Биоорганическая химия, 2023, T. 49, № 4, стр. 422-433
Получение синтетических аналогов гликолипидов, содержащих тетрасахарид А (тип 2)
Д. О. Петракова 1, М. С. Савченко 1, И. С. Попова 1, А. Б. Тузиков 1, А. С. Парамонов 1, А. О. Чижов 2, Н. В. Бовин 1, И. М. Рыжов 1, *
1 ФГБУН “Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова” РАН
117997 Москва, ул. Миклухо-Маклая, 16/10, Россия
2 ФГБУН “Институт органической химии им. Н.Д. Зелинского” РАН
119991 Москва, Ленинский просп., 47, Россия
* E-mail: imryzhov@gmail.com
Поступила в редакцию 30.11.2022
После доработки 12.12.2022
Принята к публикации 14.12.2022
- EDN: ODKLJF
- DOI: 10.31857/S013234232304036X
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Аннотация
Гликолипиды – компоненты клеточной мембраны, способные к транспорту как из нее, так и в обратном направлении – из межклеточного пространства в мембрану. Последнее открывает возможность изучать функционирование гликолипидов путем их встраивания в мембрану клетки. На практике для такой цели намного удобнее использовать не природные гликолипиды, выделение которых представляет собой отдельную задачу, а их синтетические аналоги, т.к. можно варьировать их свойства, модифицируя структуру, а также вводить в их состав другие биоактивные компоненты, помимо гликанов. В данной работе описан синтез восьми синтетических аналогов гликолипидов, содержащих одну и ту же углеводную часть – тетрасахарид А (тип 2), но отличающихся строением липидной части, а также синтетических аналогов гликолипидов, несущих несколько одинаковых углеводных фрагментов. Полученная серия синтетических аналогов гликолипидов открывает возможность исследовать презентацию гликанового антигена в его узнавании антителами в условиях реального микроокружения (гликокаликса) живой клетки.
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Список литературы
Reitsma S., Slaaf D.W., Vink H., Van Zandvoort M.A.M.J., Oude Egbrink M.G.A. // Pflugers Arch. Eur. J. Physiol. 2007. V. 454. P. 345–359. https://doi.org/10.1007/s00424-007-0212-8
Rapoport E.M., Khasbiullina N.R., Komarova V.A., Ryzhov I.M., Gorbatch M.M., Tuzikov A.B., Khaidukov S.V., Popova I.S., Korchagina E.Y., Henry S.M., Bovin N.V. // Biochim. Biophys. Acta Biomembr. 2021. V. 1863. P. 183645. https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2021.183645
Marcus D.M., Cass L.E. // Science. 1969. V. 164. P. 553–555. https://doi.org/10.1126/science.164.3879.553
Korchagina E., Tuzikov A., Formanovsky A., Popova I., Henry S., Bovin N. // Carbohydr. Res. 2012. V. 356. P. 238–246. https://doi.org/10.1016/j.carres.2012.03.044
Miller-Podraza H. // Chem. Rev. 2000. V. 100. P. 4663–4681. https://doi.org/10.1021/cr990347o
Koscielak J. // Transfus. Med. 2001. V. 11. P. 267–279. https://doi.org/10.1046/j.1365-3148.2001.00317.x
Karlsson H., Johansson L., Miller-Podraza H., Karlsson K.A. // Glycobiology. 1999. V. 9. P. 765–778. https://doi.org/10.1093/glycob/9.8.765
Morales-Serna J.A., Boutureira O., Díaz Y., Matheu M.I., Castillón S. // Carbohydr. Res. 2007. V. 342. P. 1595–1612. https://doi.org/10.1016/j.carres.2007.03.028
Korchagina E.Y., Henry S.M. // Biochem. 2015. V. 80. P. 857–871. https://doi.org/10.1134/S0006297915070068
Frame T., Carroll T., Korchagina E., Bovin N., Henry S. // Transfusion. 2007. V. 47. P. 876–882. https://doi.org/10.1111/j.1537-2995.2007.01204.x
Henry S. // ISBT Sci. Ser. 2020. V. 15. P. 303–309. https://doi.org/10.1111/voxs.12545
Ryzhov I.M., Bovin N.V. // Mendeleev Commun. 2019. V. 29. P. 597–612. https://doi.org/10.1016/j.mencom.2019.11.001
Ryzhov I.M., Korchagina E.Y., Popova I.S., Tyrtysh T.V., Paramonov A.S., Bovin N.V. // Carbohydr. Res. 2016. V. 430. P. 59–71. https://doi.org/10.1016/j.carres.2016.04.029
Ryzhov I.M., Tuzikov A.B., Perry H., Korchagina E.Y., Bovin N.V. // ChemBioChem. 2019. V. 20. P. 131–133. https://doi.org/10.1002/cbic.201800289
Barr K., Korchagina E., Ryzhov I., Bovin N., Henry S. // Transfusion. 2014. V. 54. P. 2477–2484. https://doi.org/10.1111/trf.12661
Perry H., Bovin N., Henry S. // Transfusion. 2019. V. 59. P. 2131–2140. https://doi.org/10.1111/trf.15247
Lee R.T., Lee, Y.C. // Bioconjug. Chem. 1997. V. 8. P. 762–765. https://doi.org/10.1021/bc9700796
Chiu S.W., Jakobsson E., Mashl R.J., Scott H.L. // Biophys. J. 2002. V. 83. P. 1842–1853. https://doi.org/10.1016/S0006-3495(02)73949-0
Smondyrev A.M., Berkowitz M.L. // Biophys. J. 1999. V. 77. P. 2075–2089. https://doi.org/10.1016/S0006-3495(99)77049-9
Henry S., Williams E., Barr K., Korchagina E., Tuzikov A., Ilyushina N., Abayzeed S.A., Webb K.F., Bovin N. // Sci. Rep. 2018. V. 8. P. 2845. https://doi.org/10.1038/s41598-018-21186-3
Tyrtysh T.V., Korchagina E.Y., Ryzhov I.M., Bovin N.V. // Carbohydr. Res. 2017. V. 449. P. 65–84. https://doi.org/10.1016/j.carres.2017.06.014
Азев В.Н., Байдакова Л.К., Чулин А.Н., Тузиков А.Б., Кислицин П.Г., Молчанов М.В., Мирошников А.И. // Биоорг. химия. 2023. Т. 49. № 4. С. 411–421. https://doi.org/10.31857/S0132342323040279
Meloncelli P.J., Lowary T.L. // Carbohydr Res. 2010. V. 345. P. 2305–2322. https://doi.org/10.1016/j.carres.2010.08.012
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Биоорганическая химия