Российские нанотехнологии, 2024, T. 19, № 1, стр. 96-102

Нанокомплексы антрациклинового антибиотика дауномицина и доксорубицина с наночастицами селена и поливинилпирролидоном: спектральные и размерные характеристики

А. И. Киппер 1*, Л. Н. Боровикова 1, И. С. Гаркушина 1

1 Институт высокомолекулярных соединений РАН
Санкт-Петербург, Россия

* E-mail: kipper@imc.macro.ru

Поступила в редакцию 14.07.2023
После доработки 21.09.2023
Принята к публикации 03.10.2023

Полный текст (PDF)

Аннотация

Установлено влияние гидроксильной группы в агликоне противоопухолевого антибиотика доксорубицина на спектрофотометрические и размерные характеристики нанокомплексов “доксорубицин–поливинилпирролидон–наночастицы селена”. Вовлеченность компонентов тройных комплексов в межмолекулярные взаимодействия оценивали спектрофотометрическим методом. Методами статического и динамического рассеяния света определены радиусы инерции (40–60 нм) и гидродинамические радиусы (20–70 нм) синтезированных нанокомплексов. Гидроксильная группа, присутствующая в структуре противоопухолевого антибиотика, способствовала формированию в водной среде более рыхлой, протекаемой оболочки нанокомплекса по сравнению с нанокомплексами “дауномицин–поливинилпирролидон–наночастицы селена”. Увеличение концентрации Se при синтезе нанокомплексов приводило к расширению рыхлой оболочки. Выявленные закономерности в дальнейшем будут способствовать разработке методов синтеза нанокомплексов для модификации водорастворимых противоопухолевых антибиотиков.

ВВЕДЕНИЕ

Начиная с открытия пенициллина в 1940 г. Флемингом и доказательства его высокой клинической эффективности для человека, работы по получению и выявлению новых антибиотических препаратов, незаменимых при выявлении бактериальных, вирусных и раковых заболеваний, активно продолжаются. К этой задаче добавилась проблема снижения токсичности антибиотиков, пролонгирования их действия и резистентности микроорганизмов к ним.

Антрациклиновые антибиотики дауномицин (ДМ) и доксорубицин (ДОКС) наряду с высокой антибактериальной активностью обладают противоопухолевой активностью. Механизм биологического действия этих соединений связан с внедрением (интеркалированием) четырех конденсированных циклов между парами оснований в молекуле ДНК. Таким образом, эта интеркаляция предотвращает связывание РНК-полимеразы с ДНК, что приводит к подавлению синтеза РНК. Благодаря этому свойству антрациклиновые антибиотики ДМ и ДОКС широко применяются при лечении злокачественных опухолей различной этиологии [1, 2].

Однако практическое применение ДМ и ДОКС (как и других противоопухолевых антибиотиков) ограничено их кардиотоксичностью и развитием резистентности опухолевых клеток. Для преодоления этих ограничений в последние годы большое внимание уделяется модификации антибиотиков, созданию препаратов с различными механизмами действия, разработке новых способов доставки лекарственных средств, что может привести к появлению новых, более качественных препаратов для клинического применения [39].

Одним из подходов к модификации антибиотиков является получение комплексов на основе противоопухолевых антибиотиков, наночастиц (НЧ) биогенных элементов и биосовместимых полимеров [1012]. В многочисленных исследованиях, посвященных комплексам НЧ с полимерами и/или антибиотиками, широко обсуждались методы синтеза оболочечно-ядерных структур, их физические и химические свойства, а также их применение в биомедицинских и различных других целях [1315]. Однако влияние строения антибиотиков на физико-химические свойства синтезируемых комплексов не изучалось.

Селен (Se) представляет особый интерес, так как обладает противоопухолевой активностью [1618]. Отметим, что грань между необходимой лекарственной дозой ионизированного селена и его токсичностью крайне мала. Хорошо известно, что токсичность селена снижается при переходе от его ионной формы к НЧ селена в нулевой степени окисления (Se0), обладающим высокой противоопухолевой активностью [19, 20].

