Кристаллография, 2019, T. 64, № 3, стр. 477-483
Кристаллизации фосфатов кальция из прототипа плазмы крови в присутствии неорганических и органических примесей
1 Омский государственный университет
Омск, Россия
* E-mail: golovanoa2000@mail.ru
Поступила в редакцию 24.08.2017
После доработки 17.11.2017
Принята к публикации 07.12.2017
Аннотация
Представлены результаты исследований процессов кристаллизации в растворах, моделирующих состав плазмы крови человека. Установлено, что полученные твердые фазы состоят из OH-дефицитного водосодержащего карбонатапатита. Исследовано влияние примесей (ионов магния и глутаминовой кислоты) на процесс кристаллизации фосфатов кальция. Выявлено, что присутствие добавок в модельном растворе влияет на фазовый состав образцов. Изучена растворимость синтетических образцов в растворах разной природы и в препарате Верапамил. Установлены кинетические характеристики данного процесса, показана зависимость скорости растворения от условий лабораторных экспериментов.
ВВЕДЕНИЕ
За последние годы увеличился процент патогенного минералообразования в кровеносных сосудах, сердечных клапанах, стентах и грудных имплантатах [1–9]. Это связано с рядом факторов экзогенного и эндогенного характера. Плазма крови предcтавляет собой воду, содержащую главным образом растворенные соли и белки. Химический состав растворимых в плазме крови веществ относительно постоянен, растворимые вещества плазмы cоставляют около 10% массы крови, из них на долю белков приходится около 7%, на долю неорганических солей – 0.9%, остальную часть образуют небелковые органические соединения [10, 11]. В плазме имеются белки, обеспечивающие иммунитет (иммуноглобулины), и белки, участвующие в свертывании крови. Неорганические компоненты плазмы представлены макро- и микроэлементами, неорганический состав плазмы крови достаточно хорошо изучен (табл. 1). В крови постоянно содержится некоторое количество свободных аминокислот (АК). Почти пятую часть содержащихся в плазме АК составляют аланин и глутаминовая кислота (ГК). На сегодняшний день имеются доcтаточно обширные данные о составе плазмы крови, что позволяет проводить моделирование процессов, протекающих в исследуемой среде [12, 13].
Таблица 1.
Ион | Среднее значение концентрации (ммоль/л) |
---|---|
Ca2+ | 2.35 |
Na+ | 143 |
K+ | 4.35 |
Mg2+ | 0.95 |
${\text{NH}}_{4}^{ + }$ | 0.04 |
Cl– | 103 |
${\text{CO}}_{3}^{{2 - }}$ | 0.45 |
${\text{CO}}_{3}^{{2 - }}$ | 26 |
${\text{Р О }}_{4}^{{3 - }}$ | 1.3 |
По результатам исследования поражения коронарных артерий авторами [14] выделены три независимые фазы атеросклеротического поражения коронарных артерий, сопряженные с кальцификацией атеросклеротической бляшки: фиброзные участки бляшки с незначительным содержанием липидов; заключительная стадия формирования некротических очагов; кровоизлияние и тромбообразование. Кальцификаты указанных зон атеросклеротической бляшки имеют собственные характерные морфологические и композиционные особенности. Единственной кристаллизованной фазой кальцификатов является гидроксиапатит, а начальной стадией петрификации являются скопления микро- и наночастиц гидроксиапатита, при этом механизмы их формирования в толще атеросклеротической бляшки и на поверхности при тромбогенезе различны. Не исключено, что минерализация участков, контактирующих с кровью, является пассивным физико-химическим процессом. Соотношение Са/Р в кальцификатах по данным [14–19] варьирует в значительных пределах. В матричных везикулах это соотношение может быть около 0.66, а в зрелом апатите доходит до 2. Размер кристаллов в процессе созревания биоапатита увеличивается от наноразмерных до 100 и более микрон.
