Российские нанотехнологии, 2024, T. 19, № 3, стр. 420-426
СИНТЕЗ НАНОЧАСТИЦ АЛЬБУМИНА С ИММОБИЛИЗОВАННЫМИ И ИНКОРПОРИРОВАННЫМИ ФЛУОРОФОРАМИ И ЛЕКАРСТВЕННЫМ ВЕЩЕСТВОМ, СВОЙСТВА И ПРОФИЛИ ВЫСВОБОЖДЕНИЯ
Г. А. Шульмейстер 1, Ю. Д. Чекменева 1, 2, М. А. Байбакова 1, Д. В. Королев 1, 3, *
1 Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова
Санкт-Петербург, Россия
2 Санкт-Петербургский государственный электротехнический университет “ЛЭТИ” им. В.И. Ульянова (Ленина)
Санкт-Петербург, Россия
3 Первый Санкт-Петербургский государственный университет им. И.П. Павлова
Санкт-Петербург, Россия
* E-mail: dimon@cardioprotect.spb.ru
Поступила в редакцию 11.03.2024
После доработки 22.04.2024
Принята к публикации 22.04.2024
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Аннотация
Реализован синтез наночастиц альбумина последовательно методами pH-коацервации, десольвации и сшивки глутаровым альдегидом. Полученные частицы имеют форму, близкую к сферической. Обнаружена зависимость размеров получаемых частиц от скорости десольвации. Проведена иммобилизация на поверхности наночастиц двух флуоресцентных красителей – индоцианина зеленого и флуоресцеина натрия, а также противоишемического препарата квинакрина, что позволило получить пролонгированные формы. Для квинакрина, иммобилизованного на поверхности наночастиц, заметное высвобождение квинакрина заканчивается к 30 ч от начала эксперимента и составляет 65% иммобилизованного действующего вещества. Флуоресцентные красители не высвобождаются.
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Список литературы
Yhee J.Y., Lee J., Chang H. et al. // Curr. Pharm. Des. 2015. V. 21 (14). P. 1889. https://doi.org/10.2174/1381612821666150302115809
Tan Y.L., Ho H.K. // Drug Discov. Today. 2018. V. 23 (5). P. 1108. https://doi.org/10.1016/j.drudis.2018.01.051
Kunde S.S., Wairkar S. // Colloids Surf. B. 2022. V. 213. P. 112422. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2022.112422
Lei C., Liu X.R., Chen Q.B. et al. // J. Control. Release. 2021. V. 331. P. 416. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2021.01.033
Yu N., Shao S., Huan W. et al. // Food Chem. 2022. V. 389. P. 133032. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2022.133032
Minetti F., Mengatto L.N., Laura Olivares M., Berli C.L.A. // Food Res. Int. 2022. V. 162. Pt A. P. 111984. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2022.111984
Lin T., Zhao P., Jiang Y. et al. // ACS Nano. 2016. V. 10 (11). P. 9999. https://doi.org/10.1021/acsnano.6b04268
Solanki R., Rostamabadi H., Patel S., Jafari S.M. // Int. J. Biol. Macromol. 2021. V. 193. Pt A. P. 528. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2021.10.040
Spada A., Emami J., Tuszynski J.A., Lavasanifar A. // Mol. Pharm. 2021. V. 18 (5). P. 1862. https://doi.org/10.1021/acs.molpharmaceut.1c00046
Kianfar E. // J. Nanobiotechnol. 2021. V. 19 (1). P. 159. https://doi.org/10.1186/s12951-021-00896-3
Kouchakzadeh H., Safavi M.S., Shojaosadati S.A. // Adv. Protein Chem. Struct. Biol. 2015. V. 98. P. 121. https://doi.org/10.1016/bs.apcsb.2014.11.002
Fu Y., Yang S., Liu Y. et al. // Macromol. Biosci. 2022. V. 22 (3). P. e2100404. https://doi.org/10.1002/mabi.202100404
Song Y., Bugada L., Li R. et al. // Sci. Transl. Med. 2022. V. 14 (643). P. eabl3649. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.abl3649
Kim B., Seo B., Park S. et al. // Colloids Surf B. 2017. V. 158. P. 157. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2017.06.039
Pal S., G B.R., Mohny F.P. et al. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2023. V. 15 (40). P. 46721. https://doi.org/10.1021/acsami.3c11561
Su Z., Zhao J., Zhao X. et al. // Int. J. Pharm. 2023. V. 635. P. 122711. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2023.122711
Lee C. // Colloids Surf. B. 2023. V. 226. P. 113335. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2023.113335
Luo L., Zhang B., Tao F. et al. // ACS Nano. 2023. V. 17(16). P. 15388. https://doi.org/10.1021/acsnano.3c00295
Ma J., Zhang Y., Sun H. et al. // J. Mater. Chem B. 2022. V. 10 (22). P. 4226. https://doi.org/10.1039/d2tb00396a
Shen H., Gao Q., Liu T. et al. // Curr. Drug Deliv. 2022. V. 19 (1). P. 49. https://doi.org/10.2174/1567201819666211229120611
Kale T., Bendale K., Singh K.K., Chaudhari P. // J. Biomed. Nanotechnol. 2019. V. 15 (2). P. 236. https://doi.org/10.1166/jbn.2019.2690
Wallnöfer E.A., Thurner G.C., Kremser C. et al. // Histochem Cell Biol. 2021. V. 155 (1). P. 19. https://doi.org/10.1007/s00418-020-01919-0
Elzoghby A.O., Samy W.M., Elgindy N.A. // J. Control. Release. 2012. V. 157 (2). P. 168. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2011.07.031
An F.F., Zhang X.H. // Theranostics. 2017. V. 7 (15). P. 3667. https://doi.org/10.7150/thno.19365
Yang Y., Li X., Song J. et al. // Nano Lett. 2023. V. 23 (4). P. 1530. https://doi.org/10.1021/acs.nanolett.2c04976
Aziz A., Sefidbakht Y., Rezaei S. et al. // J. Pharm. Sci. 2022. V. 111 (4). P. 1187. https://doi.org/10.1016/j.xphs.2021.12.006
Weber C., Kreuter J., Langer K. // Int. J. Pharm. 2000. V. 196 (2). P. 197. https://doi.org/10.1016/s0378-5173(99)00420-2
Langer K., Balthasar S., Vogel V. et al. // Int. J. Pharm. 2003. V. 257 (1–2). P. 169. https://doi.org/10.1016/s0378-5173(03)00134-0
Kufleitner J., Wagner S., Worek F. et al. // J. Microencapsul. 2010. V. 27 (6). P. 506. https://doi.org/10.3109/02652041003681406
Sebak S., Mirzaei M., Malhotra M. et al. // Int. J. Nanomedicine. 2010. V. 5. P. 525. https://doi.org/10.2147/ijn.s10443
Cui W., Wang A., Zhao J. et al. // J. Colloid Interface Sci. 2016. V. 465. P. 11. https://doi.org/10.1016/j.jcis.2015.11.054
Qu N., Lee R.J., Sun Y. et al. // Int. J. Nanomedicine. 2016. V. 11. P. 3451. https://doi.org/10.2147/IJN.S105420
Lomis N., Westfall S., Farahdel L. et al. // Nanomaterials (Basel). 2016. V. 6 (6). P. 116. https://doi.org/10.3390/nano6060116
van Bilsen M., van der Vusse G.J., Willemsen P.H. et al. // J. Mol. Cell. Cardiol. 1990. V. 22 (2). P. 155. https://doi.org/10.1016/0022-2828(90)91112-k
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Российские нанотехнологии