Почвоведение, 2020, № 9, стр. 1121-1131

ВВЕДЕНИЕ

Стимулирующая предпосевная обработка семян известна достаточно давно [15, 19]. Для ее проведения используют различные препараты [7, 15, 18, 19] или стимулирующие воздействия [1, 5, 19, 26]. При этом предпосевная обработка семян препаратами-стимуляторами в условиях производства в отличие от применения стимулирующих воздействий реализуется значительно проще, так как можно использовать стандартное оборудование, применяемое для протравливания семян. Необходимо отметить, что при стимуляции семян наблюдаемые положительные эффекты часто не воспроизводятся, что объясняли влиянием погодных условий, качества семян или другими причинами, но, в целом, природа невоспроизводимости не была понятна.

Было выдвинуто предположение [23, 24], что небольшая величина эффектов при стимулирующей обработке семян биологически активными веществами (БАВ) и невоспроизводимость величины стимуляции обусловлены действием веществ-стимуляторов на фоне угнетающего воздействия на семена аллелотоксинов, поступающих в них из почв [2–4, 6, 8–10, 13, 17, 25, 27, 28]. Как следствие, в зависимости от величины ингибирующего действия аллелотоксинов стимулирующее влияние проявляется в различной степени.

Установлено, что защита семян от ингибирующего действия аллелотоксинов сорбционными препаратами на основе бентонита (БК) и гумата (Г) сама стимулирует их развитие без веществ-стимуляторов, а также обеспечивает значительное повышение эффективности использования некоторых препаратов, содержащих вещества-стимуляторы: гормоны роста растений, субстраты дыхательного метаболизма, стимуляторы широкого спектра действия [21, 23]. При проведении этих исследований выявлено [21], что из почвы в прорастающие семена поступают не только аллелотоксины, но и БАВ, которые необходимы для развития растений, а закрепление этих БАВ на сорбентах замедляет прорастание семян и развитие их проростков. Поэтому в сорбционный препарат была введена добавка автолизата пивных дрожжей (АПД), содержащего большой набор разнообразных БАВ (витамины, ферменты, аминокислоты и т. д.), которые должны были блокировать сорбционные центры сорбента, способные закреплять БАВ, поступающие в семена из почвы. Тем самым снималось негативное действие сорбционных препаратов на прорастание некоторых видов семян [21, 23].

Эксперименты по предпосевной обработке семян растворами, содержащими наряду с сорбционными препаратами индивидуальные гормоны роста растений, субстраты дыхательного метаболизма и БАВ-стимуляторы, показали, что величина стимуляции этими растворами носит экстремальный характер и может быть достаточно велика. При этом интервал концентраций высокой эффективности применения этих гормонов был достаточно узок. При введении субстратов дыхательного метаболизма, гормонов роста растений и стимуляторов широкого спектра действия в раствор сорбционного препарата (БК-Г-АПД) эффективность применения многих БАВ резко возрастала [21, 23].

В то же время не было отмечено стимуляции при использовании диэтиламиноэтилгексаноата, триаконтанола, а также кинетина и форхлорфенурона. При использовании гормона ауксиновой природы (3-индолилуксусной кислоты) отсутствие стимуляции при малых концентрациях сменялось заметным ингибированием [23].

Большая часть полученных результатов была вполне предсказуемой. Так, трудно было ожидать высоких стимулирующих эффектов при любых применяемых концентрациях БАВ. Это связано с тем, что для растений важную роль играет не увеличение концентрации какого-либо одного гормона или БАВ, а сбалансированность концентраций гормонов и других БАВ в растениях и их отдельных органах [14].

По-видимому, по этой же причине не все изученные препараты оказывали стимулирующее действие на прорастание семян. Если их наличие в растении после поступления необходимых для развития семян БАВ из почвы находилось на близком к оптимальному уровне, то дополнительное введение растительных гормонов уже не могло оказывать стимулирующего действия.

Таким образом, показано, что наличие в составе препарата бентонита кальция (БК) и гумата (Г), образующих бентонито-гуматовый комплекс (закрепляющий аллелотоксины из почв и снижающий их поступление в семена), АПД (предотвращающего закрепление стимулирующих БАВ из почв на сорбционном бентонито-гуматовом комплексе) и введение в препарат по отдельности различных стимулирующих компонентов (гормонов роста растений, субстратов дыхательного метаболизма и веществ-стимуляторов широкого спектра действия) для большинства БАВ значительно увеличивает стимуляцию начального этапа развития растений из семян. Были обнаружены достаточно значительные эффекты стимуляции (от 20 до 50%) [21, 23], но необходимо было проверить, нельзя ли добиться большей стимуляции.