Патогенный апатит не имеет такой тесной связи с обменными процессами в организме, как физиогенный. Таким образом, кристаллохимия природного неорганического апатита невероятно сложна, а структура биоапатита имеет ряд дополнительных особенностей, при этом минерализация тканей изучена недостаточно.
Именно из-за кальцификации сроки функционирования трансплантатов сердечных клапанов ограничены. В связи с этим возникла необходимость в исследовании механизма инициации кальциноза как коллагеновых и мышечных тканей, так и трансплантатов клапанов сердца с целью разработки способов его предотвращения.
Цель работы – изучение кристаллизации фосфатов кальция из прототипов плазмы крови человека в присутствии неорганических и органических добавок, исследование их свойств.
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
Выбор исходных реагентов и их соотношение в растворе определялись таким образом, чтобы концентрации ионов и ионная сила раствора были максимально приближены к параметрам моделируемой системы плазмы крови человека (табл. 1).
В качестве исходных реагентов использовали соли марки ч.д.а. и х.ч. и дистиллированную воду. Для каждой серии экспериментов были приготовлены растворы, содержащие катионы и анионы, при совместном присутствии которых в данных условиях не образуются малорастворимые соединения. В каждом растворе проводили корректировку рН до физиологического значения (7.4 ± 0.01) путем добавления 30%-ного раствора NaOH или HCl (конц.). После смешения эквивалентных объемов получали раствор с заданным пересыщением и рассчитанной концентрацией компонентов. Кристаллизация твердой фазы осуществлялась в течение разных промежутков времени (от 2 до 12 нед) при варьировании исходного пересыщения (S = 5, 10, 25, 50, 100). Все образцы во время синтеза находились в шкафу БИАТРОН при температуре 36.6°С, соответствующей организму человека.
После вызревания осадка под маточным раствором через определенные временные промежутки твердую фазу отделяли от раствора фильтрованием, высушивали при температуре ~80°С до постоянной массы и полного удаления химически несвязанной воды, взвешивали и исследовали с применением группы физико-химических методов.
Для исследования влияния органических и неорганических добавок в модельную систему вводили выбранные с учетом биохимии плазмы крови человека и физиологической нормы (Сфиз) следующие добавки: ГК и ионы магния, а также с концентрацией выше физиологической нормы: ионы магния (2 и 4 раза), ГК (3 и 5 раз). Выбранные концентрации добавок представлены в табл. 2.
Синтетические твердые фазы исследовали с применением комплекса физико-химических методов. Рентгенофазовый анализ (РФА) осадков проводили методом порошковой дифрактометрии (D8 Advance, Bruker; программа TOPAS 3.0 (Bruker)). Количественный фазовый анализ поликомпонентных образцов, расчет размеров кристаллитов (областей когерентного рассеяния (ОКР)) и идентификацию фаз выполняли с применением базы данных ICDDPDF для порошковой дифракции. Съемку ИК-спектров осуществляли с помощью предварительного таблетирования исходных твердых фаз с KBr (ИК-фурье-спектрометр IRPrestige21, “Shimadzu”). Газообменный потенциометрический метод использовали для определения общего содержания углерода в синтезированных биомиметических аналогах апатитов кардиолитов. Метод основан на прокаливании навески в токе кислорода при температуре 1250–1300°С и последующем поглощении образующегося углекислого газа раствором гидрата окиси калия на газоанализаторе.
В жидкости, отделенной от осадка, определяли остаточное содержание кальция [РД 52.24.40394] и фосфатов [ГОСТ 1830972].
Кинетику растворения полученных твердых фаз изучали в 0.9%-ном растворе NaCl, трис-буфере и препарате Верапамил (представитель группы антагонистов кальция, Ирбитский ХФЗ, Россия). Измерения проводили в термостатируемой ячейке при 37°С в течение 2 ч при постоянном объеме жидкой фазы и перемешивании. В ходе эксперимента контролировали рН и рСа. На основе экспериментальных данных получены кинетические кривые и проведена их математическая обработка по алгоритму, описанному в [20].
