Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова, 2023, T. 109, № 12, стр. 1920-1934
Влияние принудительных беговых нагрузок на содержание изоформ Na+/K+-ATФазы и одновалентных катионов в скелетных мышцах мышей с моделью сахарного диабета II типа
А. Н. Захарова 1, К. Г. Милованова 1, А. А. Орлова 1, Е. Ю. Дьякова 1, Ю. Г. Калинникова 1, О. В. Коллантай 1, И. Ю. Шувалов 1, А. В. Чибалин 1, Л. В. Капилевич 1, *
1 Национальный исследовательский Томский государственный университет
Томск, Россия
* E-mail: kapil@yandex.ru
Поступила в редакцию 05.09.2023
После доработки 20.10.2023
Принята к публикации 31.10.2023
- EDN: CHNRKQ
- DOI: 10.31857/S0869813923120142
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Аннотация
Изучено влияние принудительного бега в течение 1 ч ежедневно на протяжении 4 недель на содержание изоформ Na+/K+-ATФазы и одновалентных катионов в скелетных мышцах мышей с моделью сахарного диабета II типа (СД II). Для формирования модели заболевания использовалась высокожировая диета, физические нагрузки в виде принудительного бега проводились в течение 4 недель. Содержание изоформ Na+/K+-ATФазы и ионов Nа+ и К+ в мышечной ткани m. gastrocnemius определялась методом вестерн-блоттинга и атомной абсорбционной спектрофотомерии соответственно. Показано, что формирование СД II у мышей сопровождается изменением содержания изоформ альфа 1 и 2 Na+/K+-АТФаз-ы в мышечной ткани. Эффект принудительных беговых нагрузок на содержание Na+/K+-АТФазы в мышечной ткани выражен значительно и прежде всего различается в возрастных группах. Также можно отметить определенную зависимость влияния принудительных беговых нагрузок на содержание данного фермента от времени их применения. У молодых животных изменения концентраций одновалентных катионов натрия и калия после принудительных беговых нагрузок были выражены в меньшей степени. У возрастных мышей с моделью СД на фоне принудительных нагрузок наблюдалось возрастание содержания натрия и снижение содержания калия в мышечной ткани. Обнаруженные изменения обмена одновалентных катионов в мышечной ткани мышей при СД II под влиянием принудительных беговых нагрузок могут играть роль в реализации метаболических эффектов физической активности.
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Список литературы
Groop LC, Eriksson JG (1992) The etiology and pathogenesis of non-insulin-dependent diabetes. Ann Med 24(6): 483–489. https://doi.org/10.1002/dmr.5610090503
Fujimaki S, Kuwabara T (2017) Diabetes-induced dysfunction of mitochondria and stem cells in skeletal muscle and the nervous system. Int J Mol Sci 18(10): 2147. https://doi.org/10.3390/ijms18102147
Højlund K (2014) Metabolism and insulin signaling in common metabolic disorders and inherited insulin resistance. Dan Med J 61(7): B4890.
Nagy C, Einwallner E (2018) Study of In vivo glucose metabolism in high-fat diet-fed mice using oral glucose tolerance test (OGTT) and insulin tolerance test (ITT). J Vis Exp 7(131): 1–12. https://doi.org/10.3791/56672
Huh JY (2018) The role of exercise-induced myokines in regulating metabolism. Arch Pharm Res 41(1): 14–29. https://doi.org/10.1007/s12272-017-0994-y
Zakharova AN, Milovanova KG, Orlova, AA, Dyakova EY, Kalinnikova JG, Kollantay OV, Shuvalov IY, Chibalin AV, Kapilevich LV (2023) Effects of Treadmill Running at Different Light Cycles in Mice with Metabolic Disorders. Int J Mol Sci 24: 15132. https://doi.org/10.3390/ijms242015132
Winzell MS, Ahren B (2004) The high-fat diet-fed mouse: a model for studying mechanisms and treatment of impaired glucose tolerance and type 2 diabetes. Diabetes 53(3): S215–S219. https://doi.org/10.2337/diabetes.53.suppl_3.s215
Meneilly GS (2001) Pathophysiology of diabetes in the elderly. In: Diabetes in old age. John Wiley & Sons. 155–164. https://doi.org/10.1002/0470842326.ch2
Brandt C, Pedersen BK (2010) The role of exercise-induced myokines in muscle homeostasis and the defense against chronic diseases. J Biomed Biotechnol 520258. https://doi.org/10.1155/2010/520258
Hansen JS, Zhao X, Irmler M, Liu X, Hoene M, Scheler M, Li Y, Beckers J, Hrabĕ de Angelis M, Häring HU, Pedersen BK, Lehmann R, Xu G, Plomgaard P, Weigert C (2015) Type 2 diabetes alters metabolic and transcriptional signatures of glucose and amino acid metabolism during exercise and recovery. Diabetologia 58(8): 1845–1854. https://doi.org/10.1007/s00125-015-3584-x
Karstoft K, Pedersen BK (2016) Exercise and type 2 diabetes: focus on metabolism and inflammation. Immunol Cell Biol 94: 146–150. https://doi.org/10.1038/icb.2015.101
Kapilevich L, Zakharova A, Kabachkova A, Kironenko T, Milovanova K, Orlov S (2017) Different impact of physical activity on plasma myokines content in athletes and untrained volunteers. FEBS J 284(1): 370–373.