Поэтому представляло интерес изучить влияние на стимуляцию введения в сорбционный препарат, содержащий БК, Г и АПД, одновременно нескольких различных веществ-стимуляторов.

Для внедрения в практику сельского хозяйства возникла необходимость изучить влияние на эффективность применения разработанного стимулирующего препарата в реальных производственных условиях:

• жесткости воды;

• времени, прошедшего от приготовления раствора препарата до обработки им семян;

• времени хранения обработанных препаратом семян;

• введения в раствор препарата фунгицидов;

• посева обработанных семян на различных дерново-подзолистых почвах.

ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ

В экспериментах использовали семена яровой пшеницы (Triticum) сорт “Лиза” урожая 2018 г.

Проращивали семена в образцах дерново-подзолистых почв (здесь и далее названия почв приведены по классификации почв СССР 1977 г.): окультуренная дерново-подзолистая глубоко-подзолистая глубокопахотная легкосуглинистая почва на покровных суглинках после вико-овсяной смеси (1 – ВУ) – 2018 г., после горчицы (2 – ВУ и 2* – И) – 2018 и 2019 г., после картофеля (3 – ВУ) Московская область, Чашниково – 2018 г.; дерново-неглубокоподзолистая освоенная глубокопахотная легкосуглинистая почва на покровных суглинках, подстилаемых мореной, залежь с 2015 г. (5 – ВУ и 5* – И) Московская область, Чашниково – 2019 г.; агродерново-глубокоподзолистая супесчаная на водно-ледниковых (древнеозерных) отложениях почва (9 – ВУ и 9* – И), подстилаемая с глубины 92 см бескарбонатными лёссовидными (покровными) суглинками (окрестности поймы р. Яхрома, Московская область) – 2018 и 2019 г.

В экспериментах также использовали образцы серой лесной освоенной со вторым гумусовым горизонтом высоковскипающей среднесуглинистой почвы на лёссовидных карбонатных суглинках, залежь (10 и 10*) и после пшеницы (11 и 11*) из окрестностей г. Суздаль (поля Владимирского НИИСХ) – 2019 г., а также чернозема выщелоченного среднемощного среднесуглинистого на лёссовидном суглинке, после пшеницы¹¹ Орловская область (12) – 2019 г.

Свойства дерново-подзолистых и серых лесных почв приведены в работах [16, 20].

В индексации почв приводятся цифры без звездочки с буквой И и со звездочкой с буквами ВУ. Индекс без звездочки означает, что почвенный образец готовили общепринятым в почвоведении способом – после отбора образца его доводили до воздушно-сухого состояния. Для получения из него увлажненного образца добавляли воду при тщательном перемешивании и выдерживали в таком состоянии не менее 2 нед. Индекс со звездочкой означает, что отобранный образец, содержащий влагу, хранили при комнатной температуре, поддерживая его увлажненное состояние.

Для защитного действия семян от почвенных аллелотоксинов использовали гумат калия (Г), произведенный ООО НВЦ “Агротехнологии” (Россия) из бурого угля, и бентонит кальция (БК) по ОСТ 18-49-71 (Россия). Для блокирования активных центров глино-гумусового комплекса, способных поглощать БАВ, поступающие из почвы в семена, использовали АПД, произведенный ООО “Биотех плюс” (Россия). Применяли суспензии сорбционного препарата, содержащие БК – 40 г/л, Г – 10 г/л, АПД – 12 г/л.

В качестве биологически активных веществ к сорбционным препаратам добавляли субстраты дыхательного метаболизма: янтарную (ЯК), ф-умаровую (ФК) и щавелевую (ЩК) кислоты; гормоны роста растений: препарат “Бутон”, с-одержащий 2% гиббереллина, гиббереллин 90%‑ный (Г), 6-бензиламинопурин (6-БАП), брассинолид (Брасс), содержащий 0.1% брассиностероидов; стимулятор широкого спектра действия: парааминобензойную кислоту (ПАБК). Добавляли их в обнаруженных [21, 23] оптимальных концентрациях. В качестве компонентов сорбционно-стимулирующего препарата использовали также неионогенные ПАВ: Полисорбат 20 (П-20) в концентрации 120 мг/л и полиэтиленгликоль (ПЭГ) с молекулярной массой от 400 до 20 000 у. е. в концентрации 300 мг/л. ПАВ использовали в концентрациях, соответствующих для них максимуму эффективности стимуляции.

Обработку семян проводили полусухим способом при расходе 40 литров раствора на тонну семян.

Для повышения воспроизводимости получаемых данных изучали изменение интегральной длины проростков 7.5 г семян (~200 шт.), которую определяли, используя экспресс-метод, основанный на существовании линейной зависимости между насыпным объемом проросших семян в воде и длиной их проростков [22].

Для определения воздействия почв на развитие семян (аллелотоксичности почв) проводили сравнительные испытания по изменению суммарной длины проростков семян в песке и почвах, принимая за 100% развитие семян в песке и рассчитывая относительно этого значения замедления или ускорения развития проростков семян почвой.

Применяли шестикратную повторность с последующей статистической обработкой результатов. В связи с использованием в одном опыте 1000–1200 семян удавалось минимизировать ошибку, связанную с разным качеством семян до 7%.

Для моделирования жесткости воды в дистиллированную воду добавляли нитрат кальция.

Для изучения влияния времени хранения приготовленных растворов и обработанных семян на эффект стимуляции их выдерживали при температуре 27–28°С.

Для изучения влияния фунгицидов на начальную стадию развития растений из семян использовали фунгициды: Тебу-60 (тебуконазол, 60 г/л), Раксил Ультра (тебуконазол, 120 г/л), Ламадор (протиоконазол, 250 г/л; тебуконазол, 150 г/л), Баритон (протиоконазол, 37.5 г/л; флуоксастробин, 37.5 г/л), Иншур перформ (пираклостробин, 40 г/л; тритиконазол, 80 г/л), а также биофунгицид Фитоспорин-М (Bacillus subtilis, штамм 26 Д) при рекомендуемых для их применения для предпосевной обработки семян расходах препаратов. Для биофунгицидов Алирин (Bacillus subtilis, штамм B-10 ВИЗР), Гамаир (Bacillus subtilis, штамм М-22 ВИЗР) и Глиокладин (Trichoderma harzianum, штамм 18 ВИЗР) расход препаратов был взят по аналогии с применением Фитоспорина-М. Их применяли, обрабатывая семена растворами фунгицидов или растворами, содержащими фунгицид и стимулятор.

Общую численность бактерий в дерново-подзолистой почве (9 и 9*) определяли методом прямой люминесцентной микроскопии после окраски препаратов почвенной суспензии акридином оранжевым. Длину мицелия грибов и численность спор грибов после окраски почвенной суспензии акридином оранжевым [12]. Численность сапротрофных культивируемых бактерий определяли на глюкозо-пептонно-дрожжевой (ГПД) среде классическим методом посева, таксономическую принадлежность бактерий на основании фенотипических признаков (микроморфология, особенности жизненного цикла, наличие спор и плодовых тел), окраска по Граму (тест с 3% КОН) [11, 12]. Структура бактериального комплекса (СБК) охарактеризована с использованием подходов, разработанных на кафедре биологии почв [11].

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Для увеличения стимулирующих эффектов была предпринята попытка добавлять в сорбционные препараты одновременно несколько БАВ-стимуляторов в оптимальных при их использовании с сорбционным препаратом концентрациях [21, 23].

Полученные результаты (табл. 1) свидетельствуют, что добавление нескольких БАВ к сорбционному препарату в большинстве случаев не приводит к росту величины стимуляции. Рассмотрим совместное применение фумаровой кислоты и препарата “Бутон”, содержащего гиббереллины (опыты 2, 3 и 7). Введение фумаровой кислоты в сорбционный препарат дает стимуляцию 24%, препарата “Бутон” – 34%, а при их совместном применении величина стимуляции даже несколько уменьшается (до 31%). Аналогичный результат наблюдается при совместном использовании препарата “Бутон” с 6-бензиламинопурином (опыты 3, 5 и 8). Введение 6-БАП в сорбционный препарат дает стимуляцию 47%, препарата “Бутон” – 34%, а при их совместном применении величина стимуляции тоже несколько снижается (до 46%). При совместном применении фумаровой и парааминобензойной кислот эффект стимуляции снижается более заметно (опыты 2, 4 и 11). Введение фумаровой кислоты в сорбционный препарат дает стимуляцию 24%, ПАБК – 31%, а при их совместном использовании наблюдается уменьшение до 21%.