К сожалению, НЧ Se гидрофобны и не образуют стабильных водных растворов. Для их стабилизации в растворах используют полимеры различной природы [2124]. Было показано, что поливинилпирролидон (ПВП) является эффективным стабилизатором НЧ Se в водном растворе [25]. Способность ПВП растворяться в воде и образовывать комплексы с различными веществами обусловлена гидратацией макромолекулы через неподеленные пары электронов карбонильного атома кислорода в пирролидоновом кольце. За счет образования водородных связей между карбонильной группой ПВП и протонами воды каждое лактамное кольцо макромолекулы связывает одну или две молекулы воды. В водных растворах ПВП существует в виде клубка размером 2–100 нм в диапазоне М = 104–106.

Цель данной работы – анализ спектральных и размерных характеристик комплексов антрациклиновых противоопухолевых антибиотиков ДМ и ДОКС с наночастицами селена и макромолекулами ПВП для установления влияния гидроксильной группы в агликоне ДОКС, отличающего его от молекулы ДМ, на структуру нанокомплекса и его конформационные характеристики.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

В работе использовали селенистую и аскорбиновую кислоты (“Вектон”, Санкт-Петербург), ДМ (М = 563.7 г/моль; ОАО “ОНОПБ”, пос. Восточный, Кировская обл.), ДОКС (М = = 579.99 г/моль; ОАО “ОНОПБ”, пос. Восточный, Кировская обл.), поливинилпирролидон (Мw = 55 000; “Ferak”, Berlin). Вещества растворяли в дистиллированной воде.

ПВП – биоактивный полимер (рис. 1а), широко применяемый в медицине для пролонгации действия лекарственных преператов, имеет пик поглощения в области 220–230 нм [26].

Рис. 1.

Структурные формулы ПВП (а), ДМ (б) и ДОКС (в).

Молекула ДМ состоит из тетрациклического антрахиноидного агликона даунорубицинона, соединенного гликозидной связью с аминосахаром даунозамином (рис. 1б). Для тетрациклического антрахиноидного агликона даунорубицинона максимум поглощения при 234 нм связан с электронными переходами между валентными молекулярными орбиталями карбонильных групп второго кольца, при 252 нм – с бензольным кольцом, при 290 нм – с поглощением фенольной группы третьего кольца. Аминосахар даунозамин имеет максимумы поглощения при 480, 495 и 532 нм за счет электронных переходов между валентными молекулярными орбиталями встроенного в кольцо атома кислорода и аминогруппы. Агликон является гидрофобной частью молекулы антибиотика, а аминосахар даунозамин – ее гидрофильной частью. Этот аминосахар содержит способную к ионизации NH2-группу (рKα = 8.2).

Антрациклиновый антибиотик ДОКС (рис. 1в) состоит из хромофора – тетрациклического антрахиноидного агликона доксорубицинона, соединенного гликозидной связью с аминосахаром даунозамином. Наличие гидроксильной группы в агликоне позволяет предположить, что кроме гидрофобных взаимодействий агликон может образовывать водородные связи. ДОКС имеет пять характеристических пиков поглощения 248, 290, 485, 496, 535 нм.

Наночастицы Se синтезировали по реакции между селенистой (H2SeO3) и аскорбиновой (C6H8O6) кислотами [25]. В отсутствие ПВП полученные наночастицы были седиментационно нестабильны и выпадали в осадок через 5–10 ч. ДОКС, как и ДМ, не стабилизировали наночастицы Se в водных растворах даже при СДМ или СДОКСCSe. Для получения нанокомплекса с ДМ ранее был разработан способ синтеза с предварительной стабилизацией наночастиц селена ПВП с последующим введением антибиотика при атмосферном давлении и температуре 20°С [27]. Аналогичную методику использовали для получения тройных комплексов с ДОКС при СПВП = 1 мг/мл, СSe = 0.05 мг/мл и СДокс = 0.025 мг/мл. В реакционную колбу объемом 20 мл помещали 5 мл раствора ПВП с С = 2 мг/мл. Затем добавляли 3.75 мл дистиллированной воды и 0.5 мл раствора H2SeO3 с С = 1.64 мг/мл. После перемешивания на магнитной мешалке в течение 10 мин в реакционную колбу добавляли 0.5 мл C6H8O6 с С = 4.47 мг/мл. Через сутки в полученный водный раствор наночастиц Se, стабилизированных ПВП, добавляли 0.25 мл ДОКС с С = 1 мг/мл. Для получения других концентраций ДОКС в композитах в реакционную колбу вводили 0.375, 0.5 мл раствора ДОКС соответственно. Выбор концентраций при синтезе тройных комплексов определялся областями концентраций, при которых ДМ, ДОКС, Se и ПВП используются в практической медицине.

