Биоорганическая химия, 2023, T. 49, № 5, стр. 488-493

Динамика изменений запасных липидов при восстановлении частично обесцвеченного коралла Sinularia heterospiculata

Т. В. Сикорская 1*, Д. Д. Солодий 12, Е. В. Маськин 12

1 Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жирмунского Дальневосточного отделения РАН
690041 Владивосток, ул. Пальчевского, 17, Россия

2 Дальневосточный федеральный университет, кафедра биохимии и биотехнологии, Институт Мирового океана
690922 Владивосток, п. Аякс, 10, Россия

* E-mail: miss.tatyanna@yandex.ru

Поступила в редакцию 09.11.2022
После доработки 15.11.2022
Принята к публикации 16.11.2022

Аннотация

В связи с глобальным потеплением коралл теряет симбиотических динофлагеллят, что приводит к его обесцвечиванию. Исследования по восстановлению кораллов имеют первостепенное значение для сохранения экосистемы коралловых рифов. Липидомный подход может предоставить детальную информацию о процессах, протекающих в организме коралла при обесцвечивании и восстановлении. С помощью сверхкритической флюидной хроматографии в сочетании с масс-спектрометрией была изучена динамика изменений профиля молекулярных видов основных классов запасных липидов триацилглицеридов (ТГ) и моноалкилдиацилглицеридов (МАДАГ) в процессе восстановления октокоралла Sinularia heterospiculata после теплового стресса (32°С). Показано, что после перенесенного теплового стресса МАДАГ играют ключевую роль в энергетическом балансе организма S. heterospiculata. При стрессе S. heterospiculata в первую очередь расходовал насыщенные молекулярные виды МАДАГ. Изменения в профиле молекулярных видов ТГ происходили только на 16-е сутки эксперимента. Вероятно, при восстановлении после перенесенного стресса октокоралл S. heterospiculata меняет энергетическую стратегию, поэтому происходит перестройка качественного состава запасных липидов.

Ключевые слова: обесцвечивание кораллов, октокораллы, липидомика, хромато-масс-спектрометрия, запасные липиды

Список литературы

  1. Spalding M.D., Grenfell A.M. // Coral Reefs. 1997. V. 16. P. 225–230. https://doi.org/10.1007/s003380050078

  2. Fabricius K., Alderslade P. // Soft Corals and Sea Fans: a Comprehensive Guide to the Tropical Shallow Water Genera of the Central-West Pacific, the Indian Ocean and the Red Sea. Townsville, Australia: Australian Institute of Marine Science, 2001. P. 77–103.

  3. Rowley S.J., Robert T.E., Coleman R.R., Spalding H.L., Joseph E., Dorricott M.K.L. // Pohnpei, Federated States of Micronesia. In: Mesophotic Coral Ecosystems / Eds. Loya Y., Puglise K.A., Bridge T.C.L. Springer International Publishing, Cham, 2019. V. 12. P. 301–320. https://doi.org/10.1007/978-3-319-92735-0_17

  4. McLachlan R.H., Price J.T., Solomon S.L., Grottoli A.G. // Coral Reefs. 2020. V. 39. P. 885–902. https://doi.org/10.1007/s00338-020-01931-9

  5. Oliver T.A., Palumbi S.R. // Coral Reefs. 2011. V. 30. P. 429–440. https://doi.org/10.1007/s00338-011-0721-y

  6. Yamashiro H., Oku H., Higa H., Chinen I., Sakai K. // Comp. Biochem. Physiol. B Biochem. Mol. Biol. 1999. V. 122. P. 397–407. https://doi.org/10.1016/S0305-0491%2899%2900014-0

  7. Imbs A.B., Dang L.P.T., Nguyen K.B. // PLoS One. 2019. V. 14. e0215759. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0215759

  8. Hamoutene D., Puestow T., Miller-Banoub J., Wareham V. // Coral Reefs. 2008. V. 27. P. 237–246. https://doi.org/10.1007/s00338-007-0318-7

  9. Imbs A.B., Ermolenko E.V., Grigorchuk V.P., Dang L.T.P. // Coral Reefs. 2021. V. 40. P. 719–734. https://doi.org/10.1007/s00338-021-02073-2

  10. Sikorskaya T.V., Ermolenko E.V., Efimova K.V. // Coral Reefs. 2022. V. 41. P. 277–291. https://doi.org/10.1007/s00338-022-02222-1

  11. Imbs A.B. // Russ. J. Mar. Biol. 2013. V. 39. P. 153–168. https://doi.org/10.1134/s1063074013030061

  12. Yamashiro H., Oku H., Onaga K. // Fisheries Science. 2005. V. 71. P. 448–453. https://doi.org/10.1111/j.1444-2906.2005.00983.x

  13. Sikorskaya T.V., Ermolenko E.V., Imb, A.B. // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2020. V. 524. 151295. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2019.151295

  14. Imbs A.B. // Biochem. Syst. Ecol. 2014. V. 54. P. 213–218. https://doi.org/10.1016/j.bse.2014.01.016

  15. Imbs A.B., Latyshev N.A., Dautova T.N., Latypov Y.Y. // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2010. V. 409. P. 65–75. https://doi.org/10.3354/meps08622

  16. Imbs A.B., Yakovleva I.M., Pham L.Q. // Fisheries Science. 2010. V. 76. P. 375–380. https://doi.org/10.1007/s12562-009-0213-y

  17. Joseph J.D. // Prog. Lipid Res. 1979. V. 18. P. 1–30. https://doi.org/10.1016/0163-7827(79)90002-X

  18. Sikorskaya T.V., Ermolenko E.V., Boroda A.V., Ginanova T.T. // Comp. Biochem. Physiol. B Biochem. Mol. Biol. 2021. V. 255. P. 110609. https://doi.org/10.1016/j.cbpb.2021.110609

  19. Grottoli A.G., Warner M.E., Levas S.J., Aschaffenburg M.D., Schoepf V., McGinley M., Baumann J., Matsui Y. // Global Change Biology. 2014. V. 20. P. 3823–3833. https://doi.org/10.1111/gcb.12658

  20. Folch J., Lees M., Sloane-Stanley G.A. // J. Biol. Chem. 1957. V. 226. P. 497–509. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(18)64849-5

  21. Byrdwell W.C. // Lipids. 2005. V. 40. P. 383–417. https://doi.org/10.1007/s11745-006-1398-9

  22. Sikorskaya T.V., Efimova K.V., Imbs A.B. // Phytochemistry. 2021. V. 181. 112579. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2020.112579

Дополнительные материалы отсутствуют.