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
Результаты исследования твердых фаз без добавок. Результаты РФА показали, что все образцы, полученные в среде модельного раствора плазмы крови человека при варьировании пересыщений и времени синтеза, представляют собой плохо окристаллизованный апатит (рис. 1). Установлены значения параметра a полученного апатита (9.41–9.48 Å; табл. 3), они близки к значению схожего по параметрам стехиометрического апатита (а = 9.418, с = 8.884 Å, JCPDS N 9-432) или больше него. Из таблицы видно, что полученные значения параметра с (6.874–6.894 Å, табл. 3) могут быть как ниже, так и выше значения, характерного для стехиометрического апатита. Размер ОКР вдоль [001] составляет 18–28 нм. Установленные размеры кристаллитов и значения параметров элементарной ячейки характерны для нестехиометрических водосодержащих биологических карбонатапатитов [21].
Таблица 3.
Образец | CO2/${\text{CO}}_{3}^{{2 - }}$, мас. % | а, Å | с, Å | Размеры ОКР вдоль [001], нм | |
---|---|---|---|---|---|
Пересыщение | Время, нед. | ||||
25 | 8 | 3.3/4.50 | 9.45 | 6.890 | 18 |
10 | 3.19/4.35 | 9.41 | 6.889 | 21 | |
12 | 3.18/4.34 | 9.44 | 6.894 | 21 | |
50 | 2 | 1.49/2.03 | 9.42 | 6.878 | 22 |
4 | 1.78/2.43 | 9.44 | 6.884 | 24 | |
8 | 3.55/4.84 | 9.46 | 6.886 | 20 | |
10 | 4.06/5.54 | 9.43 | 6.889 | 20 | |
12 | 2.98/4.06 | 9.46 | 6.888 | 23 | |
100 | 2 | 1.26/1.72 | 9.47 | 6.868 | 27 |
4 | 1.46/1.99 | 9.48 | 6.874 | 28 | |
8 | 1.95/2.66 | 9.46 | 6.881 | 24 | |
10 | 2.61/3.56 | 9.45 | 6.886 | 24 | |
12 | 2.02/2.75 | 9.48 | 6.882 | 27 |
ИК-спектры полученных образцов (рис. 2) содержат полосы поглощения, относящиеся к фосфатным группам (1105, 1070, 1040, 975, 610, 570 и 480 см–1).
Все полученные спектры содержат интенсивные и одновременно широкие полосы поглощения, относящиеся к воде (~1600 см–1), деформационные колебания (3300–3500 см–1), валентные колебания и слабые полосы гидрофосфат-иона (875 cм–1). Все спектры также содержат полосы, относящиеся к карбонат-иону В-типа (1420 и 1460 см–1). Видно, что полосы гидроксил-иона (640 и 3570 см–1) на всех спектрах отсутствуют. Следовательно, результаты ИК-спектроскопии подтверждают близость синтезированных апатитов к биологическим OH-дефицитным водосодержащим карбонатапатитам [21].
Результаты экспериментов позволяют сделать вывод и о влиянии экспериментальных условий (пересыщение, время эксперимента) на содержание карбонат-иона в апатите (рис. 1, табл. 3). Из анализа следует, что при пересыщении 50 и 100 увеличение времени эксперимента с 2 нед. до 10 ведет к увеличению содержания карбонат-ионов с 2.03–1.72 до 5.54–3.56 мас. % соответственно. А увеличение времени эксперимента до 12 нед. ведет к уменьшению содержания карбонат-ионов от 4.35, 5.54 и 3.56 до 4.34, 4.06 и 2.75 мас. % соответственно. При времени эксперимента 10 нед. видим, что максимальную концентрацию карбонат-ионов содержат апатиты, синтезированные при пересыщении, равном 50. Следовательно, максимальное количество карбонат-ионов (5.54 мас. %) соответствует апатиту, синтезированному при пересыщении 50 в течение 10 нед.
