Онтогенез, 2023, T. 54, № 1, стр. 105-113
Получение линий индуцированных плюрипотентных стволовых клеток ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5 с внесенной в ген MYBPC3 с помощью системы CRISPR/Cas9 мутацией p.Asn515del
С. В. Павлова a, Л. Ш. Шаяхметова a, К. А. Проняева a, А. Е. Шульгина a, С. М. Закиян a, Е. В. Дементьева a, *
a ФГБНУ Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики
Сибирского отделения Российской академии наук
630090 Новосибирск, просп. акад. Лаврентьева, 10, Россия
* E-mail: dementyeva@bionet.nsc.ru
Поступила в редакцию 30.11.2022
После доработки 08.12.2022
Принята к публикации 10.12.2022
- EDN: FRUOIN
- DOI: 10.31857/S0475145023010111
Аннотация
До 60% случаев гипертрофической кардиомиопатии обусловлены мутациями в генах, отвечающих за функционирование саркомеров. Однако не для всех вариантов, обнаруженных в ассоциированных с гипертрофической кардиомиопатией генах, в настоящее время известно их клиническое значение. Новые возможности для выяснения клинического значения генетических вариантов открывает использование методов редактирования нуклеотидных последовательностей. Трехнуклеотидная делеция c.1543_1545delAAC (p.Asn515del) с неясным клиническим значением была внесена в ген MYBPC3 индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК) здорового донора с помощью системы CRISPR/Cas9. В результате были получены три линии ИПСК (ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5), гомозиготные по данной мутации. Линии ИПСК с внесенной делецией имели характерную для плюрипотентных клеток человека морфологию, нормальный кариотип (46,XX), экспрессировали маркеры плюрипотентного состояния (OCT4, NANOG, TRA-1-60, SSEA-4) и были способны давать производные трех зародышевых листков при спонтанной дифференцировке. Исследование свойств кардиомиоцитов, полученных при направленной дифференцировке линий ИПСК ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5, позволит установить патогенетический вклад варианта p.Asn515del в гене MYBPC3 в развитие гипертрофической кардиомиопатии.
ВВЕДЕНИЕ
В ходе генетического анализа пациентов с гипертрофической кардиомиопатией нами был выявлен пациент, имеющий вариант p.Asn515del (c.1543_1545delAAC) в 17-м экзоне гена MYBPC3 (Дементьева и др., 2020). Данный вариант представляет собой делецию одной аминокислоты и прежде уже обнаруживался у пациентов с гипертрофической (Поляк и др., 2016) и дилатационной (Waldmüller et al., 2011) кардиомиопатиями, однако его клиническое значение остается неясным. Поскольку большие перспективы для изучения клинического значения генетических вариантов открывает получение изогенных линий индуцированных плюрипотентных стволовых клеток, имеющих одинаковый генетический фон и различающихся лишь присутствием одной мутации, было решено внести вариант p.Asn515del в ген MYBPC3 индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (ИПСК) здорового донора ICGi022-A (Malakhova et al., 2020).
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Внесение мутации p.Asn515del в ген MYBPC3 ИПСК здорового донора
Направляющую РНК и донорный олигонуклеотид выбирали с помощью ресурсов Benchling (https://www.benchling.com/) и IDT (https:// www.idtdna.com/) (табл. 1). 20 пмоль белка Cas9_NLS (NEB) и 100 пмоль направляющей РНК (Synthego) инкубировали 20 мин при комнатной температуре. Полученные рибонуклеопротеиновые комплексы вместе с 300 нг одноцепочечного донорного олигонуклеотида (Biolegio) доставляли в 1 × 105 ИПСК линии ICGi022-A с помощью электропорации на приборе Neon Transfection System (ThermoFisher Scientific) (программа: 1100 В, 30 мс, 1 импульс). После электропорации клетки переносили на слой митотически инактивированных фибробластов мыши (фидера) в среду без антибиотика с добавлением 10 нг/мл Y-27632 (Sigma-Aldrich). Через 48 ч клетки субклонировали в 96-луночные планшеты. Клоны ИПСК культивировали при 37°C в 5% CO2 в среде KnockOut DMEM, содержавшей 15% KnockOut Serum Replacement, 0.1 мМ NEAA, 1× пецициллин-стрептомицин, 1 мМ GlutaMAX (все реактивы – ThermoFisher Scientific), 0.05 мМ 2-меркаптоэтанол (Amresco) и 10 нг/мл bFGF (SCI-store). ИПСК пассировали в соотношении 1 : 10 с использованием TrypLE™ Express Enzyme (ThermoFisher Scientific) каждые 4–5 дней.
