Кристаллография, 2023, T. 68, № 6, стр. 854-858
Предварительное рентгеновское исследование кристаллов, полученных при сокристаллизации гипоксантин-гуанинфосфорибозилтрансферазы из Escherichia coli и производных пиразин-2-карбоксамида
Ю. А. Абрамчик 1, 2, *, Е. А. Заяц 1, В. И. Тимофеев 2, 3, М. Б. Шевцов 4, М. А. Костромина 1, И. В. Фатеев 1, Д. О. Юровская 1, А. А. Каранов 1, И. Д. Константинова 1, И. П. Куранова 2, 3, Р. С. Есипов 1
1 Институт биоорганической химии РАН
Москва, Россия
2 Институт кристаллографии им. А.В. Шубникова ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН
Москва, Россия
3 Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”
Москва, Россия
4 Московский физико-технический институт
Долгопрудный, Россия
* E-mail: ugama@yandex.ru
Поступила в редакцию 24.04.2023
После доработки 24.04.2023
Принята к публикации 22.05.2023
- EDN: ZZVSQF
- DOI: 10.31857/S002347612360012X
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Аннотация
Создан высокоэффективный штамм-продуцент Escherichia coli C3030/pET23d+-EcHGPRT, позволяющий получать рекомбинантную гипоксантин-гуанинфосфорибозилтрансферазу из E. coli (EcHGPRT) в растворимой форме. Разработана методика выделения и очистки рекомбинантного белка. Определена удельная активность в отношении природного субстрата и производных пиразин-2-карбоксамида. Методом встречной диффузии в капилляре выращены кристаллы комплексов EcHGPRT с 3-гидроксипиразин-2-карбоксамидом (T-1105) и с 6-фтор-3-гидроксипиразин-2-карбоксамидом (T-705), пригодные для рентгеноструктурного исследования. Дифракционные наборы до разрешения соответственно 2.4 и 2.5 Å собраны на синхротроне ESRF (Франция, станция ID23-1) при температуре 100 K. Кристаллы относятся к пр. гр. P3(1)21, в независимой части ячейки содержатся две молекулы фермента.
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Список литературы
Hucke F.I.L., Bestehorn-Willmann M., Bassetto M. et al. // Virus Genes. 2022. V. 58 (3). P. 188. https://doi.org/10.1007/s11262-022-01892-x
De Vleeschauwer A.R., Lefebvre D.J., Willems T. et al. // Transbound. Emerg. Dis. 2016. V. 63 (2). P. e205. https://doi.org/10.1111/tbed.12255
Hayden F.G., Shindo N. // Curr. Opin. Infect. Dis. 2019. V. 32 (2). P. 176. https://doi.org/10.1097/QCO.0000000000000532
Delang L., Abdelnabi R., Neyts J. // Antiviral Res. 2018. V. 153. P. 85. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2018.03.003
De Clercq E., Li G. // Clin. Microbiol. Rev. 2016. V. 29 (3). P. 695. https://doi.org/10.1128/CMR.00102-15
Furuta Y., Takahashi K., Shiraki K. et al. // Antiviral Res. 2009. V. 82 (3). P. 95. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2009.02.198
Furuta Y., Komeno T., Nakamura T. // Proc. Jpn. Acad. B. Phys. Biol. Sci. 2017. V. 93 (7). P. 449. https://doi.org/10.2183/pjab.93.027
Lu J.W., Chen Y.C., Huang C.K. et al. // Antiviral Res. 2021. V. 195 P. 105188. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2021.105188
Furuta Y., Takahashi K., Fukuda Y. et al. // Antimicrob. Agents Chemother. 2002. V. 46 (4). P. 977. https://doi.org/10.1128/AAC.46.4.977-981.2002
Konstantinova I.D., Andronova V.L., Fateev I.V., Esipov R.S. // Acta Naturae. 2022. V. 14 (2). P. 16. https://doi.org/10.32607/actanaturae.11652
Negru P.A., Radu A.F., Vesa C.M. et al. // Biomed. Pharmacother. 2022. V. 147. P. 112700. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2022.112700
Hung D.T., Ghula S., Aziz J.M.A. et al. // Int. J. Infect. Dis. 2022. V. 120. P. 217. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2022.04.035
Garcia-Lledo A., Gomez-Pavon J., Gonzalez Del Castillo J. et al. // Rev. Esp. Quimioter. 2022. V. 35 (2). P. 115. https://doi.org/10.37201/req/158.2021
Naesens L., Guddat L.W., Keough D.T. et al. // Mol. Pharmacol. 2013. V. 84 (4). P. 615. https://doi.org/10.1124/mol.113.087247
Sangawa H., Komeno T., Nishikawa H. et al. // Antimicrob. Agents Chemother. 2013. V. 57 (11). P. 5202. https://doi.org/10.1128/AAC.00649-13
Shannon A., Selisko B., Le N.T. et al. // Nat. Commun. 2020. V. 11 (1). P. 4682. https://doi.org/10.1038/s41467-020-18463-z
Eads J.C., Scapin G., Xu Y. et al. // Cell. 1994. V. 78 (2). V. 325. https://doi.org/10.1016/0092-8674(94)90301-8
Schumacher M.A., Carter D., Roos D.S. et al. // Nat. Struct. Biol. 1996. V. 3 (10). P. 881. https://doi.org/10.1038/nsb1096-881
Guddat L.W., Vos S., Martin J.L. et al. // Protein Sci. 2002. V. 11 (7). P. 1626. https://doi.org/10.1110/ps.0201002
Shi W., Li C.M., Tyler P.C. et al. // Biochemistry. 1999. V. 38 (31). P. 9872. https://doi.org/10.1021/bi990664p
Focia P.J., Craig 3rd S.P., Nieves-Alicea R. et al. // Biochemistry. 1998. V. 37 (43). P. 15066. https://doi.org/10.1021/bi981052s
Shi W., Munagala N.R., Wang C.C. et al. // Biochemistry. 2000. V. 39 (23). P. 6781. https://doi.org/10.1021/bi000128t
Monzani P.S., Trapani S., Thiemann O.H., Oliva G. // BMC Struct. Biol. 2007. V. 7 (59). https://doi.org/10.1186/1472-6807-7-59
Takahashi S., Tsurumura T., Aritake K. et al. // Acta Cryst. F. 2010. V. 66 (7). P. 846. https://doi.org/10.1107/S1744309110020828
Battye T.G., Kontogiannis L., Johnson O. et al. // Acta Cryst. D. 2011. V. 67 (4). P. 271. https://doi.org/10.1107/S0907444910048675
Huchting J., Winkler M., Nasser H., Meier C. // ChemMedChem. 2017. V. 12 (9). P. 652. https://doi.org/10.1002/cmdc.201700116
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Кристаллография