Онтогенез, 2023, T. 54, № 1, стр. 105-113

Получение линий индуцированных плюрипотентных стволовых клеток ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5 с внесенной в ген MYBPC3 с помощью системы CRISPR/Cas9 мутацией p.Asn515del

С. В. Павлова a, Л. Ш. Шаяхметова a, К. А. Проняева a, А. Е. Шульгина a, С. М. Закиян a, Е. В. Дементьева a*

a ФГБНУ Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
630090 Новосибирск, просп. акад. Лаврентьева, 10, Россия

* E-mail: dementyeva@bionet.nsc.ru

Поступила в редакцию 30.11.2022
После доработки 08.12.2022
Принята к публикации 10.12.2022

Полный текст (PDF)

Аннотация

До 60% случаев гипертрофической кардиомиопатии обусловлены мутациями в генах, отвечающих за функционирование саркомеров. Однако не для всех вариантов, обнаруженных в ассоциированных с гипертрофической кардиомиопатией генах, в настоящее время известно их клиническое значение. Новые возможности для выяснения клинического значения генетических вариантов открывает использование методов редактирования нуклеотидных последовательностей. Трехнуклеотидная делеция c.1543_1545delAAC (p.Asn515del) с неясным клиническим значением была внесена в ген MYBPC3 индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК) здорового донора с помощью системы CRISPR/Cas9. В результате были получены три линии ИПСК (ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5), гомозиготные по данной мутации. Линии ИПСК с внесенной делецией имели характерную для плюрипотентных клеток человека морфологию, нормальный кариотип (46,XX), экспрессировали маркеры плюрипотентного состояния (OCT4, NANOG, TRA-1-60, SSEA-4) и были способны давать производные трех зародышевых листков при спонтанной дифференцировке. Исследование свойств кардиомиоцитов, полученных при направленной дифференцировке линий ИПСК ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5, позволит установить патогенетический вклад варианта p.Asn515del в гене MYBPC3 в развитие гипертрофической кардиомиопатии.

Ключевые слова: гипертрофическая кардиомиопатия, генетические варианты с неясным клиническим значением, индуцированные плюрипотентные стволовые клетки, система CRISPR/Cas9

ВВЕДЕНИЕ

В ходе генетического анализа пациентов с гипертрофической кардиомиопатией нами был выявлен пациент, имеющий вариант p.Asn515del (c.1543_1545delAAC) в 17-м экзоне гена MYBPC3 (Дементьева и др., 2020). Данный вариант представляет собой делецию одной аминокислоты и прежде уже обнаруживался у пациентов с гипертрофической (Поляк и др., 2016) и дилатационной (Waldmüller et al., 2011) кардиомиопатиями, однако его клиническое значение остается неясным. Поскольку большие перспективы для изучения клинического значения генетических вариантов открывает получение изогенных линий индуцированных плюрипотентных стволовых клеток, имеющих одинаковый генетический фон и различающихся лишь присутствием одной мутации, было решено внести вариант p.Asn515del в ген MYBPC3 индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК) здорового донора ICGi022-A (Malakhova et al., 2020).

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Внесение мутации p.Asn515del в ген MYBPC3 ИПСК здорового донора

Направляющую РНК и донорный олигонуклеотид выбирали с помощью ресурсов Benchling (https://www.benchling.com/) и IDT (https:// www.idtdna.com/) (табл. 1). 20 пмоль белка Cas9_NLS (NEB) и 100 пмоль направляющей РНК (Synthego) инкубировали 20 мин при комнатной температуре. Полученные рибонуклеопротеиновые комплексы вместе с 300 нг одноцепочечного донорного олигонуклеотида (Biolegio) доставляли в 1 × 105 ИПСК линии ICGi022-A с помощью электропорации на приборе Neon Transfection System (ThermoFisher Scientific) (программа: 1100 В, 30 мс, 1 импульс). После электропорации клетки переносили на слой митотически инактивированных фибробластов мыши (фидера) в среду без антибиотика с добавлением 10 нг/мл Y-27632 (Sigma-Aldrich). Через 48 ч клетки субклонировали в 96-луночные планшеты. Клоны ИПСК культивировали при 37°C в 5% CO2 в среде KnockOut DMEM, содержавшей 15% KnockOut Serum Replacement, 0.1 мМ NEAA, 1× пецициллин-стрептомицин, 1 мМ GlutaMAX (все реактивы – ThermoFisher Scientific), 0.05 мМ 2-меркаптоэтанол (Amresco) и 10 нг/мл bFGF (SCI-store). ИПСК пассировали в соотношении 1 : 10 с использованием TrypLE™ Express Enzyme (ThermoFisher Scientific) каждые 4–5 дней.