Kapilevich LV, Zakharova AN, Kabachkova AV, Kironenko TA, Orlov SN (2017) Dynamic and static exercises differentially affect plasma cytokine content in elite endurance- and strength-trained athletes and untrained volunteers. Front Physiol 30(8): 35. https://doi.org/10.3389/fphys.2017.00035
Jurkat-Rott K, Fauler M, Lehmann-Horn F (2006) Ion channels and ion transporters of the transverse tubular system of skeletal muscle. J Muscle Res Cell Motil 27: 275–290. https://doi.org/10.1007/s10974-006-9088-z
Sejersted OM, Sjogaard G (2000) Dynamics and consequences of potassium shifts in skeletal muscle and heart during exercise. Physiol Rev 80: 1411–1481. https://doi.org/10.1152/physrev.2000.80.4.1411
McDonough AA, Thompson CB, Youn JH (2002) Skeletal muscle regulates extracellular potassium. Am J Physiol Ren Physiol 282: F967–F974. https://doi.org/10.1152/ajprenal.00360.2001
McKenna MJ, Bangsbo J, Renaud JM (2008) Muscle K+, Na+, and Cl– -disturbances and Na-K pump inactivation: implications for fatigue. J Appl Phys 104: 288–295. https://doi.org/10.1152/japplphysiol.01037.2007
Murphy KT, Nielsen OB, Clausen T (2008) Analysis of exerciseinduced Na+-K+ exchange in rat skeletal muscle. Exp Physiol 93: 1249–1262. https://doi.org/10.1113/expphysiol.2008.042457
Cairns SP, Lindinger MI (2008) Do multiple ionic interactions contribute to skeletal muscle fatigue? J Physiol 586: 4039–4054. https://doi.org/10.1113/jphysiol.2008.155424
Orlov SN, Koltsova SV, Kapilevich LV, Gusakova SV, Dulin NO (2015) KCC1 and NKCC2: The pathogenetic role of cation-chloride cotransporters in hypertension. Genes & Diseas 2: 186–196. https://doi.org/10.1016/j.gendis.2015.02.007
Smolyaninova LV, Koltsova SV, Sidorenko SV, Orlov SN (2017) Augmented gene expression triggered by Na+,K+-ATPase inhibition: Role of ${\text{Ca}}_{i}^{{2 + }}$-mediated and – independent excitation-transcription coupling. Cell Calcium 68: 5–13. https://doi.org/10.1016/j.ceca.2017.10.00210.1016/j.ceca.2017.10.002
Sidorenko S, Klimanova E, Milovanova K, Lopina OD, Kapilevich LV, Chibalin AV, Orlov SN (2018) Transcriptomic changes in C2C12 myotubes triggered by electrical stimulation: Role of ${\text{Ca}}_{i}^{{2 + }}$-mediated and ${\text{Ca}}_{i}^{{2 + }}$-independent signaling and elevated [Na+]i/[K+]i ratio. Cell Calcium 76: 72–86. https://doi.org/10.1016/j.ceca.2018.09.00710.1016/j.ceca.2018.09.007
Kapilevich LV, Kironenko TA, Zaharova AN (2015) Skeletal muscle as an endicrine organ: role of [Na+]i/[K+]i-mediated excitation-transcription coupling. Genes & Diseas 2: 328–336. https://doi.org/10.1016/j.gendis.2015.10.001
Lauritzen HP, Brandauer J, Schjerling P (2013) Contraction and AICAR stimulate IL-6 vesicle depletion from skeletal muscle fibers in vivo. Diabetes 62: 3081–3092. https://doi.org/10.2337/db12-1261
Jannot MF, Dufayet De La Tour DT, Coste P (2002) Na/K ATPase activity in Diabetic Patient Metabolism. Diabetes mellitus 51(3): 284–291.