Измерение оптической плотности (ОП) синтезированных нанокомплексов проводили на спектрофотометре Shimadzu 1900i (Япония) в диапазоне длин волн 220–900 нм в кварцевых кюветах 1 × 1 см.

Методом спектрофотометрического титрования исследовали возможность образования комплекса ДМ и ДОКС с ПВП. Метод заключался в последовательном измерении ОП растворов с фиксированной концентрацией (СДМ/ДОКС = = 0.05 мг/мл (0.9 × 10–4 мол/л)) и различной в них концентрацией ПВП (СПВП = 0–1 мг/мл (0.1–1.8 × 10–5 мол/л)) [28]. Измерение ОП проводили на всех длинах волн характеристических максимумов ДМ и ДОКС, что дало возможность оценить вовлеченность конкретной группы ДМ и ДОКС в процесс комплексообразования.

Наличие межмолекулярных взаимодействий между компонентами в тройных комплексах оценивали по изменению значения ОП между ОП нанокомплекса и значениями ОП исходных компонентов. Были проведены расчеты разницы значений ОП (∆D) между ОП нанокомплекса (Dнк) и значениями ОП исходных компонентов (DДМ и DПВП–Se) или (DДОКС и DПВП–Se) в точках максимумов оптического поглощения “чистого” ДМ или ДОКС как в УФ-области, так и в видимой области спектра [29, 30]:

$\Delta D = {{D}_{{{\text{НК}}}}}--({{D}_{{{\text{ДМ/ДОКС}}}}} + {{D}_{{{\text{ПВП}}--{\text{Se}}}}}).$
При отсутствии взаимодействия между компонентами комплекса ∆D = 0, при наличии взаимодействия ∆D < 0 или ∆D > 0 (гипохромный или гиперхромный эффект соответственно).

Значения гидродинамических радиусов наноструктур Rh получали методом динамического рассеяния света (ДРС) с использованием установки FotocorComplex (источник света – He–Ne-лазер с длиной волны λ = 632.8 нм, мощностью ~20 мВ; коррелятор Photocor-FC с числом каналов 288) (ЗАО “Антекс”, Россия). Обработку результатов регистрации корреляционных функций флуктуаций интенсивности рассеянного света проводили с помощью программы DynaLS (“Гелиос”, Россия), позволяющей из полученных коэффициентов поступательной диффузии D с использованием формулы Стокса–Эйнштейна определить гидродинамический радиус Rh = = kT/6πD0η0 (k – постоянная Больцмана, Т – абсолютная температура, η0 – вязкость растворителя). Погрешность измерения составляла 10%.

Радиусы инерции Rg комплексов при температуре 25°С определяли методом статического рассеяния света (СРС) по измерениям интенсивности рассеянного света Rθ на углах θ = 45° и θ = 135° по отношению к падающему лазерному лучу. Данные измерений интенсивностей анализировали с использованием соотношения

$\begin{gathered} \text{[}z] = (R_{{q = 45}}^{^\circ }{\text{/}}R_{{q = 135}}^{^\circ }) = ({{P}_{v}}(\theta = 45^\circ ){\text{/}}{{P}_{v}}(\theta = \\ = 135^\circ ){{)}_{{C \to 0}}} = f({{D}_{S}}{\text{/}}\lambda ), \\ \end{gathered} $
где [z] – характеристическая асимметрия рассеяния, Rθ – приведенная интенсивность избыточного рассеяния света под углом θ, ${{P}_{v}}$(θ) – фактор рассеяния, величину которого определяют размер рассеивающей частицы DS и состояние поляризации падающего света (индекс ${v}$ соответствует вертикальной поляризации) с длиной волны λ [31]. Погрешность измерения составляла 15%.

По соотношению экспериментальных величин Rg и Rh находили значение конформационно-структурного параметра ρ = Rg/Rh, отражающего изменения в структурной организации нанокомплекса [31].

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Спектрофотометрические измерения коллоидных растворов комплексов ДОКС–ПВП не зафиксировали сдвигов пиков поглощения ДОКС при увеличении концентрации ПВП. Такая же тенденция наблюдалась в случае комплексов ДМ–ПВП [27]. Однако в обеих системах наблюдался гиперхромный эффект в УФ-области спектра. При увеличении концентрации ПВП показано увеличение разницы между ОП растворов нанокомплексов и значениями плотностей растворов исходных компонентов (ΔD > 0). УФ-область спектра характеризует поглощение агликона антрациклиновых антибиотиков, гиперхромный эффект для комплексов в этой области спектра свидетельствует об образовании комплекса за счет взаимодействия гидрофобных агликонов ДОКС и ДМ и гидрофобной частью цепи ПВП.

В отсутствие ПВП амфифильные молекулы ДМ образовывали агрегаты размером 440 нм, который сохранялся и при малых концентрациях ПВП. При увеличении концентрации ПВП, обладающего способностью гидрофилизовать гидрофобные участки молекулы ДМ, происходили разрушение агрегатов ДМ и образование комплексов меньшего размера, который оставался на уровне ~10 нм при СПВП > 0.75 × 10–5 мол/л (рис. 2, зависимость 1). Антибиотик ДОКС (рис. 2, зависимость 2) в отсутствие ПВП образовывал агрегаты с меньшим размером – Rh составлял 167 нм. Присутствие ПВП приводило к формированию комплекса ДОКС–ПВП размером ~100 нм, с ростом концентрации ПВП размер уменьшался до ~50 нм. По всей видимости, это обусловлено уменьшением гидрофобной доли в ДОКС, связанной с появлением ОН-группы вместо СН3.

Рис. 2.

Зависимость гидродинамических радиусов, комплексов ДМ (1) и ДОКС (2) с ПВП от концентрации ПВП.

Для модификации ДМ и ДОКС синтезировали нанокомплексы с наночастицами Se и ПВП и исследовали их оптические (рис. 3, 4) и размерные характеристики. Все синтезированные образцы были седиментационно устойчивы в растворе более четырех месяцев.

Рис. 3.

Зависимость оптической плотности нанокомплексов с ДМ от длины волны: СПВП = 1 мг/мл и СSe = 0.025 мг/мл (а), СSe = 0.0375 мг/мл (б), СSe = 0.05 мг/мл (в): 1 – ДМ, 2 – ({Se–ПВП}–ДМ).

Рис. 4.

Зависимость оптической плотности нанокомплексов с ДОКС от длины волны: СПВП = 1 мг/мл и СSe = = 0.025 мг/мл (а), СSe = 0.0375 мг/мл (б), СSe = 0.05 мг/мл (в); 1 – ДОКС, 2 – (Se–ПВП)–ДОКС.

Изменение ОП спектров поглощения тройных нанокомплексов показало, что во всем исследованном диапазоне концентраций Se (CSe = 0.025–0.05 мг/мл) в УФ- и видимой областях спектра проявлялся гиперхромный эффект (∆D > 0). Гиперхромный эффект в УФ-области спектра в тройных системах связан с гидрофобными взаимодействиями ДМ и ДОКС с наночастицами селена и ПВП, а в видимой области – с электростатическими взаимодействиями аминосахарных фрагментов антибиотиков с ПВП [26, 28]. Отметим, что в случае с ДМ изменение ОП в видимой области стало заметно проявляться только при CSe = 0.05 мг/мл (рис. 3), а в системе с ДОКС изменение в видимой области спектра наблюдалось во всем диапазоне исследованных концентраций селена (рис. 4).