Увеличение числа биологически активных компонентов до трех ситуацию не изменяет (опыты 2, 4, 5, 10 и 12). Так одновременное введение в сорбционный препарат фумаровой кислоты, ПАБК и 6-БАП не приводит росту стимуляции по сравнению с использованием двух БАВ – ПАБК и 6-БАП. В случае трех БАВ стимуляция составляет 53%, а при введении в сорбционный препарат только ПАБК и 6-БАП – 55%.

Использование в составе препарата неионогенных ПАВ также принципиально не меняет ситуации (опыты 15, 20 и 21). При введении в сорбционный препарат Брассинолида наблюдается стимуляция 20%, Полисорбата-20 – 17%, а при их совместном введении в сорбционный препарат уменьшается до 14%.

Таким образом, в большинстве случаев эффекты стимуляции от отдельных БАВ, вводимых в сорбционный препарат не суммируются, и предсказать БАВ, которые нужно вводить в сорбционно-стимулирующий препарат для повышения его эффективности не представляется возможным, что хорошо иллюстрируется представленными результатами.

Однако эмпирическим путем, перебирая варианты, удалось найти БАВ, которые при совместном использовании в препарате дают эффекты большей величины, чем каждый из них в отдельности. Так введение в сорбционный препарат одновременно ПАБК и 6-бензиламнопурина (опыт 10) дает заметно больший эффект, чем использование этих БАВ в сорбционном препарате по отдельности (опыты 4 и 5).

Ранее было показано [21], что на величину стимуляции при предпосевной обработке семян сорбционными препаратами большое влияние оказывает состояние почв, в которые высевают обработанные семена – чем выше ингибирующая способность почв, тем выше эффект стимуляции. Поэтому, на наш взгляд, более корректно изучать влияние стимуляторов на почвах, оказывающих минимальное ингибирующее (лучше стимулирующее) воздействие на прорастание семян. Так как в этом случае препарат будет всегда лучше действовать на почвах, оказывающих на развитие семян меньшее стимулирующее и большее ингибирующее влияние.

В связи с этим дальнейшие эксперименты по поиску стимуляторов проводили на почве 9* – И, которая стимулирует, а не угнетает прорастание семян и развитие их проростков по сравнению с инертным субстратом.

Из проведенных экспериментов следует, что в этих условиях стимулирующие эффекты становятся заметно меньше. Так введение в сорбционный препарат ПАБК и 6-бензиламнопурина (опыт 27) дает стимуляцию только 25, а не 55%, как мы наблюдали в опыте 10.

Дальнейшие исследования показали, что к повышению стимуляции приводит добавление к сорбционному препарату гиббереллинов и Полисорбата-20 (опыт 17), а также гиббереллинов и брассинолида (опыт 23).

Попытки заменить Полисорбат-20 на Полисорбат-60 или Полисорбат-80 привели к заметному снижению эффекта стимуляции. Учитывая это, можно предположить, что эффективность использования полисорбатов основывается не только на поверхностной активности, но и на их индивидуальном влиянии на биохимические процессы, протекающие в семенах при прорастании.

Лучшие результаты при создании сорбционно-стимулирующего препарата удается получить, вводя в сорбционный препарат гиббереллины и полиэтиленгликоль (опыт 19). В результате эффект стимуляции возрастает до 36%. При этом молекулярная масса ПЭГ не оказывает значимого влияния на эффект стимуляции, а оптимальная концентрация ПЭГ в сорбционно-стимулирующем препарате составляет 300 мг/л.

Таким образом, в результате проведенных в первой части работы экспериментов удалось разработать комплексный сорбционно-стимулирующий препарат, включающий в свой состав бентонит кальция, гумат калия, автолизат пивных дрожжей, гиббереллин и полиэтиленгликоль, который оказывает заметное стимулирующее влияние на раннюю стадию развития растений из семян яровой пшеницы.

На следующем этапе исследования было изучено влияние технологических параметров приготовления раствора сорбционно-стимулирующего препарата (ССП) на эффективность его использования: жесткости воды, в которой готовят препарат, времени, прошедшего от приготовления раствора препарата до обработки им семян, и времени, прошедшего от обработки семян препаратом до их посева.

Из полученных данных (табл. 2) хорошо видно, что жесткость воды не влияет на эффективность применения препарата, так же как и время, прошедшее от обработки семян до посева. Последнее имеет большое значение, так как позволяет проводить обработку семян заранее, а не в период сева, когда в условиях производства это представляет определенные сложности.