Изучение растворения проведено для моделирования пассивной резорбции твердых фаз в организме человека. Для этого были выбраны пробы с пересыщением 5, 10, 50 и временем синтеза от 4 до 8 нед.
В результате получены кинетические кривые С(Ca2+) = f(τ) (рис. 3, в качестве примера для 0.9%-ного раствора NaCl), из которых видно, что основное насыщение раствора ионами кальция наблюдается на десятой минуте и зависит от начального пересыщения модельного раствора плазмы крови.
Математическая обработка полученных кинетических зависимостей по алгоритму, описанному в [20], позволила определить скорость растворения твердых фаз (табл. 4). Сравнение действия трех растворителей на стадию резорбции твердых фаз выявило, что наибольшая скорость растворения характерна для препарата Верапамил.
Таблица 4.
Образец | 0.9%-ный раствор NaCl | Трис-буфер | Вера-памил | |
---|---|---|---|---|
Время синтеза, недели | Пересы-щение | $\text{v}$, ммоль/(л мин) | ||
4 | 5 | 0.264 | 0.184 | 0.161 |
10 | 0.345 | 0.152 | 0.454 | |
50 | 0.227 | 0.144 | 0.477 | |
8 | 5 | 0.144 | 0.178 | 0.376 |
10 | 0.285 | 0.142 | 0.265 | |
50 | 0.151 | 0.114 | 0.432 |
Результаты исследования твердых фаз, полученных с участием ГК. По результатам РФА твердых фаз, полученных в присутствии ГК, выявлено, что фазовый состав по сравнению с беспримесными фазами изменяется (рис. 4), кроме карбонатгидроксилапатита (КГА) на дифрактограммах присутствуют пики, характерные для фазы витлокита (пики по шкале 2θ: 17.4; 30.2; 33.7). Но для образцов, полученных с максимальной концентрацией ГК, фаза витлокита отсутствует и идентифицируется только фаза КГА. Для уточнения состава и структуры образцов, полученных в присутствии ГК, использован метод ИК-спектроскопии (рис. 5). В ИК-спектре всех исследованных образцов в области 450–700 см–1 проявляется деформационное колебание О–Р–О в ${\text{Р О }}_{4}^{{3 - }}$, в области 900–1200 см–1 – валентное колебание Р–О в ${\text{Р О }}_{4}^{{3 - }}$. Области 1500–1650 и 2700–2250 см–1 определяются деформационными колебаниями аминогруппы, что подтверждает адсорбцию АК на поверхности твердой фазы.
В ИК-спектрах образцов зарегистрированы полосы поглощения в спектральных областях 1416–1547 и 850–900 см–1, относящиеся соответственно к валентным и деформационным колебаниям связей С–О карбонат-ионов. Видно, что характерная для гидроксилапатита интенсивность полос колебания Н2О в области 3400–3550 см–1 очень хорошо выражена, но с увеличением концентрации ГК происходит изменение интенсивности полосы, это связано с уменьшением количества ионов OH– в структуре за счет их замещения на ${\text{CO}}_{3}^{{2 - }}$-группу. Так, образец, полученный при физиологической концентрации ГК, является карбонатгидроксилапатитом В-типа, а образцы, синтезированные при большей концентрации добавки ((ГК) Cфиз3 и Cфиз5), относятся к карбонатгидроксилапатиту А-типа.
Для всех образцов определены масса осадка и соотношение Са/Р (рис. 6). С увеличением концентрации добавки масса осадка и Са/Р-коэффициент возрастают, что хорошо согласуется с результатами РФА и ИК-спектроскопии.
Для твердых фаз получены кинетические кривые растворения и проведена их обработка (табл. 5).
Таблица 5.