Таблица 1.

Антитела и олигонуклеотиды, использованные в исследовании

   Антитела
Антитело Разведение Производитель, кат. № RRID
Макеры плюрипотентности Mouse IgG2b anti-OCT3/4 1 : 50 Santa Cruz Biotechnology, sc-5279 RRID: AB_628051
Rabbit IgG anti-NANOG 1 : 200 ReproCELL, RCAB003P RRID: AB_2714012
Mouse IgG3 anti-SSEA4 1 : 200 Abcam, ab16287 RRID:AB_778073
Mouse IgM anti-TRA-1-60 1 : 200 Abcam, ab16288 RRID:AB_778563
Маркеры дифференцированных производных Mouse IgG2a anti-TUBB3 1 : 500 BioLegend, 801201 RRID:AB_2313773
Chicken IgG anti-MAP2 1 : 1000 Abcam, аb5392 RRID:AB_2138153
Mouse IgG2a anti-αSMA 1 : 100 Dako, M0851 RRID:AB_2223500
Rabbit IgG anti-Nkx-2.5 (H-114) 1 : 100 Santa Cruz Biotechnology, sc-14033 RRID:AB_650281
Mouse IgG1 anti-CK18 1 : 100 Abcam, ab668 RRID:AB_305647
Mouse IgG1 anti-HNF3β 1 : 100 Santa Cruz Biotechnology, sc-374376 RRID: AB_10989742
Вторичные антитела  Goat anti-Mouse IgG (H + L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 568 1 : 400 ThermoFisher Scientific, A11031 RRID:AB_144696
Goat anti-Mouse IgG3 Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 1 : 400 ThermoFisher Scientific, A21151 RRID:AB_2535784
Goat anti-Mouse IgM Heavy Chain Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 568 1 : 400 ThermoFisher Scientific, A21043 RRID:AB_2535712
Goat anti-Rabbit IgG (H + L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 1 : 400 ThermoFisher Scientific, A11008 RRID:AB_143165
Goat anti-Mouse IgG (H + L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 1 : 400 ThermoFisher Scientific, A11078 RRID: AB_2534122
Goat Anti-Chicken IgY H&L, Alexa Fluor 488 1 : 400 Abcam, ab150173 RRID:AB_2827653
   Олигонуклеотиды
Ген/локус Размер продукта Прямой/обратный праймер (5′–3′)
Детекция эписомных векторов oriP 544 пн TTCCACGAGGGTAGTGAACC/
TCGGGGGTGTTAGAGACAAC
Макеры плюрипотентности (колич. ОТ-ПЦР) OCT4 94 пн CTTCTGCTTCAGGAGCTTGG/
GAAGGAGAAGCTGGAGCAAA
NANOG 391 пн CAGCCCCGATTCTTCCACCAGTCCC/
CGGAAGATTCCCAGTCGGGTTCACC
SOX2 100 пн GCTTAGCCTCGTCGATGAAC/
AACCCCAAGATGCACAACTC
Референсный ген (колич. ОТ-ПЦР) ACTB 93 пн GCACAGAGCCTCGCCTT/ GTTGTCGACGACGAGCG
Детекция микоплазмы Ген рибосомальной 16S РНК 280 пн GGGAGCAAACAGGATTAGATACCCT/
TGCACCATCTGTCACTCTGTTAACCTC
Детекция внесения мутации p.Asn515del MYBPC3, экзон 17 253 пн CAGAGACACCACCTAATCATAG/ GAGATGAGAAGGATGAGGTTTAGG
Анализ всех внесенных мутаций MYBPC3, экзон 17 408 пн CAAATGGTGAGTTCCAGAAGC/ GAGATGAGAAGGATGAGGTTTAGG
Последовательность протоспейсера для направляющей РНК MYBPC3, экзон 17 20 н. ACACCACCTGATCATCAACG
Последовательность донорного олигонуклеотида MYBPC3, экзон 17 90 н. CGCTAGTGCACAGTGCATAGTGCCCCGCGT-CCTCCAGCATGGCCTCGATGATTAGGTGGTGTCTCTGCCCGTCCTTCTTGAACCGGTATT
Анализ предсказанных сайтов нецелевой активности системы CRISPR/Cas9 chr14:56408346-56408720 375 пн ACAGCCACAGCAATCCTAAG/ GACAGGGCCCTTTACAGAATAG
SLC9A8, интрон 14 536 пн CGGTGGAGTCCTAGCTAATAGA/ TCAGCCTCCGAGTGAAGAA
RTL8B, экзон 1 511 пн AGGAGGCACAAAGCCAATTA/ TTCTGTCCCAGATGTTGAATCC
SLC44A1, экзон 16 344 пн TTGGGAATAATTGGGCAGATAGA/ CATTAAGGCAACACAGCAGAAG