Таблица 1.
Антитела | ||||
Антитело | Разведение | Производитель, кат. № | RRID | |
Макеры плюрипотентности | Mouse IgG2b anti-OCT3/4 | 1 : 50 | Santa Cruz Biotechnology, sc-5279 | RRID: AB_628051 |
Rabbit IgG anti-NANOG | 1 : 200 | ReproCELL, RCAB003P | RRID: AB_2714012 | |
Mouse IgG3 anti-SSEA4 | 1 : 200 | Abcam, ab16287 | RRID:AB_778073 | |
Mouse IgM anti-TRA-1-60 | 1 : 200 | Abcam, ab16288 | RRID:AB_778563 | |
Маркеры дифференцированных производных | Mouse IgG2a anti-TUBB3 | 1 : 500 | BioLegend, 801201 | RRID:AB_2313773 |
Chicken IgG anti-MAP2 | 1 : 1000 | Abcam, аb5392 | RRID:AB_2138153 | |
Mouse IgG2a anti-αSMA | 1 : 100 | Dako, M0851 | RRID:AB_2223500 | |
Rabbit IgG anti-Nkx-2.5 (H-114) | 1 : 100 | Santa Cruz Biotechnology, sc-14033 | RRID:AB_650281 | |
Mouse IgG1 anti-CK18 | 1 : 100 | Abcam, ab668 | RRID:AB_305647 | |
Mouse IgG1 anti-HNF3β | 1 : 100 | Santa Cruz Biotechnology, sc-374376 | RRID: AB_10989742 | |
Вторичные антитела | Goat anti-Mouse IgG (H + L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 568 | 1 : 400 | ThermoFisher Scientific, A11031 | RRID:AB_144696 |
Goat anti-Mouse IgG3 Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 | 1 : 400 | ThermoFisher Scientific, A21151 | RRID:AB_2535784 | |
Goat anti-Mouse IgM Heavy Chain Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 568 | 1 : 400 | ThermoFisher Scientific, A21043 | RRID:AB_2535712 | |
Goat anti-Rabbit IgG (H + L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 | 1 : 400 | ThermoFisher Scientific, A11008 | RRID:AB_143165 | |
Goat anti-Mouse IgG (H + L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 | 1 : 400 | ThermoFisher Scientific, A11078 | RRID: AB_2534122 | |
Goat Anti-Chicken IgY H&L, Alexa Fluor 488 | 1 : 400 | Abcam, ab150173 | RRID:AB_2827653 | |
Олигонуклеотиды | ||||
Ген/локус | Размер продукта | Прямой/обратный праймер (5′–3′) | ||
Детекция эписомных векторов | oriP | 544 пн | TTCCACGAGGGTAGTGAACC/ TCGGGGGTGTTAGAGACAAC |
|
Макеры плюрипотентности (колич. ОТ-ПЦР) | OCT4 | 94 пн | CTTCTGCTTCAGGAGCTTGG/ GAAGGAGAAGCTGGAGCAAA |
|
NANOG | 391 пн | CAGCCCCGATTCTTCCACCAGTCCC/ CGGAAGATTCCCAGTCGGGTTCACC |
||
SOX2 | 100 пн | GCTTAGCCTCGTCGATGAAC/ AACCCCAAGATGCACAACTC |
||
Референсный ген (колич. ОТ-ПЦР) | ACTB | 93 пн | GCACAGAGCCTCGCCTT/ GTTGTCGACGACGAGCG | |
Детекция микоплазмы | Ген рибосомальной 16S РНК | 280 пн | GGGAGCAAACAGGATTAGATACCCT/ TGCACCATCTGTCACTCTGTTAACCTC |
|