Для определения размерных характеристик нанокомплексов антрациклинового противоопухолевого антибиотика ДМ и ДОКС с наночастицами селена и ПВП методами ДРС и СРС были исследованы тройные комплексы ПВП–Se–ДМ, ПВП–Se–ДОКС и двойные комплексы ПВП–Se. Гистограммы ДРС по размерам образцов тройных комплексов демонстрировали узкое унимодальное распределение.

Из данных СРС видно, что величины радиусов инерции Rg для систем ПВП–Se и (ПВП–Se)–ДМ очень близки (рис. 5, кривые 1, 2). Характер зависимости Rg от СSe остается для обеих систем одинаковым – монотонное уменьшение Rg нанокомплексов с ростом СSe, что может быть обусловлено наращиванием массы их ядер и изменением оболочки в процессе синтеза (“поджатие” оболочки), с другой стороны, возможно увеличение ее протекаемости.

Рис. 5.

Зависимость Rg от концентрации наночастиц Se в нанокомпозитах: 1 – ПВП–Se, 2 – (ПВП–Se)–ДМ, 3 – (ПВП–Se)–ДОКС.

Для нанокомплекса (ПВП–Se)–ДОКС характер зависимости Rg от СSe меняется (рис. 5, кривая 3): при малых СSe значения Rg тройного нанокомплекса лежат ниже значений Rg для системы ПВП–Se, затем при увеличении СSe происходит рост значений Rg нанокомплекса (ПВП–Se)–ДОКС вплоть до СSe = 0.4–0.5 мг/мл и при дальнейшем увеличении СSe происходит падение размеров нанокомплекса (ПВП–Se)–ДОКС до уровня размеров ПВП–Se при СSe = 0.075 мг/мл.

Зависимости гидродинамических радиусов Rh от концентрации НЧ Se для системы с ДМ также подтверждают предыдущие данные о схожести характера зависимостей и близости величин Rh нанокомплексов ПВП–Se и (ПВП–Se)–ДМ (рис. 6, кривые 1, 2). Увеличение СSe сначала приводило к незначительному возрастанию величин гидродинамических радиусов, а затем после некоторого насыщения происходило поджатие нанокомплекса в целом и величина Rh уменьшалась, как и в случае зависимости Rg от СSe, до значения Rh, соответствующего Rh нанокомплекса ПВП–Se.

Рис. 6.

Зависимость Rh от концентрации наночастиц Se в нанокомпозитах: 1 – ПВП–Se, 2 – (ПВП–Se)–ДМ, 3 – (ПВП–Se)–ДОКС.

В случае нанокомплексов (ПВП–Se)–ДОКС кривая зависимости Rh от СSe (рис. 6, кривая 3) располагалась ниже кривой для системы ПВП–Se (кроме одной точки при СSe = 0.0125 мг/мл). При этом величины Rh в диапазоне СSe от 0.035 до 0.05 мг/мл были практически постоянными, следовательно, непротекаемая часть нанокомплексов (ядра), согласно используемой гидродинамической модели, при увеличении СSe до 0.05 мг/мл не изменялась.

Зависимости конформационно-структурного параметра ρ = Rg/Rh от концентрации СSe отражают изменения в структурной организации нанокомплексов. Экспериментальные значения ρ для клубкообразных макромолекул в термодинамически “хорошем” растворителе обычно находятся в интервале 1.5–1.7, а меньшие значения ρ (ρ < < ρкл) наблюдаются при переходе к сферическим образованиям и значение ρ = 0.775 соответствует сплошной однородной сфере [31].