Выделение геномной ДНК

Геномную ДНК выделяли из ИПСК с использованием набора Wizard® Genomic DNA Purification Kit (Promega).

Анализ внесенных мутаций и нецелевой активности системы CRISPR/Cas9

Детекцию наличия мутации p.Asn515del в клонах ИПСК, амплификацию участков геномной ДНК, содержащих 17-й экзон гена MYBPC3 или предсказанные сайты нецелевой активности системы CRISPR/Cas9, проводили с помощью ПЦР на приборе T100 Thermal Cycler (Bio-Rad) с набором BioMaster HS-Taq PCR-Color (2×) (Biolabmix). Программы: 95°С – 3 мин; 35 циклов: 95°С – 10 с, 58°С – 15 с, 72°С – 15 с; 72°С – 5 мин (анализ мутаций) и 95°С – 3 мин; 35 циклов: 95°С – 30 с, 60°С – 30 с, 72°С – 30 с; 72°С – 5 мин (анализ нецелевой активности). Использованные праймеры приведены в табл. 1. Реакции секвенирования по Сэнгеру выполняли с использованием Big Dye Terminator V. 3.1 Cycle Sequencing Kit (Applied Biosystems) и анализировали в ЦКП “Геномика” СО РАН на генетическом анализаторе ABI 3130XL.

Выявление микоплазмы и эписом

Детекцию контаминации микоплазмами и наличия эписом в линиях ИПСК проводили с помощью ПЦР. Программы: 95°C – 3 мин; 35 циклов: 95°C – 15 с, 67°C – 15 с, 72°C – 20 с; 72°C – 5 мин (микоплазма) и 95°C – 5 мин; 35 циклов: 95°C – 15 с, 62°C – 15 с, 72°C – 15 с; 72°C – 5 мин (эписомы). Праймеры указаны в табл. 1.

Анализ кариотипа

Кариотипирование было выполнено в Томском НИМЦ согласно Международной системе цитогенетической номенклатуры хромосом человека.

Спонтанная дифференцировка in vitro

Спонтанную дифференцировку ИПСК посредством формирования эмбриоидных телец выполняли, как описано ранее (Dementyeva et al., 2021).

Иммунофлуоресцентное окрашивание

Клетки фиксировали в 4% параформальдегиде 10 мин, пермеабилизировали в 0.4% Тритон-Х100 20 мин, инкубировали с 1% БСА 30 мин (все процедуры выполнялись при комнатной температуре). С первичными антителами клетки инкубировали в течение ночи при 4°С, а со вторичными антителами – 1 ч при комнатной температуре. Использованные антитела перечислены в табл. 1. Отмывки от несвязавшихся антител проводили в PBS 2 раза по 15 мин. Ядра контрастировали с использованием DAPI (Sigma-Aldrich). Микрофотографии были получены с помощью микроскопа Nikon Eclipse Ti-E и программного обеспечения NIS Elements.