Обращает на себя внимание, что обработку следует проводить не сразу после приготовления раствора препарата, а через несколько часов. Связано это, по-видимому, с тем, что нужно время для набухания и распада крупных глинистых частиц бентонита до мелких. Необходимо также отметить, что препарат не теряет своей эффективности при хранении раствора в течение недели.

Применение фунгицидов, используемых для предпосевной обработки семян совместно с сорбционно-стимулирующим препаратом, не оказывает значимого негативного влияния на эффект стимуляции в сравнении с семенами обработанными только фунгицидами (табл. 3). Величина эффекта от действия сорбционно-стимулирующего препарата сохраняется при использовании химических и биологических фунгицидов. Все это открывает возможности для внедрения сорбционно-стимулирующего препарата в практику сельского хозяйства.

На последнем этапе работы было необходимо проверить эффективность использования разработанного препарата на различных почвах. Причем лабораторные эксперименты должны быть максимально приближены к реальным условиям, в которых обязательным этапом производственного процесса является протравливание семян фунгицидами.

Как хорошо видно из представленных результатов (табл. 4), эффективность действия разработанного стимулятора сохраняется на всех изученных образцах почв вне зависимости от их типа, предыстории и аллелотоксичности. Причем при использовании стимулятора совместно с фунгицидом эффект стимуляции проявляется всегда сильнее.

Из представленных в таблице данных обращает на себя внимание то, что аллелотоксичность почв, которые проходили стадию высушивания практически всегда выше аллелотоксичности тех же почвенных образцов, которые хранили, поддерживая их во влажном состоянии. Этот вопрос с методической точки зрения может быть достаточно важен при изучении аллелотоксичности почв, так как в некоторых случаях аллелотоксичность может оказывать заметное влияние на действие стимуляторов, например сорбционных [21]. Важно это также и при поиске корреляций между аллелотоксичностью почв и урожайностью растений, выращиваемых на этих почвах. Так как всегда встает вопрос о хранении и подготовке для исследования почвенных образцов, чтобы получаемые результаты были корректны. Кроме того, обнаружение потенциальной и актуальной аллелотоксичности²² расширяет наши экспериментальные возможности, позволяя проводить исследования на одном почвенном образце, имеющем идентичные предысторию и агрохимические свойства, но отличающемся (иногда заметно) по аллелотоксичности.

На наш взгляд, наиболее вероятными является два объяснения этого явления. Первое состоит в том, что при прохождении стадии высушивания происходит частичная гибель почвенных микроорганизмов с последующим их развитием при увлажнении. При этом может изменяться состав почвенной микрофлоры, а это может оказывать влияние на аллелотоксичность.

Для проверки этого объяснения наблюдаемого явления были проведены сравнительные микробиологические исследования исходного образца дерново-подзолистой почвы (9*) и образца, который был высушен и снова увлажнен (9). На этих почвенных образцах наблюдается максимальная разница в их воздействии на прорастание семян и дальнейшее развитие проростков. Полученные результаты представлены в таблицах (табл. 5–7).

Показатели общей численности бактерий в контроле (9*) и опыте (9) составляли 7.1 и 6.1 млрд клеток в 1 г почвы соответственно, длина грибного мицелия 1340 и 1007 м в 1 г почвы соответственно (табл. 5). Более высокие значения численности бактерий и длины грибного мицелия зафиксированы в контроле (9*), более низкие в варианте с высушиванием (9). Обращает на себя внимание более высокая численность спор грибов в варианте с высушиванием (9) по сравнению с контролем (9*) – 0.25 и 0.11 млрд в 1 г соответственно.

Численность сапротрофных культивируемых бактерий на ГПД среде также была больше в контроле (9*) и ниже в варианте с высушиванием (9) – 4.3 и 3.1 млн КОЕ в 1 г соответственно (табл. 6). Состав бактериального комплекса по вариантам опыта различался. Максимальное содержание грамотрицательных бактерий было в контроле (9*) – 43%, меньше содержание актиномицетов и коринеформ – 27 и 23%, еще меньше содержание споровых – 7%. В варианте с высушиванием (9) увеличивалось содержание актиномицетов и коринеформ – 30 и 33%. Значительно уменьшалось содержание грамотрицательных бактерий – 27%. Содержание споровых составляло 10%.