Образец с добавкой ГК | 0.9%-ный раствор NaCl | Трис-буфер |
---|---|---|
$\text{v}$, ммоль/(л мин) | ||
Сфиз | 0.603 | 0.749 |
Сфиз3 | 0.306 | 0.477 |
Сфиз5 | 0.390 | 0.479 |
Анализ кинетических параметров показал, что увеличение концентрации добавки ГК ведет к снижению скорости растворения твердой фазы. Это связано с изменением фазового состава образцов, так как рост концентрация добавки ГК в исходном модельном растворе плазмы крови приводит к снижению содержания фазы витлокита и увеличению фазы КГА в составе твердой фазы, известно, что витлокит является более растворимым соединением, чем КГА.
Результаты исследования твердых фаз, полученных с участием ионов магния. Для изучения влияния неорганических компонентов на процессы кристаллизации выбран магний-ион. Он представляет особый интерес, так как является ингибитором кристаллизации в плазме крови человека [12, 13]. Чтобы установить кристаллизацию в модельном растворе плазмы крови человека, варьировали концентрацию магний-ионов и время синтеза.
В результате анализа рентгенограмм установили, что фазовый состав образцов включает в себя КГА и витлокит. Полуколичественный анализ показал преобладание витлокита (рис. 7).
Интерпретация полученных ИК-спектров показала, что во всех исследованных образцах (рис. 8) в области 564–566 см–1 проявляются валентные ассиметричные колебания связей Р–О–Р иона ${\text{Р О }}_{4}^{{3 - }}$; в области 500–650 см–1 – деформационные асимметричные колебания связей Р–О в ионе ${\text{Р О }}_{4}^{{3 - }}$; в области 1000–1100 см–1 – валентные симметричные колебания связей Р–О иона ${\text{Р О }}_{4}^{{3 - }}$. В спектрах образцов регистрируются полосы поглощения в спектральных областях 1400–1500 и 850–900 см–1, относящихся соответственно к валентным и деформационным колебаниям связей С–О карбонат-ионов. Отметим, что характерная для гидроксилапатита интенсивность полос колебания Н2О в области 3400–3500 см–1 очень хорошо выражена. Следовательно, осадок содержит карбонатгидроксилапатит В-типа.
Таким образом, в присутствии ионов магния из модельного раствора плазмы крови синтезированы образцы, состоящие из смеси фаз витлокита и карбонатгидроксилапатита В-типа.
Было исследовано растворение в препарате Верапамил образцов с пересыщением 50 и временем синтеза 8, 10 нед. и с концентрацией ионов магния, увеличенной в 2 и 4 раза от физиологической нормы. При обработке кинетических кривых установлено, что скорость растворения зависит как от времени синтеза, так и от концентрации добавки в исходном растворе плазмы крови (табл. 6).
Таблица 6.
Образец | Кинетическое уравнение | $\text{v}$, ммоль/(л мин) | |
---|---|---|---|
Время синтеза, нед. | Концен-трация добавки | ||
8 | Сфиз2 | С = 81.28 – 0.282х | 0.282 |
10 | Сфиз2 | С = 80.07 – 0.326х | 0.326 |
8 | Сфиз4 | С = 93.42 – 0.339х | 0.339 |
Видно, что растворение в препарате Верапамил повышается с увеличением добавки ионов магния и времени синтеза. Это связано с изменением фазового состава, а именно с увеличением в составе образца более растворимой и метастабильной фазы витлокита, что находится в согласии с результатами РФА и ИК-спектроскопии.
Сравнение резорбции беспримесных образцов с твердыми фазами, полученными в присутствии ионов магния, показало, что скорость их растворения в препарате Верапамил выше. Поскольку данный препарат относится к группе лекарств антагонистов кальция, его действие направленно на резорбцию фосфатов кальция, а не магния, а витлокит, обнаруженный в составе твердых фаз, содержит порядка 1.94% магния.
ВЫВОДЫ
В ходе синтеза из модельного раствора плазмы крови человека получен нестехиометрический водосодержащий карбонатгидроксилапатит, совпадающий по составу с кальцификатом человека.
Выявлено, что пересыщение 50 и 100 и увеличение времени эксперимента с 2 нед. до 10 ведут к увеличению содержания карбонат-ионов, их максимальное количество (5.54 мас. %) соответствует апатиту, синтезированному при пересыщении 50 в течение 10 нед.