Количественная ОТ-ПЦР

РНК выделяли с помощью TRIzol Reagent (ThermoFisher Scientific) согласно протоколу производителя. Обратную транскрипцию 1–2 мкг РНК проводили с использованием ревертазы M‑MuLV (Biolabmix). Количественную ОТ-ПЦР выполняли на приборе LightCycler 480 System (Roche) с набором BioMaster HS-qPCR SYBR Blue 2× (Biolabmix). Программа: 95°C – 5 мин; 40 циклов: 95°С – 10 с, 60°С – 1 мин. Значения CT нормализовали к бета-актину с помощью ΔΔCT-метода.

STR анализ

Аутентификацию линий ИПСК осуществляла компания “Геноаналитика” (https://www.genoanalytica.ru) с помощью наборов AmpFlSTR Identifiler Direct PCR Amplification Kit (Applied Biosystems) и Investigator HDplex (QIAGEN) и прибора 3130 Genetic Analyzer (HITACHI, Applied Biosystems).

ПОЛУЧЕНИЕ И ХАРАКТЕРИСТИКА КЛЕТОЧНЫХ ЛИНИЙ

Для редактирования геномной ДНК ИПСК здорового донора была использована система CRISPR/Cas9, состоящая из белка Cas9 и направляющей РНК, включающей последовательность (спейсер), комплементарную участку 17-го экзона гена MYBPC3 (протоспейсеру). Комплексы из направляющей РНК и белка Cas9 вместе с одноцепочечным донорным олигонуклеотидом, комплементарным участку 17-го экзона гена MYBPC3 и содержащим трехнуклеотидную делецию AAC (p.Asn515del), были доставлены в клетки линии ICGi022-A с помощью электропорации. Полученные после электропорации клоны ИПСК были проанализированы посредством ПЦР с использованием пары праймеров, которая позволяет детектировать присутствие варианта p.Asn515del. В результате было отобрано 12 позитивных на наличие варианта p.Asn515del клонов. Для этих клонов было проведено секвенирование 17-го экзона гена MYBPC3. Три клона оказались гомозиготными по трехнуклеотидной делеции в гене MYBPC3 (рис. 1а). Остальные клоны в одном аллеле имели вариант p.Asn515del, а во втором – различные варианты делеций и инсерций. Три линии ИПСК, гомозиготные по варианту p.Asn515del, ICGi022-A-3, ICGi022-A-4, ICGi022-A-5, были выбраны для дальнейшей работы и детально охарактеризованы. Линии ИПСК демонстрировали характерную для плюрипотентных стволовых клеток человека морфологию (рис. 1б) и экспрессировали маркеры плюрипотентного состояния: транскрипционные факторы OCT4, NANOG и поверхностные антигены TRA-1-60 и SSEA4 (рис. 1в). Количественный анализ с помощью ПЦР в реальном времени показал, что уровень экспрессии генов плюрипотентности OCT4, NANOG и SOX2 в этих линиях сопоставим с уровнем их экспрессии в линии эмбриональных стволовых клеток человека HUES9 (рис. 1г).  G-бэндинг линий  ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5 на 8–12 пассажах показал, что клетки сохраняли нормальный кариотип – 46,XX (рис. 1д). Способность линий ИПСК давать производные трех зародышевых листков оценивалась посредством спонтанной дифференцировки в эмбриоидных тельцах. Иммунофлуоресцентное окрашивание дифференцированных клеток выявило экспрессию маркеров эктодермы (β3-тубулина (TUBB3) и MAP2), мезодермы (гладкомышечного α-актина (αSMA) и транскрипционного фактора NKX2-5), энтодермы (ядерного фактора гепатоцитов HNF3β и цитокератина 18 (СК18)) (рис. 1е). В полученных линиях ИПСК, как и в исходной линии ICGi022-A, отсутствовали эписомные векторы (рис. 1ж), а также контаминация микоплазмами (рис. 1з). Анализ коротких тандемных повторов (STR) в линиях ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5 подтвердил их идентичность исходной линии ИПСК ICGi022-A по 26 полиморфным локусам (данные доступны по запросу у авторов). С помощью секвенирования по Сэнгеру в полученных линиях ИПСК было продемонстрировано отсутствие нецелевой активности системы CRISPR/Cas9 в 4 предсказанных с помощью ресурса Benchling (https://www.benchling.com/) сайтах. Пример анализа одного из предсказанных сайтов нецелевой активности системы CRISPR/Cas9 представлен на рис. 1и.