Детекция внесения мутации p.Asn515del | MYBPC3, экзон 17 | 253 пн | CAGAGACACCACCTAATCATAG/ GAGATGAGAAGGATGAGGTTTAGG | |
Анализ всех внесенных мутаций | MYBPC3, экзон 17 | 408 пн | CAAATGGTGAGTTCCAGAAGC/ GAGATGAGAAGGATGAGGTTTAGG | |
Последовательность протоспейсера для направляющей РНК | MYBPC3, экзон 17 | 20 н. | ACACCACCTGATCATCAACG | |
Последовательность донорного олигонуклеотида | MYBPC3, экзон 17 | 90 н. | CGCTAGTGCACAGTGCATAGTGCCCCGCGT-CCTCCAGCATGGCCTCGATGATTAGGTGGTGTCTCTGCCCGTCCTTCTTGAACCGGTATT | |
Анализ предсказанных сайтов нецелевой активности системы CRISPR/Cas9 | chr14:56408346-56408720 | 375 пн | ACAGCCACAGCAATCCTAAG/ GACAGGGCCCTTTACAGAATAG | |
SLC9A8, интрон 14 | 536 пн | CGGTGGAGTCCTAGCTAATAGA/ TCAGCCTCCGAGTGAAGAA | ||
RTL8B, экзон 1 | 511 пн | AGGAGGCACAAAGCCAATTA/ TTCTGTCCCAGATGTTGAATCC | ||
SLC44A1, экзон 16 | 344 пн | TTGGGAATAATTGGGCAGATAGA/ CATTAAGGCAACACAGCAGAAG |
Выделение геномной ДНК
Геномную ДНК выделяли из ИПСК с использованием набора Wizard® Genomic DNA Purification Kit (Promega).
Анализ внесенных мутаций и нецелевой активности системы CRISPR/Cas9
Детекцию наличия мутации p.Asn515del в клонах ИПСК, амплификацию участков геномной ДНК, содержащих 17-й экзон гена MYBPC3 или предсказанные сайты нецелевой активности системы CRISPR/Cas9, проводили с помощью ПЦР на приборе T100 Thermal Cycler (Bio-Rad) с набором BioMaster HS-Taq PCR-Color (2×) (Biolabmix). Программы: 95°С – 3 мин; 35 циклов: 95°С – 10 с, 58°С – 15 с, 72°С – 15 с; 72°С – 5 мин (анализ мутаций) и 95°С – 3 мин; 35 циклов: 95°С – 30 с, 60°С – 30 с, 72°С – 30 с; 72°С – 5 мин (анализ нецелевой активности). Использованные праймеры приведены в табл. 1. Реакции секвенирования по Сэнгеру выполняли с использованием Big Dye Terminator V. 3.1 Cycle Sequencing Kit (Applied Biosystems) и анализировали в ЦКП “Геномика” СО РАН на генетическом анализаторе ABI 3130XL.
Выявление микоплазмы и эписом
Детекцию контаминации микоплазмами и наличия эписом в линиях ИПСК проводили с помощью ПЦР. Программы: 95°C – 3 мин; 35 циклов: 95°C – 15 с, 67°C – 15 с, 72°C – 20 с; 72°C – 5 мин (микоплазма) и 95°C – 5 мин; 35 циклов: 95°C – 15 с, 62°C – 15 с, 72°C – 15 с; 72°C – 5 мин (эписомы). Праймеры указаны в табл. 1.
Анализ кариотипа
Кариотипирование было выполнено в Томском НИМЦ согласно Международной системе цитогенетической номенклатуры хромосом человека.
Спонтанная дифференцировка in vitro
Спонтанную дифференцировку ИПСК посредством формирования эмбриоидных телец выполняли, как описано ранее (Dementyeva et al., 2021).
