].

Таким образом, проведенный анализ нуклеотидного полиморфизма межгенных спейсеров psbAtrnHtrnL–trnF и trnS–trnG хпДНК и ITS рДНК расширенной выборки образцов из разных популяций видов O. coerulea, O. filiformis и O. mandshurica секции Janthina подрода Phacoxytropis подтвердил, что три этих таксона являются самостоятельными видами. Результаты реконструкции филогенетических связей хлоротипов и анализа генеалогических связей риботипов ITS видов подродов Phacoxytropis, Tragacanthoxytropis и Oxytropis согласуются с мнением Zhu с соавт. [6] о принадлежности видов O. coerulea, O. filiformis и O. mandshurica подроду Oxytropis, однако необходимы дальнейшие исследования с привлечением других видов этой секции.

Авторы выражают благодарность И.Н. Поспелову и Е.Б. Поспеловой за предоставление образцов O. deflexa с п-ова Таймыр.

Настоящая статья не содержит каких-либо исследований с использованием в качестве объекта животных.

Настоящая статья не содержит каких-либо исследований с участием в качестве объекта людей.

Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.

Список литературы

  1. Shavvon R.S., Kazempour-Osaloo S., Maassoumi A.A. et al. Increasing phylogenetic support for explosively radiating taxa: The promise of high-throughput sequencing for Oxytropis (Fabaceae) // J. Syst. Evol. 2017. V. 55. № 4. P. 385–404. https://doi.org/10.1111/jse.12269

  2. Положий А.В. К вопросу о происхождении и эволюции рода Oxytropis (Fabaceae) // Бот. журн. 2003. Т. 88. № 10. С. 55–59.

  3. Положий А.В. Флорогенетический анализ остролодочников Средней Сибири // Уч. зап. Томского гос. ун-та. Биология и почвоведение. 1965. № 51. С. 18–38.

  4. Юрцев Б.А. Oxytropis DC. // Арктическая флора СССР. Л.: Наука, 1986. Вып. 9. Ч. 2. С. 61–146.

  5. Малышев Л.И. Разнообразие рода Остролодка (Oxytropis) в Азиатской России // Turczaninowia. 2008. Т. 11. № 4. С. 5–141.

  6. Zhu X., Welsh S.L., Ohashi H. Oxytropis // Flora of China. 2010. V. 10. P. 453–500. http://www.efloras.org.

  7. Положий А.В. Oxytropis DC. – Остролодочник // Флора Сибири. Новосибирск: ВО “Наука”, 1994. Т. 9. С. 74–151.

  8. Холина А.Б., Козыренко М.М., Артюкова Е.В. и др. Филогенетические взаимоотношения видов Oxytropis DC. subg. Oxytropis и Phacoxytropis (Fabaceae) Азиатской России на основе анализа нуклеотидных последовательностей межгенных спейсеров хлоропластного генома // Генетика. 2016. Т. 52. № 8. С. 895–909.

  9. Пешкова Г.А. Флорогенетический анализ степной флоры гор Южной Сибири. Новосибирск, 2001. 192 с.

  10. Артюкова Е.В., Холина А.Б., Козыренко М.М., Журавлев Ю.Н. Анализ генетической изменчивости редкого эндемичного вида Oxytropis chankaensis Jurtz. (Fabaceae) на основе RAPD маркеров // Генетика. 2004. Т. 40. № 7. С. 877–884.

  11. Artyukova E.V., Kozyrenko M.M., Kholina A.B., Zhuravlev Yu.N. High chloroplast haplotype diversity in the endemic legume Oxytropis chankaensis may result from independent polyploidization events // Genetica. 2011. V. 139. № 2. P. 221–232. https://doi.org/10.1007/s10709-010-9539-8

  12. Холина А.Б., Козыренко М.М., Артюкова Е.В., Санданов Д.В. Современное состояние популяций эндемичных видов Oxytropis Байкальской Сибири и их филогенетические связи по данным секвенирования маркеров хлоропластной ДНК // Генетика. 2018. Т. 54. № 7. С. 795–806.

  13. Kholina A., Kozyrenko M., Artyukova E. et al. Plastid DNA variation of the endemic species Oxytropis glandulosa Turcz. (Fabaceae) // Turk. J. Bot. 2018. V. 42. P. 38–50. https://doi.org/10.3906/bot-1706-11

  14. Холина А.Б., Козыренко М.М., Артюкова Е.В. и др. Генетическое разнообразие и филогенетические связи Oxytropis evenorum (Fabaceae) по данным секвенирования межгенных спейсеров хлоропластной ДНК // Вестник СВНЦ ДВО РАН. 2019. № 2. С. 117–125. https://doi.org/10.1134/S0016675819060055

  15. Холина А.Б., Козыренко М.М., Артюкова Е.В., Санданов Д.В. Дивергенция видов Oxytropis секции Verticillares (Fabaceae) степной флоры Байкальской Сибири на основе анализа хлоропластной ДНК // Генетика. 2019. Т. 55. № 6. С. 665–674.

  16. Козыренко М.М., Холина А.Б., Артюкова Е.В. и др. Молекулярно-филогенетическая характеристика эндемичных дальневосточных близкородственных видов секции Orobia рода Oxytropis (Fabaceae) // Генетика. 2020. Т. 56. № 4. С. 421–432.