Рис. 1.

Начало.

Рис. 1.

Характеристика линий ИПСК ICGi022-A-3, ICGi022-A-4, ICGi022-A-5 с внесенной в ген MYBPC3 мутацией p.Asn515del. (а) В трех линиях ИПСК, полученных в результате редактирования гена MYBPC3 линии ИПСК ICGi022-A, выявлена гомозиготная мутация p.Asn515del. (б) Морфология линий ИПСК ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5. Масштабная линейка – 200 мкм. (в) Экспрессия транскрипционных факторов OCT4 и NANOG и поверхностных антигенов TRA-1-60 и SSEA4 в полученных линиях ИПСК. Масштабная линейка – 100 мкм. (г) Анализ экспрессии генов OCT4, NANOG, SOX2 методом ПЦР в реальном времени в линиях ИПСК ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5. Линия эмбриональных стволовых клеток человека HUES9 была использована в качестве контроля. (д) Кариотип полученных линий ИПСК. (е) Подтверждение способности линий ИПСК ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5 дифференцироваться в производные трех зародышевых листков. Масштабная линейка – 100 мкм. (ж) ПЦР-тест показал отсутствие в полученных линиях ИПСК эписомных векторов. (з) ПЦР-тест показал отсутствие контаминации линий ИПСК микоплазмами. (и) Отсутствие нецелевой активности системы CRISPR/Cas9 в линиях ИПСК ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5 в предсказанном сайте нецелевой активности chr14:56408506-56408525 .

Паспорт линий ИПСК ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5 представлен в табл. 2, полная характеристика этих линий приведена в табл. 3.

Таблица 2.

Паспорт линий ИПСК человека ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5

Параметр Описание
Уникальный идентификатор ICGi022-A-3
ICGi022-A-4
ICGi022-A-5
Альтернативное название линии K7-MYBPC3-N515del-1
K7-MYBPC3-N515del-2
K7-MYBPC3-N515del-3
Учреждение Федеральное государственное бюджетное научное учреждение “Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук”, Новосибирск, Россия
Тип клеток ИПСК
Вид организма Человек
Дополнительная информация о происхождении клеточной линии Возраст: 42
Пол: Ж
Этническая принадлежность: европеоидная раса
Исходный тип клеток Мононуклеарные клетки периферической крови
Способ репрограммирования Неинтегрирующиеся эписомные плазмидные векторы
Репрограммирующие факторы OCT4, KLF4, L-MYC, SOX2, LIN28 и p53 shRNA
Клональность Клональные
Подтверждение элиминации репрограммирующих трансгенов ПЦР, не детектируются
Генетическая модификация Да
Вид генетической модификации Внесенная делеция трех нуклеотидов
Заболевание Гипертрофическая кардиомиопатия
Ген/локус MYBPC3:c.1543_1545delAAC (p.Asn515del), rs730880643
Метод внесения модификации/используемая сайт-специфическая нуклеаза Система CRISPR/Cas9
Способ доставки сайт-специфической нуклеазы Электропорация RNP (рибонуклеопротеиновыми комплексами)
Внесенный в клетки генетический материал Донорный олигонуклеотид, содержащий мутацию c.1543_1545delAAC (p.Asn515del)
Метод анализа внесенной модификации ПЦР с последующим секвенированием по Сэнгеру 17-го экзона гена MYBPC3
Способ оценки нецелевой активности Секвенирование по Сэнгеру ПЦР-продуктов, содержащих предсказанные сайты нецелевой активности системы CRISPR/Cas9
Морфология Монослойные колонии, подобные плюрипотентным клеткам человека
Плюрипотентность Подтверждена в тестах на формирование эмбриоидных телец
Кариотип 46,XX
Проверка контаминации Бактерии, грибы и микоплазма не обнаружены
Область применения Изучение патогенетического вклада варианта c.1543_1545delAAC (p.Asn515del) в гене MYBPC3 в развитие гипертрофической кардиомиопатии
Способ культивирования На слое митотически инактивированных фибробластов мыши (фидера)
Среда культивирования KnockOut DMEM (ThermoFisher Scientific)
Температура, °C 37
Концентрация CO2, % 5
Концентрация O2, % 20
Способ пересева TrypLE™ Express Enzyme (ThermoFisher Scientific)
Кратность пересева 1 : 10
Криоконсервация 90% FBS, 10% DMSO
Условия хранения Жидкий азот
Учетная запись в реестре https://hpscreg.eu/cell-line/ICGi022-A-3
https://hpscreg.eu/cell-line/ICGi022-A-4
https://hpscreg.eu/cell-line/ICGi022-A-5
Дата паспортизации/депонирования 19/08/2022
Таблица 3.

