Российские нанотехнологии, 2024, T. 19, № 1, стр. 96-102

Нанокомплексы антрациклинового антибиотика дауномицина и доксорубицина с наночастицами селена и поливинилпирролидоном: спектральные и размерные характеристики

А. И. Киппер 1*, Л. Н. Боровикова 1, И. С. Гаркушина 1

1 Институт высокомолекулярных соединений РАН
Санкт-Петербург, Россия

* E-mail: kipper@imc.macro.ru

Поступила в редакцию 14.07.2023
После доработки 21.09.2023
Принята к публикации 03.10.2023

Аннотация

Установлено влияние гидроксильной группы в агликоне противоопухолевого антибиотика доксорубицина на спектрофотометрические и размерные характеристики нанокомплексов “доксорубицин–поливинилпирролидон–наночастицы селена”. Вовлеченность компонентов тройных комплексов в межмолекулярные взаимодействия оценивали спектрофотометрическим методом. Методами статического и динамического рассеяния света определены радиусы инерции (40–60 нм) и гидродинамические радиусы (20–70 нм) синтезированных нанокомплексов. Гидроксильная группа, присутствующая в структуре противоопухолевого антибиотика, способствовала формированию в водной среде более рыхлой, протекаемой оболочки нанокомплекса по сравнению с нанокомплексами “дауномицин–поливинилпирролидон–наночастицы селена”. Увеличение концентрации Se при синтезе нанокомплексов приводило к расширению рыхлой оболочки. Выявленные закономерности в дальнейшем будут способствовать разработке методов синтеза нанокомплексов для модификации водорастворимых противоопухолевых антибиотиков.

Список литературы

  1. Arcamone F. Doxorubicin anticancer antibiotics. New York: Academic Press, 1981. 369 p.

  2. Горбунова В.А. Новые цитостатики в лечении злокачественных опухолей. М.: Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина РАМН, 1998. 128 с.

  3. Bakker M.H., Grillaud M., Wu D.J. et al. // Macromol. Rapid. Commun. 2018. V. 39. P. 1. https://doi.org/10.1002/marc.201800007

  4. Cuihua H., Chen X., Huang Y. // Drug Des. 2016. V. 5 (3). P. 1. https://doi.org/10.4172/2169-0138.1000138

  5. Zunino F., Capranico G. // Anti-Cancer Drug Design. 1990. V. 5. P. 307.

  6. Arcamone F. // Cancer Res. 1985. V. 45. P. 5995.

  7. Kuznetsov D.D., Alsikafi N.F., O’Connor R.C. et al. // Expert Opinion. Pharmacother. 2001. № 2. P. 1009. https://doi.org/10.1517/14656566.2.6.1009

  8. Minotti G., Menna P., Salvatorelli E. et al. // Pharmacol. Rev. 2004. V. 56. P. 185. https://doi.org/10.1124/pr.56.2.6

  9. Arcamone F., Cassinelli G., Fantini G. et al. // Biotechnol. Bioeng. 1969. V. 11. P. 1101. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-0290(20000320)67: 6<704:AID-BIT8>3.0.CO;2-L

  10. Allahverdiyev A.M., Kon K.V., Abamor E.S. et al. // Expert Rev. Anti Infect. Ther. 2011. V. 11. P. 1035. https://doi.org/10.1586/eri.11.121

  11. Park S., Park H., Jeong S. et al. // J. Nanomaterials. 2019. art. 3481397. https://doi.org/10.1155/2019/3481397

  12. Farooq M.U., Novosad V., Rozhkova E.A. et al. // Sci. Rep. 2018. V. 8. art. 2907. https://doi.org/10.1038/s41598-018-21331-y

  13. Kumar K.S., Kumar V.B., Paik P. // Review Article. Recent Advancement in Functional Core-Shell. 2013. https://doi.org/10.1155/2013/672059

  14. Dzhardimalieva G.I., Pomogailo A.D., Golubeva N.D. et al. // Colloid Journal. 2011. V. 73 (4). P. 458. https://doi.org/10.1134/s1061933x11040041

  15. Kokkarchedu V., Mohan Y.M., Núñez D. et al. // RSC Adv. 2019. V. 9 (15). P. 8326. https://doi.org/10.1039/c9ra00536f

  16. Khurana A., Tekula S., Saifi M.A. et al. // Biomed. Pharmacother. 2019. V. 111. P. 802. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2018.12.146

  17. Maiyo F., Singh M. // Nanomedicine. 2017. V. 12 (9). P. 1075. https://doi.org/10.2217/nnm-2017-0024

  18. HosnedlovaB., Kepinska M., Skalickova S. et al. // Int. J. Nanomed. 2018. V. 13. P. 2107. https://doi.org/10.2147/IJN.S157541

  19. Li Q., Chen T., Yang. F. // Mater. Lett. 2010. V. 64 (5). P. 614. https://doi.org/10.1016/j.memsci.2009.02.012

  20. Liu W., Wong Y., ZhangY. // ACS Nano. 2012. V. 6 (8). P. 6578. https://doi.org/10.1021/nn202452c

  21. Bhol P., Mohanty M., Mohanty P.S. // J. Mol. Liq. 2021. V. 325. P. 115135. https://doi.org/10.1016/j.molliq.2020.115135

  22. Jayeoye T.J., Olatunde O.O., Rujiralai T. // Colloids Surf. B. 2020. V. 193. P. 111112. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2020.111112

  23. Madkour M., Bumajdad A., Al-Sagheer F. //Adv. Colloid Interface Sci. 2019. V. 270. P. 38. https://doi.org/10.1016/j.cis.2019.05.004

  24. Verkhovskii R., Kozlova A., Atkin V. et al. // Heliyon. 2019. V. 5 (3). P. e01305. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e01305

  25. Kopeikin V.V., Valueva S.V., Kipper A.I. et al. // Polym. Sci. A. 2003. V. 45 (4). P. 374.

  26. Tran M.T., Van Tinh L., Van B.H. et al.// J. Nanomaterials. 2012. Art. 528047. https://doi.org/10.1155/2012/528047

  27. Kipper A.I., Borovikova L.N., Yakovlev I.V. et al. // Zurnal Prikladnoi Khimii. 2018. V. 91 (1). P. 131. https://doi.org/10.1134/S1070427218010196

  28. Borovikova L.N., Titova A.V., Kipper A.I. et al. // Russian Journal of General Chemistry. 2017. V. 87 (5). P. 1031. https://doi.org/10.1134/S1070363217050231 29

  29. Brown D.V., Floyd A.J., Sainsbury M. // Organic Spectroscopy. School of Chemistry, University of Bath, Chichester New York Brisbane Toronto Singapore: John Wiley & Sona, 1988. 258 p.

  30. Beker J. // Spectroskopie. Vogel Industrie Medien GmbH & CoKG, Wurzburg (Germany), 1997. 528 p.

  31. Burchard B.W. // Laser Light Scattering in Biochemistry / Eds. Harding S.E. et al. Cambridge: Royal Soc. Chem., 1992. 354 p.

Дополнительные материалы отсутствуют.