Иммунофлуоресцентное окрашивание
Клетки фиксировали в 4% параформальдегиде 10 мин, пермеабилизировали в 0.4% Тритон-Х100 20 мин, инкубировали с 1% БСА 30 мин (все процедуры выполнялись при комнатной температуре). С первичными антителами клетки инкубировали в течение ночи при 4°С, а со вторичными антителами – 1 ч при комнатной температуре. Использованные антитела перечислены в табл. 1. Отмывки от несвязавшихся антител проводили в PBS 2 раза по 15 мин. Ядра контрастировали с использованием DAPI (Sigma-Aldrich). Микрофотографии были получены с помощью микроскопа Nikon Eclipse Ti-E и программного обеспечения NIS Elements.
Количественная ОТ-ПЦР
РНК выделяли с помощью TRIzol Reagent (ThermoFisher Scientific) согласно протоколу производителя. Обратную транскрипцию 1–2 мкг РНК проводили с использованием ревертазы M‑MuLV (Biolabmix). Количественную ОТ-ПЦР выполняли на приборе LightCycler 480 System (Roche) с набором BioMaster HS-qPCR SYBR Blue 2× (Biolabmix). Программа: 95°C – 5 мин; 40 циклов: 95°С – 10 с, 60°С – 1 мин. Значения CT нормализовали к бета-актину с помощью ΔΔCT-метода.
STR анализ
Аутентификацию линий ИПСК осуществляла компания “Геноаналитика” (https://www.genoanalytica.ru) с помощью наборов AmpFlSTR Identifiler Direct PCR Amplification Kit (Applied Biosystems) и Investigator HDplex (QIAGEN) и прибора 3130 Genetic Analyzer (HITACHI, Applied Biosystems).
ПОЛУЧЕНИЕ И ХАРАКТЕРИСТИКА КЛЕТОЧНЫХ ЛИНИЙ
Для редактирования геномной ДНК ИПСК здорового донора была использована система CRISPR/Cas9, состоящая из белка Cas9 и направляющей РНК, включающей последовательность (спейсер), комплементарную участку 17-го экзона гена MYBPC3 (протоспейсеру). Комплексы из направляющей РНК и белка Cas9 вместе с одноцепочечным донорным олигонуклеотидом, комплементарным участку 17-го экзона гена MYBPC3 и содержащим трехнуклеотидную делецию AAC (p.Asn515del), были доставлены в клетки линии ICGi022-A с помощью электропорации. Полученные после электропорации клоны ИПСК были проанализированы посредством ПЦР с использованием пары праймеров, которая позволяет детектировать присутствие варианта p.Asn515del. В результате было отобрано 12 позитивных на наличие варианта p.Asn515del клонов. Для этих клонов было проведено секвенирование 17-го экзона гена MYBPC3. Три клона оказались гомозиготными по трехнуклеотидной делеции в гене MYBPC3 (рис. 1а). Остальные клоны в одном аллеле имели вариант p.Asn515del, а во втором – различные варианты делеций и инсерций. Три линии ИПСК, гомозиготные по варианту p.Asn515del, ICGi022-A-3, ICGi022-A-4, ICGi022-A-5, были выбраны для дальнейшей работы и детально охарактеризованы. Линии ИПСК демонстрировали характерную для плюрипотентных стволовых клеток человека морфологию (рис. 1б) и экспрессировали маркеры плюрипотентного состояния: транскрипционные факторы OCT4, NANOG и поверхностные антигены TRA-1-60 и SSEA4 (рис. 1в). Количественный анализ с помощью ПЦР в реальном времени показал, что уровень экспрессии генов плюрипотентности OCT4, NANOG и SOX2 в этих линиях сопоставим с уровнем их экспрессии в линии эмбриональных стволовых клеток человека HUES9 (рис. 1г). G-бэндинг линий ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5 на 8–12 пассажах показал, что клетки сохраняли нормальный кариотип – 46,XX (рис. 1д). Способность линий ИПСК давать производные трех зародышевых листков оценивалась посредством спонтанной дифференцировки в эмбриоидных тельцах. Иммунофлуоресцентное окрашивание дифференцированных клеток выявило экспрессию маркеров эктодермы (β3-тубулина (TUBB3) и MAP2), мезодермы (гладкомышечного α-актина (αSMA) и транскрипционного фактора NKX2-5), энтодермы (ядерного фактора гепатоцитов HNF3β и цитокератина 18 (СК18)) (рис. 1е). В полученных линиях ИПСК, как и в исходной линии ICGi022-A, отсутствовали эписомные векторы (рис. 1ж), а также контаминация микоплазмами (рис. 1з). Анализ коротких тандемных повторов (STR) в линиях ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5 подтвердил их идентичность исходной линии ИПСК ICGi022-A по 26 полиморфным локусам (данные доступны по запросу у авторов). С помощью секвенирования по Сэнгеру в полученных линиях ИПСК было продемонстрировано отсутствие нецелевой активности системы CRISPR/Cas9 в 4 предсказанных с помощью ресурса Benchling (https://www.benchling.com/) сайтах. Пример анализа одного из предсказанных сайтов нецелевой активности системы CRISPR/Cas9 представлен на рис. 1и.