Характеристика линий ИПСК человека ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5

Параметры Метод Результат Данные
Морфология Микрофотография в фазовом контрасте Характерная для плюрипотентных клеток человека морфология Рис. 1б
Фенотип Качественный анализ
Иммунофлуоресцентное окрашивание
Положительное окрашивание на маркеры плюрипотентности: OCT4, NANOG, TRA-1-60, SSEA4 Рис. 1в
Количественный анализ
ОТ-ПЦР в реальном времени
Экспрессия маркеров плюрипотентности: OCT4, NANOG, SOX2 Рис. 1г
Генотип Кариотипирование 46,XХ
Разрешение 450–500
Рис. 1д
Идентификация STR анализ 26 из 26 полиморфных локусов совпадают с исходной линией ICGi022-A Данные доступны по запросу у авторов
Анализ внесенной генетической модификации ПЦР с последующим секвенированием по Сэнгеру Гомозиготная мутация c.1543_1545del (p.Asn515del) в гене MYBPC3 Рис. 1а
Анализ нецелевой активности ПЦР с последующим секвенированием по Сэнгеру Отсутствие нецелевой активности системы CRISPR/Cas9 в 4 предсказанных сайтах Рис. 1и
Контаминация Микоплазма Отсутствует Рис. 1з
Потенциал дифференцировки Формирование эмбриоидных телец, иммунофлуоресцентное окрашивание Положительное окрашивание на маркеры трех зародышевых листков: TUBB3 и MAP2 (эктодерма); ɑSMA и NKX2-5 (мезодерма); CK18 и HNF3β (энтодерма) Рис. 1е
Инфекции донора ВИЧ, гепатит В, гепатит С Нет данных Нет данных
Дополнительная информация о генотипе Группа крови Нет данных Нет данных
HLA-типирование Нет данных Нет данных

Список литературы

  1. Дементьева Е.В., Вяткин Ю.В., Кретов Е.И. и др. Генетический анализ пациентов с гипертрофической кардиомиопатией // Гены & Клетки. 2020. Т. XV. № 3. С. 68–73.

  2. Поляк М.Е., Ховалыг А.Б., Букаева А.А. и др. Спектр мутаций в гене MYBPC3 у пациентов с гипертрофической кардиомиопатией // Медицинская генетика. 2016. Т. 15. № 8. С. 26–29.

  3. Dementyeva E.V., Pavlova S.V., Chernyavsky A.M., Zakian S.M. Generation of an induced pluripotent stem cell line, ICGi029-A, by reprogramming peripheral blood mononuclear cells of a patient suffering from hypertrophic cardiomyopathy and carrying a heterozygous p.N515del mutation in MYBPC3 // Stem Cell Res. 2021. V. 53. 102344.

  4. Malakhova A.A., Grigor’eva E.V., Pavlova S.V. et al. Generation of induced pluripotent stem cell lines ICGi021-A and ICGi022-A from peripheral blood mononuclear cells of two healthy individuals from Siberian population // Stem Cell Res. 2020. V. 48. 101952.

  5. Waldmüller S., Erdmann J., Binner P. et al. Novel correlations between the genotype and the phenotype of hypertrophic and dilated cardiomyopathy: results from the German Competence Network Heart Failure // Eur. J. Heart Fail. 2011. V. 13. № 11. P. 1185–1192.

Дополнительные материалы отсутствуют.