  17. Холина А.Б., Козыренко М.М., Артюкова Е.В. и др. Филогенетические отношения видов Oxytropis секции Arctobia северо-востока Азии по данным секвенирования межгенных спейсеров хлоропластного и ITS ядерного геномов // Генетика. 2020. Т. 56. № 12. С. 1386–1397.

  18. Mir B.A., Koul S., Kumar A. et al. Intraspecific variation in the internal transcribed spacer (ITS) regions of rDNA in Withania somnifera (Linn.) Dunal // Indian J. Biotechnol. 2010. V. 9. P. 325–328.

  19. Bonfeld J.K., Smith K.F., Staden R. A new DNA sequence assembly program // Nucl. Acids Res. 1995. V. 23. P. 4992–4999.

  20. Gouy M., Guindon S., Gascuel O. SeaView version 4: A multiplatform graphical user interface for sequence alignment and phylogenetic tree building // Mol. Biol. Evol. 2010. V. 27. P. 221–224. https://doi.org/10.1093/molbev/msp259

  21. Excoffier L., Lischer H.E.L. Arlequin suite ver 3.5: A new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows // Mol. Ecol. Resour. 2010. V. 10. P. 564–567.

  22. Librado P., Rozas J. DnaSP v5: A software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data // Bioinformatics. 2009. V. 25. № 11. P. 1451–1452.

  23. Swofford D.L. PAUP*: Phylogenetic analysis using parsimony (*and other methods): version 4.04. Sunderland, MA, USA: Sinauer Associates Inc., 2003.

  24. Posada D., Crandall K.A. Modeltest: testing the model of DNA substitution // Bioinformatics. 1998. V. 14. P. 817–818. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/14.9.817

  25. Ronquist F., Huelsenbeck J.P. MrBAYES3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models // Bioinformatics. 2003. V. 19. P. 1572–1574. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btg180

  26. Miller M.A., Pfeiffer W., Schwartz T. Creating the CIPRES Science Gateway for inference of large phylogenetic trees // Proc. Gateway Computing Environments Workshop (GCE). LA: New Orleans, 2010. https://doi.org/10.1109/GCE.2010.5676129

  27. Bandelt H.-J., Forster P., Röhl A. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies // Mol. Biol. Evol. 1999. V. 16. № 1. P. 37–48.

  28. Plenk K., Willner W., Demina O.N. et al. Phylogeographic evidence for long-term persistence of the Eurasian steppe plant Astragalus onobrychis in the Pannonian region (eastern Central Europe) // Flora. 2020. V. 264. 151555. 10 p. https://doi.org/10.1016/j.flora.2020.151555

  29. Shepherd L.D., Lange P.J., Perrie L.R., Heenan P.B. Chloroplast phylogeography of New Zealand Sophora trees (Fabaceae): Extensive hybridization and widespread Last Glacial Maximum survival // J. Biogeogr. 2017. V. 44. P. 1640–1651. https://doi.org/10.1111/jbi.12963

  30. Абрамсон Н.И. Филогеография: итоги, проблемы, перспективы // Информ. вестник ВОГиС. 2007. Т. 11. № 2. С. 307–331.

  31. Meyers Z.J. A contribution to the taxonomy and phylogeny of Oxytropis section Arctobia (Fabaceae) in North America: Master Diss. Fairbanks. Alaska: Univ. Alaska Fairbanks, 2012. 155 p.

  32. Archambault A., Strömvik M.V. Evolutionary relationships in Oxytropis species, as estimated from the nuclear ribosomal internal transcribed spacer (ITS) sequences point to multiple expansions into the Arctic // Botany. 2012. V. 90. № 8. P. 770–779. https://doi.org/10.1139/B2012-023

  33. Tekpinar A., Karaman Erkul S., Aytac Z., Kaya Z. Phylogenetic relationships among native Oxytropis species in Turkey using trnL intron, trnL–F IGS, and trnV intron cpDNA regions // Turk. J. Bot. 2016. V. 40. P. 472–479. https://doi.org/10.3906/bot-1506-45

  34. Krivenko D.A., Kotseruba V.V., Kazanovsky S.G. et al. Fabaceae // IAPT/IOPB chromosome data 11 / Ed. Marhold K. // Taxon. 2011. V. 60. № 4. P. 1222; E12, E13.

  35. Konichenko E.S., Selyutina I.Yu., Dorogina O.V. Oxytropis triphylla // IAPT/IOPB chromosome data 14 / Ed. Marhold K. // Taxon. 2012. V. 61. № 6. P. 1339; E13.

  36. Lavin M., Herendeen P.S., Wojciechowski M.F. Evolutionary rates analysis of Leguminosae implicates a rapid diversification of lineages during the Tertiary // Syst.Biol. 2005. V. 54. P. 530–549. https://doi.org/10.1080/10635150590947131

  37. Orthia L.A., Crisp M.D., Cook L.G., de Kok R.P.J. Bush pea: A rapid radiation with no support for monophyly of Pultenaea (Fabaceae: Mirbelieae) // Aust. Syst. Bot. 2005. V. 18. P. 133–147. https://doi.org/10.1071/SB04028

  38. Bagheri A., Maassoumi A.A., Rahiminejad M.R. et al. Molecular phylogeny and divergence times of Astragalus section Hymenostegis: An analysis of a rapidly diversifying species group in Fabaceae // Sci. Rep. 2017. №7: 14033. 9 pages. https://doi.org/10.1038/s41598-017-14614-3

Дополнительные материалы отсутствуют.