Таким образом, величина ρ 0.8 для нанокомплексов ПВП–Se и (ПВП–Se)–ДМ в диапазоне значений СSe от 0.025 до 0.075 мг/мл (рис. 7) свидетельствует о формировании в этой области однородных сферических частиц. При этом симбатный и близкий ход зависимостей для систем ПВП–Se и (ПВП–Se)–ДМ говорит о том, что введение молекул ДМ в сформировавшийся комплекс ПВП–Se не приводило к значительным изменениям размерных характеристик и его структуры.

Рис. 7.

Зависимость ρ от концентрации наночастиц Se в нанокомплексах: 1 – ПВП–Se, 2 – (ПВП–Se)–ДМ, 3 – (ПВП–Se)–ДОКС.

Изменение значений ρ от 0.8 до 1.2 для тройных систем (ПВП–Se)–ДОКС при увеличении концентрации селена свидетельствует о переходе нанокомплекса от структуры однородной сферы (ρ = 0.8) к структуре, в которой проявляется протекаемость внешних участков нанокомплекса (ρ = 1.2), и можно говорить о “разрыхлении” части наружной оболочки нанокомплекса и возрастании ее толщины с ростом концентрации селена.

Таким образом, замена в агликоне CH3-группы на ОН-группу весьма заметно сказывалась на структуре нанокомплекса и его размерах. Если в системе с ДМ образовывалась практически не меняющаяся с ростом СSe компактная структура, размер которой тоже не претерпевал существенных изменений, то для системы с ДОКС формировалась структура с рыхлой протекаемой оболочкой, толщина которой увеличивалась с ростом СSe.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Появление ОН-группы в молекулярной структуре ДОКС не привело к существенному различию размеров тройных комплексов (ПВП–Se)–ДОКС и (ПВП–Se)–ДМ. Образование достаточно малых комплексов с Rg от 40 до 60 нм и Rh от 20 до 70 нм позволит использовать эти комплексы в противоопухолевой терапии.

Наличие группы ОН приводило к образованию нанокомплексов (ПВП–Se)–ДОКС с более протекаемой оболочкой по сравнению с нанокомплексами (ПВП–Se)–ДМ, при этом ширина протекаемой оболочки нанокомплексов (ПВП–Se)–ДОКС увеличивалась с увеличением концентрации Se.

Полученные данные могут служить основой для дальнейшей разработки метода синтеза нанокомплексов с целью создания препаратов на основе антрациклиновых антибиотиков, модифицированных наночастицами, обладающих малой токсичностью по сравнению с исходными антибиотиками при сохранении своей биологической активности.

Авторы выражают благодарность О.Н. Писареву.

Список литературы

  1. Arcamone F. Doxorubicin anticancer antibiotics. New York: Academic Press, 1981. 369 p.

  2. Горбунова В.А. Новые цитостатики в лечении злокачественных опухолей. М.: Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина РАМН, 1998. 128 с.

  3. Bakker M.H., Grillaud M., Wu D.J. et al. // Macromol. Rapid. Commun. 2018. V. 39. P. 1. https://doi.org/10.1002/marc.201800007

  4. Cuihua H., Chen X., Huang Y. // Drug Des. 2016. V. 5 (3). P. 1. https://doi.org/10.4172/2169-0138.1000138

  5. Zunino F., Capranico G. // Anti-Cancer Drug Design. 1990. V. 5. P. 307.

  6. Arcamone F. // Cancer Res. 1985. V. 45. P. 5995.

  7. Kuznetsov D.D., Alsikafi N.F., O’Connor R.C. et al. // Expert Opinion. Pharmacother. 2001. № 2. P. 1009. https://doi.org/10.1517/14656566.2.6.1009

  8. Minotti G., Menna P., Salvatorelli E. et al. // Pharmacol. Rev. 2004. V. 56. P. 185. https://doi.org/10.1124/pr.56.2.6

  9. Arcamone F., Cassinelli G., Fantini G. et al. // Biotechnol. Bioeng. 1969. V. 11. P. 1101. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-0290(20000320)67: 6<704:AID-BIT8>3.0.CO;2-L