Установлено, что влияние препарата Верапамил на резорбцию беспримесных образцов в 2 раза выше, чем в 0.9%-ном растворе NaCl и трис-буфере.
Изучено влияние добавок на процессы образования фосфатов кальция в модельном растворе плазмы крови и выявлено, что присутствие глутаминовой кислоты способствует образованию карбонатгидроксилапатитов В и А типа в зависимости от ее концентрации, ее увеличение способствует снижению резорбции образцов. Образцы с добавкой ионов магния состоят из КГА и витлокита, увеличение концентрации добавки способствует увеличению скорости растворения в препарате Верапамил, но при этом для образцов с добавкой магния отмечено снижение скорости растворения по сравнению с беспримесными образцами.
Работа выполнена при частичной финансовой поддержке Российского фонда фундаментальных исследований (грант № 15-29-04839 офи_м).
Список литературы
Golovanova O.A., Frank-Kamenetskaya O.V., Punin Y.O. // Russian J. General Chem. 2011. V. 81. P. 1392.
Tetsuo Kodaka, Ryoichi Mori, Akihiko Hirayama et al. // Clin. Electron Microscopy Society. 2003. V. 36. P. 272.
Becker A., Epple M., Mueller K.M. // Inorg. Biochem. 2004. V. 98. P. 2032.
Kazuyuki Yahagi, Frank D. Kolodgie, Fumiyuki Otsuka // Nat. Rev. Cardiol. 2015. V. 10. P. 1038.
Титов А.Т., Ларионов П.М., Щукин В.С. и др. // Поверхность. рентген., синхротр. и нейтр. исслед. 2001. № 3. С. 74.
Власов Д.Ю., Зеленская М.С., Баринова К.В. и др. Биоминералогия. Луцьк. Украина. 2008. 26 с.
Indulekha Pillai C.L., Shen Li, Milagros R. et al. // Cell. Stem. Cell. 2017. V. 20(2). P. 218.
Титов А.Т., Ларионов П.М., Зайковский В.И. // Поверхность. рентген., синхротр. и нейтр. исслед. 2000. № 7. С. 66.
Ламанова Л.М. // Вестн. Томск. гос. ун-та. 2010. № 337. С. 194.
Марри Р. Биохимия человека. М.: Миp: БИНОМ, 2009. Т. 2. 414 с.
Березов Т.Т., Коровин М.А. Биологическая химия. М.: Медицина, 2002. 704 с.
Голованова О.А., Солодянкина А.А. // Кристаллография. 2017. Т. 62. № 2. С. 338.
Голованова О.А., Солодянкина А.А. // Кристаллография. 2017. Т. 62. № 3. С. 505.
Gibson I.R., Bonfield W., Sayer M. // J. Biomed. 2002. V. 13. P. 697.
Яхно Т.А., Яхно В.Г., Соколов А.В. // Биофизика. 2005. Т. 50. № 4. С. 726.
Lars-Fride Olsson, Karin Sandin, Rolf Odselius et al. // Inorg. Chem. 2007. V. 26. P. 4123.
Solodyankina A., Nikolaev A., Frank-Kamenetskaya O., Golovanova O. // J. Mol. Struct. 2016. V. 1119. № 5. P. 484. org/. doi 10.1016/j.molstruc.2016.04.080
Grazielle V. Nogueira, Landulfo Silveira, Jr. Airton A. et al. // Biomed. Opt. 2005. V. 3. P. 10.
Pigozzi F. // Sports Med. Phys. Fitness. 2011. V. 51. P. 260.
Голованова О.А., Цыганова А.А., Чиканова Е.С. // Физика и химия стекла. 2016. Т. 42. № 6. С. 798.
Frank-Kamenetskaya O., Kol’tsov A. // Mol. Struct. 2011. V. 9. P. 9.
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Кристаллография