Паспорт линий ИПСК ICGi022-A-3, ICGi022-A-4 и ICGi022-A-5 представлен в табл. 2, полная характеристика этих линий приведена в табл. 3.
Таблица 2.
Параметр | Описание |
---|---|
Уникальный идентификатор | ICGi022-A-3 ICGi022-A-4 ICGi022-A-5 |
Альтернативное название линии | K7-MYBPC3-N515del-1 K7-MYBPC3-N515del-2 K7-MYBPC3-N515del-3 |
Учреждение | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение “Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук”, Новосибирск, Россия |
Тип клеток | ИПСК |
Вид организма | Человек |
Дополнительная информация о происхождении клеточной линии | Возраст: 42 Пол: Ж Этническая принадлежность: европеоидная раса |
Исходный тип клеток | Мононуклеарные клетки периферической крови |
Способ репрограммирования | Неинтегрирующиеся эписомные плазмидные векторы |
Репрограммирующие факторы | OCT4, KLF4, L-MYC, SOX2, LIN28 и p53 shRNA |
Клональность | Клональные |
Подтверждение элиминации репрограммирующих трансгенов | ПЦР, не детектируются |
Генетическая модификация | Да |
Вид генетической модификации | Внесенная делеция трех нуклеотидов |
Заболевание | Гипертрофическая кардиомиопатия |
Ген/локус | MYBPC3:c.1543_1545delAAC (p.Asn515del), rs730880643 |
Метод внесения модификации/используемая сайт-специфическая нуклеаза | Система CRISPR/Cas9 |
Способ доставки сайт-специфической нуклеазы | Электропорация RNP (рибонуклеопротеиновыми комплексами) |
Внесенный в клетки генетический материал | Донорный олигонуклеотид, содержащий мутацию c.1543_1545delAAC (p.Asn515del) |
Метод анализа внесенной модификации | ПЦР с последующим секвенированием по Сэнгеру 17-го экзона гена MYBPC3 |
Способ оценки нецелевой активности | Секвенирование по Сэнгеру ПЦР-продуктов, содержащих предсказанные сайты нецелевой активности системы CRISPR/Cas9 |
Морфология | Монослойные колонии, подобные плюрипотентным клеткам человека |
Плюрипотентность | Подтверждена в тестах на формирование эмбриоидных телец |
Кариотип | 46,XX |
Проверка контаминации | Бактерии, грибы и микоплазма не обнаружены |
Область применения | Изучение патогенетического вклада варианта c.1543_1545delAAC (p.Asn515del) в гене MYBPC3 в развитие гипертрофической кардиомиопатии |
Способ культивирования | На слое митотически инактивированных фибробластов мыши (фидера) |
Среда культивирования | KnockOut DMEM (ThermoFisher Scientific) |
Температура, °C | 37 |
Концентрация CO2, % | 5 |
Концентрация O2, % | 20 |
Способ пересева | TrypLE™ Express Enzyme (ThermoFisher Scientific) |
Кратность пересева | 1 : 10 |
Криоконсервация | 90% FBS, 10% DMSO |
Условия хранения | Жидкий азот |
Учетная запись в реестре | https://hpscreg.eu/cell-line/ICGi022-A-3 https://hpscreg.eu/cell-line/ICGi022-A-4 https://hpscreg.eu/cell-line/ICGi022-A-5 |
Дата паспортизации/депонирования | 19/08/2022 |
Таблица 3.
Параметры | Метод | Результат | Данные |
---|---|---|---|
Морфология | Микрофотография в фазовом контрасте | Характерная для плюрипотентных клеток человека морфология | Рис. 1б |
Фенотип | Качественный анализ Иммунофлуоресцентное окрашивание |
Положительное окрашивание на маркеры плюрипотентности: OCT4, NANOG, TRA-1-60, SSEA4 | Рис. 1в |
Количественный анализ ОТ-ПЦР в реальном времени |
Экспрессия маркеров плюрипотентности: OCT4, NANOG, SOX2 | Рис. 1г | |
Генотип | Кариотипирование | 46,XХ Разрешение 450–500 |
Рис. 1д |
Идентификация | STR анализ | 26 из 26 полиморфных локусов совпадают с исходной линией ICGi022-A | Данные доступны по запросу у авторов |
Анализ внесенной генетической модификации | ПЦР с последующим секвенированием по Сэнгеру | Гомозиготная мутация c.1543_1545del (p.Asn515del) в гене MYBPC3 | Рис. 1а |
Анализ нецелевой активности | ПЦР с последующим секвенированием по Сэнгеру | Отсутствие нецелевой активности системы CRISPR/Cas9 в 4 предсказанных сайтах | Рис. 1и |
Контаминация | Микоплазма | Отсутствует | Рис. 1з |
Потенциал дифференцировки | Формирование эмбриоидных телец, иммунофлуоресцентное окрашивание | Положительное окрашивание на маркеры трех зародышевых листков: TUBB3 и MAP2 (эктодерма); ɑSMA и NKX2-5 (мезодерма); CK18 и HNF3β (энтодерма) | Рис. 1е |
Инфекции донора | ВИЧ, гепатит В, гепатит С | Нет данных | Нет данных |
Дополнительная информация о генотипе | Группа крови | Нет данных | Нет данных |
HLA-типирование | Нет данных | Нет данных |
Список литературы
Дементьева Е.В., Вяткин Ю.В., Кретов Е.И. и др. Генетический анализ пациентов с гипертрофической кардиомиопатией // Гены & Клетки. 2020. Т. XV. № 3. С. 68–73.
Поляк М.Е., Ховалыг А.Б., Букаева А.А. и др. Спектр мутаций в гене MYBPC3 у пациентов с гипертрофической кардиомиопатией // Медицинская генетика. 2016. Т. 15. № 8. С. 26–29.
Dementyeva E.V., Pavlova S.V., Chernyavsky A.M., Zakian S.M. Generation of an induced pluripotent stem cell line, ICGi029-A, by reprogramming peripheral blood mononuclear cells of a patient suffering from hypertrophic cardiomyopathy and carrying a heterozygous p.N515del mutation in MYBPC3 // Stem Cell Res. 2021. V. 53. 102344.
Malakhova A.A., Grigor’eva E.V., Pavlova S.V. et al. Generation of induced pluripotent stem cell lines ICGi021-A and ICGi022-A from peripheral blood mononuclear cells of two healthy individuals from Siberian population // Stem Cell Res. 2020. V. 48. 101952.
Waldmüller S., Erdmann J., Binner P. et al. Novel correlations between the genotype and the phenotype of hypertrophic and dilated cardiomyopathy: results from the German Competence Network Heart Failure // Eur. J. Heart Fail. 2011. V. 13. № 11. P. 1185–1192.
Дополнительные материалы отсутствуют.