Вопросы ихтиологии, 2022, T. 62, № 2, стр. 244-248

Состав лейкоцитов периферической крови горбуши Oncorhynchus gorbuscha и кеты O. keta (Salmonidae) в морской период жизни

И. И. Гордеев 12*, Л. В. Балабанова 3, Т. А. Суворова 3, Д. В. Микряков 3

1 Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии − ВНИРО
Москва, Россия

2 Московский государственный университет
Москва, Россия

3 Институт биологии внутренних вод РАН – ИБВВ РАН
пос. Борок, Ярославская область, Россия

* E-mail: gordeev_ilya@bk.ru

Поступила в редакцию 09.03.2021
После доработки 08.04.2021
Принята к публикации 09.04.2021

Аннотация

У горбуши Onchorhynchus gorbuscha и кеты O. keta в морской период жизни среди лейкоцитов преобладают лимфоциты и отсутствуют эозинофилы, а у горбуши отсутствуют также и базофилы. У кеты по сравнению с горбушей меньше доля сегментоядерных нейтрофилов и размеры лимфоцитов, моноцитов и палочкоядерных нейтрофилов.

Ключевые слова: горбуша Oncorhynchus gorbuscha, кета Oncorhynchus keta, кровь, лейкограмма, размеры лейкоцитов, Тихий океан.

Список литературы

  1. Басова М.М. 2017. Лейкоцитарная формула морского ерша Scorpaena porcus как биомаркер антропогенного загрязнения прибрежных вод Чёрного моря // Вопр. ихтиологии. Т. 57. № 3. С. 347–352.  https://doi.org/10.7868/S004287521703002X

  2. Головина Н.А. 2018. Гематологические исследования и их использование для оценки здоровья рыб // Рыбоводство и рыб. хоз-во. № 5(148). С. 72–74.

  3. Головина Н.А., Тромбицкий И.Д. 1989. Гематология прудовых рыб. Кишинев: Штиинца, 156 с.

  4. Гордеев И.И., Кловач Н.В. 2019. Вольный лосось: трудности прогнозирования уловов тихоокеанских лососей // Природа. Т. 3. С. 22–27. https://doi.org/10.7868/S0032874X19030049

  5. Житенева Л.Д., Макаров Э.В., Рудницкая О.А. 2004. Основы ихтиогематологии (в сравнительном аспекте). Ростов н/Д.: Эверест, 311 с.

  6. Иванова Н.Т. 1983. Атлас клеток крови рыб. М.: Лег. и пищ. пром-сть, 184 с.

  7. Изергина Е.Е., Изергин И.Л., Изергин Л.И. 2014. Атлас клеток крови лососевых рыб материкового побережья северной части Охотского моря. Магадан: Кордис, 127 с.

  8. Калинина М.В. 1997. Гемограммы молоди тихоокеанских лососей в онтогенезе: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Владивосток: ВГМУ, 20 с.

  9. Кондратьева И.А., Киташова А.А. 2002. Функционирование и регуляция иммунной системы рыб // Иммунология. № 2. С. 97–101.

  10. Королева И.М. 2016. Гематологические показатели сига обыкновенного Coregonus lavaretus L. в водоемах Кольского севера // Тр. ВНИРО. Т. 162. С. 36–45.

  11. Кузина Т.В. 2011. Цитофизиологические особенности крови промысловых рыб Волго-Каспийского канала: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Астрахань: АГУ, 25 с.

  12. Микряков В.Р. 1991. Закономерности формирования приобретенного иммунитета у рыб. Рыбинск: Изд-во ИБВВ РАН, 153 с.

  13. Микряков В.Р., Лапирова Т.Б. 1997. Влияние солей некоторых тяжелых металлов на состав белой крови молоди ленского осетра Acipenser baeri // Вопр. ихтиологии. Т. 37. № 4. С. 538–542.

  14. Промысловые рыбы России. В 2 томах. 2006 / Под ред. Гриценко О.Ф. м и др. Т. 1. М.: Изд-во ВНИРО, 656 с.

  15. Пустовит Н.С., Пустовит О.П. 2005. Некоторые гематологические показатели камчатской микижи Parasalmo mykiss // Вопр. ихтиологии. Т. 45. № 5. С. 680–687.

  16. Сергеенко Т.М. 2007. Морфофизиологическая характеристика молоди кеты (Oncorhynchus keta Walbaum) при ее воспроизводстве на лососевых рыбоводных заводах Сахалина: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Рыбное: ВНИИПРХ, 25 с.

  17. Серпунин Г.Г. 2002. Гематологические показатели адаптаций рыб: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Калининград: КГТУ, 42 с.

  18. Суворова Т.А., Герман А.В. 2021. Состав лейкоцитов леща Саратовского водохранилища // Рыбоводство и рыб. хоз-во. № 2. С. 44–51. https://doi.org/10.33920/sel-09-2102-04

  19. Хованский И.Е., Хованская Л.Л. 1994. Роль гематологических показателей в определении физиологической полноценности заводской молоди лососевых // Сб. науч. тр. ГосНИИОРХ. Вып. 308. С. 171–184.

  20. Яхненко В.М., Клименков И.В. 2009. Особенности состава и структуры клеток крови рыб пелагиали и прибрежья озера Байкал // Изв. РАН. Сер. биол. № 1. С. 46–54.

  21. Ciereszko A., Liu L., Dabrowski K. 2007. Optimal conditions for determination of aspartate aminotransferase activity in rainbow trout and whitefish // J. Appl. Ichthyol. V. 14. № 1−2. P. 57–63. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.1998.tb00614.x

  22. Dessen J.-E., Østbye T.K., Ruyter B. et al. 2020. Sudden increased mortality in large seemingly healthy farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.) was associated with environmental and dietary changes // J. Appl. Aquacult. https://doi.org/10.1080/10454438.2020.1726237

  23. Gordeev I.I., Mikryakov D.V., Balabanova L.V., Mikryakov V.R. 2017. Composition of leucocytes in peripheral blood of Patagonian toothfish (Dissostichus eleginoides Smitt, 1898) (Nototheniidae) // Polar Res. V. 36. № 1. Article 1374126. https://doi.org/10.1080/17518369.2017.1374126

  24. Izergina E., Izergin I., Volobyev V. 2006. Influence of water salinity on the physiological status and distribution of juvenile chum salmon in the estuary of the Ola River of the northeast coast of the Okhotsk Sea // 2-nd NPAFC Int. Workshop “Factors affecting production of juvenile salmon”. Sapporo, Japan, 9 p.

  25. Lulijwa R., Andrea C., Fabrice M. et al. 2019. Characterisation of Chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) blood and validation of flow cytometry cell count and viability assay kit // Fish Shellfish Immunol. V. 88. P. 179–188. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2019.02.059

  26. Sandnes K., Lie Ø., Waagbø R. 1988. Normal ranges of some blood chemistry parameters in adult farmed Atlantic salmon, Salmo salar // J. Fish Biol. V. 32. № 1. P. 129–136. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1988.tb05341.x

Дополнительные материалы отсутствуют.