Выявленные закономерности в изменении структуры СБК при высушивании более четко проявляются при анализе СБК с использованием критериев доминирования. В контроле (9*) доминируют грамотрицательные бактерии, в качестве субдоминантов выступают актиномицеты и коринеформы, споровые выступают в роли минорных компонентов (табл. 7). В варианте с высушиванием почвы (9) в качестве доминантов выступают коринеформы, субдоминантами являются актиномицеты и грамотрицательные бактерии, споровые входят в группу среднего обилия. Обращает на себя внимание, что грамотрицательные бактерии в варианте с высушиванием (9) были представлены, в основном, скользящими бактериями родов Myxococcus и Polyangium. Эти бактерии обладают более высокой устойчивостью к высушиванию, чем другие грамотрицательные бактерии.

Из проведенных экспериментов по микробиологии следует, что, во-первых, показатели общей численности бактерий и длины грибного мицелия в контроле (9*) больше, чем в варианте с высушиванием (9). Численность спор, напротив, больше в варианте с высушиванием и меньше в контроле. Во-вторых, численность сапротрофных культивируемых бактерий выше в контроле (9*), ниже в варианте с высушиванием (9). В-третьих, структура сапротрофного бактериального комплекса в контроле (9*) и варианте с высушиванием (9) различались. В контроле (9*) доминируют грамотрицательные бактерии, в варианте с высушиванием (9) – коринеформы и актиномицеты. После высушивания содержание грамотрицательных бактерий значительно уменьшается.

Таким образом, высушивание приводит к снижению численности микроорганизмов в почве, и это не позволяет объяснить рост аллелотоксичности при высушивании почв с позиции изменения количества почвенных микроорганизмов, выделяющих аллелотоксины. Невозможно также объяснить наблюдаемое явление, полагая, что микроорганизмы используют аллелотоксины в качестве источников углерода, так как во времени аллелотоксичность исходных почв практически не изменяется.

Второе объяснение увеличения аллелотоксичности почв состоит в том, что при высушивании почв в них происходит структурный переход, в результате которого гидрофобные участки частиц матрицы почвенных гелей меняют свое положение в пространстве так, чтобы увеличить свой контакт с воздухом. Во влажном почвенном образце термодинамически выгодно, чтобы гидрофобные участки поверхности частиц минимизировали свои контакты с водой, содержащейся в почвах, ориентируясь друг к другу. При увлажнении воздушно-сухих почвенных образцов происходит обратный структурный переход с ориентацией гидрофобных участков почвенных частиц друг к другу. Однако этот переход требует энергии активации и не проходит до конца. В результате большая часть гидрофобных участков частиц, образующих матрицу почвенных гелей (по сравнению с исходным влажным почвенным образцом), контактирует с водой. Учитывая, что аллелотоксины имеют большей частью гидрофобную природу [3], это приводит к выходу дополнительного количества закрепленных почвенных аллелотоксинов в почвенный раствор и к повышению аллелотоксичности почв.

Таким образом, можно говорить о существовании актуальной и потенциальной аллелотоксичностей, которые могут заметно отличаться друг от друга. Первая из них характерна для отобранных влажных почвенных образцов. Вторая соответствует почвенным образцам, которые были высушены до воздушно-сухого состояния с последующим увлажнением и выдержкой до прихода в равновесное состояние.

Из этого следует практически значимый вывод, что для получения правильных представлений о воздействии почвенных аллелотоксинов на растения необходимо использовать для исследования почвенные образцы с актуальной аллелотоксичностью.

ВЫВОДЫ

1. Разработан сорбционно-стимулирующий препарат, включающий в свой состав бентонит кальция, гумат калия, автолизат пивных дрожжей, гиббереллин и полиэтиленгликоль, который эффективно стимулирует на различных почвах развитие растений на ранних стадиях из семян яровой пшеницы.

2. Показано, что:

– высокая жесткость воды не оказывает негативного влияния на действие стимулятора;

– раствор стимулятора надо готовить за 4–6 ч до применения, и он может храниться более недели, не теряя своих стимулирующих свойств;

– семена, обработанные раствором стимулятора, могут храниться более двух месяцев без потери эффективности действия стимулятора;

– предпосевная обработка семян раствором стимулятора совместно с биологическими и химическими фунгицидами не снижает эффект действия стимулятора.

3. Установлено, что высушивание почвенных образцов до воздушно-сухого состояния заметно увеличивает аллелотоксичность почв, что, по-видимому, связано со структурным переходом в матрице почвенных гелей.