  10. Allahverdiyev A.M., Kon K.V., Abamor E.S. et al. // Expert Rev. Anti Infect. Ther. 2011. V. 11. P. 1035. https://doi.org/10.1586/eri.11.121

  11. Park S., Park H., Jeong S. et al. // J. Nanomaterials. 2019. art. 3481397. https://doi.org/10.1155/2019/3481397

  12. Farooq M.U., Novosad V., Rozhkova E.A. et al. // Sci. Rep. 2018. V. 8. art. 2907. https://doi.org/10.1038/s41598-018-21331-y

  13. Kumar K.S., Kumar V.B., Paik P. // Review Article. Recent Advancement in Functional Core-Shell. 2013. https://doi.org/10.1155/2013/672059

  14. Dzhardimalieva G.I., Pomogailo A.D., Golubeva N.D. et al. // Colloid Journal. 2011. V. 73 (4). P. 458. https://doi.org/10.1134/s1061933x11040041

  15. Kokkarchedu V., Mohan Y.M., Núñez D. et al. // RSC Adv. 2019. V. 9 (15). P. 8326. https://doi.org/10.1039/c9ra00536f

  16. Khurana A., Tekula S., Saifi M.A. et al. // Biomed. Pharmacother. 2019. V. 111. P. 802. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2018.12.146

  17. Maiyo F., Singh M. // Nanomedicine. 2017. V. 12 (9). P. 1075. https://doi.org/10.2217/nnm-2017-0024

  18. HosnedlovaB., Kepinska M., Skalickova S. et al. // Int. J. Nanomed. 2018. V. 13. P. 2107. https://doi.org/10.2147/IJN.S157541

  19. Li Q., Chen T., Yang. F. // Mater. Lett. 2010. V. 64 (5). P. 614. https://doi.org/10.1016/j.memsci.2009.02.012

  20. Liu W., Wong Y., ZhangY. // ACS Nano. 2012. V. 6 (8). P. 6578. https://doi.org/10.1021/nn202452c

  21. Bhol P., Mohanty M., Mohanty P.S. // J. Mol. Liq. 2021. V. 325. P. 115135. https://doi.org/10.1016/j.molliq.2020.115135

  22. Jayeoye T.J., Olatunde O.O., Rujiralai T. // Colloids Surf. B. 2020. V. 193. P. 111112. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2020.111112

  23. Madkour M., Bumajdad A., Al-Sagheer F. //Adv. Colloid Interface Sci. 2019. V. 270. P. 38. https://doi.org/10.1016/j.cis.2019.05.004

  24. Verkhovskii R., Kozlova A., Atkin V. et al. // Heliyon. 2019. V. 5 (3). P. e01305. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e01305

  25. Kopeikin V.V., Valueva S.V., Kipper A.I. et al. // Polym. Sci. A. 2003. V. 45 (4). P. 374.

  26. Tran M.T., Van Tinh L., Van B.H. et al.// J. Nanomaterials. 2012. Art. 528047. https://doi.org/10.1155/2012/528047

  27. Kipper A.I., Borovikova L.N., Yakovlev I.V. et al. // Zurnal Prikladnoi Khimii. 2018. V. 91 (1). P. 131. https://doi.org/10.1134/S1070427218010196

  28. Borovikova L.N., Titova A.V., Kipper A.I. et al. // Russian Journal of General Chemistry. 2017. V. 87 (5). P. 1031. https://doi.org/10.1134/S1070363217050231 29

  29. Brown D.V., Floyd A.J., Sainsbury M. // Organic Spectroscopy. School of Chemistry, University of Bath, Chichester New York Brisbane Toronto Singapore: John Wiley & Sona, 1988. 258 p.

  30. Beker J. // Spectroskopie. Vogel Industrie Medien GmbH & CoKG, Wurzburg (Germany), 1997. 528 p.

  31. Burchard B.W. // Laser Light Scattering in Biochemistry / Eds. Harding S.E. et al. Cambridge: Royal Soc. Chem., 1992. 354 p.

Дополнительные материалы отсутствуют.