Shamansurova ZM, Mukhamedova FA, Tsoi AG, Tashmanova AB, Alieva AV, Akhrarova NA (2009) Abnormal Na-K-ATPase activity in erythrocytes from patients with diabetes mellitus. Diabetes mellitus 12(2): 55–57. https://doi.org/10.14341/2072-0351-5399
Chistyakova OV, Sukhov IB, Dobretsov MG, Kubasov IV (2020) Study of Na/K-ATPase activity in the myocardium of rats under experimental conditions of prediabetes and diabetes mellitus. J Evol Biochem Physiol 56(2): 166–168. https://doi.org/10.1134/S0022093020020118
Kapilevich LV, Milovanova KG, Sidorenko SV, Fedorov DA, Kironenko TA, Zakharova AN, Dyakova EYu, Orlov SN (2020) Influence of dynamic and static loads on the content of sodium and potassium in mouse skeletal muscles. Bull Exp Biol Med 169(1): 4–7. https://doi.org/10.1007/s10517-020-04811-y
Klimanova EA, Sidorenko SV, Tverskoi AM, Shiyan AA, Smolyaninova LV, Kapilevich LV, Gusakova SV, Maksimov GV, Lopina OD, Orlov SN (2019) Search for Intracellular Sensors Involved in the Functioning of Monovalent Cations as Secondary Messengers. Biochemistry (Moscow) 84(11): 1280–1295. https://doi.org/10.1134/S0006297919110063
Shiyan AA, Sidorenko SV, Fedorov D, Klimanova EA, Smolyaninova LV, Kapilevich LV, Grygorczyk R, Orlov SN (2019) Elevation of intracellular Na+ contributes to expression of early response genes triggered by endothelial cell shrinkage. Cell Physiol Biochem 53(4): 638–647. https://doi.org/10.33594/000000162
Smolyaninova LV, Shiyan AA, Kapilevich LV, Lopachev AV, Fedorova TN, Klementieva TS, Moskovtsev AA, Kubatiev AA, Orlov SN (2019) Transcriptomic changes triggered by ouabain in rat cerebellum granule cells: Role of α3- and α1-Na+,K+-ATPase-mediated signaling. PLoS One 14(9): e0222767. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0222767
Kapilevich LV, Zakharova AN, Dyakova EYu, Kalinnikova JG, Chibalin AV (2019) Mice experimental model of diabetes mellitus type ii based on high fat diet. Bull Siber Med 18(3): 53–61. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-3-53-61
Zakharova AN, Kalinnikova Y, Negodenko ES, Orlova AA, Kapilevich LV (2020) Experimental simulation of cyclic training loads. Teor Prakt Fizich Kult 10: 26–27.
Clausen T (2013) Quantification of Na, K pumps and their transport rate in skeletal muscle: Functional significance. J General Physiol 142(4): 327–345. https://doi.org/10.1085/jgp.201310980
Raue U, Trappe TA, Estrem ST, Qian H-R, Helvering LM, Smith RC, Trappe S (2012) Transcriptomic signature of resistance exercise adaptations: mixed muscle and fiber type specific profiles in young and old adults. J Appl Physiol 112: 1625–1636. https://doi.org/10.1152/japplphysiol.00435.2011
McKenna MJ, Bangsbo J, Renaud JM (2008) Muscle K+, Na+, and Cl– disturbances and Na+-K+ pump inactivation: implications for fatigue. J Appl Phys 104: 288–295. https://doi.org/10.1152/japplphysiol.01037.2007
Koltsova SV, Trushina Y, Haloui M, Akimova OA, Tremblay J, Hamet P, Orlov SN (2012) Ubiquitous [Na+]i/[K+]i-sensitive transcriptome in mammalian cells: evidence for [Ca2+]i-independent excitation-transcription coupling. PLoS One 7: e38032. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0038032
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова