1. На главную
  2. Электронные версии
  3. Успехи современной биологии
  4. T. 143, № 6, 2023

Успехи современной биологии, 2023, T. 143, № 6, стр. 580-586

Анализ субпопуляций моноцитов у пациентов при кардиохиругических вмешательствах в условиях модифицированного искусственного кровообращения с применением гемодиафильтрации

В. М. Земсков 1, *, М. Н. Козлова 1, М. С. Соловьева 1, А. В. Балбуцкий 1, Н. С. Шишкина 1, А. Н. Куликова 1, В. С. Демидова 1, А. М. Земсков 2, В. А. Попов 1, Г. П. Плотников 1, А. В. Шаранда 1, Р. А. Корнелюк 1, О. С. Васильев 3

1 Национальный медицинский исследовательский центр хирургии им. А.В. Вишневского
Москва, Россия

2 Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко
Воронеж, Россия

3 Российский университет спорта “ГЦОЛИФК”
Москва, Россия

* E-mail: arturrego@yandex.ru

Поступила в редакцию 11.07.2023
После доработки 14.07.2023
Принята к публикации 21.07.2023

Аннотация

У пациентов, подвергнутых кардиохирургическим операциям в условиях искусственного кровообращения, применяли продолженную высокообъемную управляемую гемодиафильтрацию. В циркулирующих клетках исследовали до операции и на 3 и 10 сут после нее содержание субпопуляций моноцитов М1, М2, М3, СD4+ и общих моноцитов. Получены результаты, которые могут быть применены в диагностике и прогнозировании исходов кардиохирургических вмешательств.

Ключевые слова: субпопуляции моноцитов, искусственное кровообращение, кардиохирургические вмешательства

Список литературы

  1. Аникина Е.В., Цыганкова А.Р. Клеточные маркеры хронической обструктивной болезни легких от воздействия аэрозолей, содержащих наночастицы // Мед. труда пром. экол. 2020. Т. 60 (11). С. 723–726.

  2. Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Медгиз, 1962. 180 с.

  3. Ганичева А.В., Ганичев А.В. Построение доверительных интервалов на основе неравенства Чебышева и рекуррентного метода // Вестн. НГУЭУ. 2022. № 1. С. 211–223. https://doi.org/10.34020/2073-6495-2022-1-211-223

  4. Григорьев Е.В., Плотников Г.П., Матвеева В.Г. и др. Способ предупреждения развития системного воспалительного ответа у кардиохирургических пациентов после искусственного кровообращения. Патент RU 2641173 C1. Заяв. 31.10.2016. Опубл. 16.01.2018.

  5. Евгина С.А., Савельев Л.И. Современные теория и практика референтных интервалов // Лаб. служба. 2019. Т. 8 (2). С. 36–44. https://doi.org/10.17116/labs2019802136

  6. Земсков В.М., Алексеев А.А., Козлова М.Н. и др. Иммунная диагностика септических осложнений при ожогах // Успехи соврем. биол. 2015. Т. 135 (6). С. 531–541.

  7. Земсков В.М., Ревишвили А.Ш., Козлова М.Н. и др. Анализ субпопуляций моноцитов при сердечно-сосудистой, ожоговой и иной патологии (классификация 2010 г.) // Мед. совет. 2023. Т. 17 (4). С. 8–17.

  8. Курбацкий А.И. Лекция 5. Доверительные интервалы. М.: МШЭ МГУ, 2020. С. 1–32.

  9. Ревишвили А.Ш., Чагирев В.Н., Плотников Г.П. и др. Способ интраоперационной стабилизации гомеостаза пациента при кардиохирургическом вмешательстве в условиях длительного искусственного кровообращения. Патент RU 2723752 C1. Заяв. 25.02.2019. Опубл. 17.06.2020.

  10. Титов Л.Б. Моноциты, макрофаги, дендритные и миелоидные супрессорные клетки: генез, классификация, иммунобиологические свойства // Весці Нацыянальнай акадэміі навук Беларусі. Серыя медыцынскіх навук. 2018. Т. 15 (3). С. 363–382.

  11. Хубулава Г.Г., Марченко С.П., Дубова Е.В., Суворов В.В. Роль модифицированной ультрафильтрации в уменьшении системных проявлений воспаления в кардиохирургии // Педиатр. 2016. Т. 7 (1). С. 106–110.

  12. Ярмамедов Д.M., Липатов В.А. Метод доверительных интервалов в биологических и медицинских исследованиях // Innova. 2016. № 3 (4). С. 13–14. https://doi.org/10.21626/innova/2016.3/03

  13. Borst J., Ahrends T., Bąbała N. et al. CD4+ T cell help in cancer immunology and immunotherapy // Nat. Rev. Immunol. 2018. V. 18 (10). P. 635–647. https://doi.org/10.1038/s41577-018-0044-0

  14. Chapman C.M., Beilby J.P., McQuillan B.M. et al. Monocyte count, but not C-reactive protein or interleukin-6, is an independent risk marker for subclinical carotid atherosclerosis // Stroke. 2004. V. 35. P. 1619–1624.

  15. Crowe S., Mills J., McGrath M.S. Quantitative immunocytofluorographic analysis of CD4 surface antigen expression and HIV infection of human peripheral blood monocyte/macrophages // AIDS Res. Hum. Retroviruses. 1987. V. 3 (2). P. 135–145. https://doi.org/10.1089/aid.1987.3.135

  16. Geleziunas R., Bour S., Boulerice F. et al. Diminution of CD4 surface protein but not CD4 messenger RNA levels in monocytic cells infected by HIV-1 // AIDS. 1991. V. 5. P. 29–33. https://doi.org/10.1097/00002030-199101000-00004

  17. Graziani-Bowering G.M., Filion L.G. Down regulation of CD4 expression following isolation and culture of human monocytes // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2000. V. 7 (2). P. 182–191. https://doi.org/10.1128/CDLI.7.2.182-191.2000

  18. Graziani-Bowering G.M., Filion L.G., Thibault P., Kozlowski M. CD4 is active as a signaling molecule on the human monocytic cell line Thp-1 // Exp. Cell Res. 2002. V. 279 (1). P. 141–152. https://doi.org/10.1006/excr.2002.5581

  19. Hristov M., Schmitz S., Nauwelaers F., Weber C. A flow cytometric protocol for enumeration of endothelial progenitor cells and monocyte subsets in human blood // J. Immunol. Methods. 2012. V. 381. P. 9–13.

  20. Ji J., Sahu G.K., Braciale V.L., Cloyd M. HIV-1 induces IL-10 production in human monocytes via a CD4-independent pathway // Int. Immunol. 2005. V. 17 (6). P. 729–736. https://doi.org/10.1093/intimm/dxh252

  21. Kampalath B., Cleveland R.P., Kass L. Reduced CD4 and HLA-DR expression in neonatal monocytes // Clin. Immunol. Immunopathol. 1998. V. 87 (1). P. 93–100. https://doi.org/10.1006/clin.1997.4505

  22. Kawakami Y. Autoimmune diseases // Chiryo. 1962. V. 44. P. 2145–2154.

  23. Kazazi F., Mathijs J.M., Foley P., Cunningham A.L. Variations in CD4 expression by human monocytes and macrophages and their relationship to infection with the human immunodeficiency virus // J. Gen. Virol. 1989. V. 70 (10). P. 2661–2672. https://doi.org/10.1099/0022-1317-70-10-2661

  24. Neudorf S., DeLaat C., Jones M. Expression of the CD4 molecule on acute nonlymphocytic leukemia (ANLL) cell lines // J. Clin. Lab. Anal. 1989. V. 3 (5). P. 312–315. https://doi.org/10.1002/jcla.1860030510

  25. Pietrella D., Monari C., Retini C. et al. Cryptococcus neoformans and Candida albicans regulate CD4 expression on human monocytes // J. Infect. Dis. 1998. V. 178 (5). P. 1464–1471. https://doi.org/10.1086/314458

  26. Ruff M.R., Martin B.M., Ginns E.I. et al. CD4 receptor binding peptides that block HIV infectivity cause human monocyte chemotaxis. Relationship to vasoactive intestinal polypeptide // FEBS Lett. 1987. V. 211 (1). P. 17–22. https://doi.org/10.1016/0014-5793(87)81265-6

  27. Ruterbusch M., Pruner K.B., Shehata L., Pepper M. In vivo CD4+ T cell differentiation and function: revisiting the Th1/Th2 paradigm // Annu. Rev. Immunol. 2020. V. 38. P. 705–725. https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-103019-085803

  28. Scriba A., Schneider M., Grau V. et al. Rat monocytes up-regulate NKR-P1A and down-modulate CD4 and CD43 during activation in vivo: monocyte subpopulations in normal and IFN-γ-treated rats // J. Leukoc. Biol. 1997. V. 62 (6). P. 741–752. https://doi.org/10.1002/jlb.62.6.741

  29. Szabo G., Miller C.L., Kodys K. Antigen presentation by the CD4 positive monocyte subset // J. Leukoc. Biol. 1990. V. 47 (2). P. 111–120. https://doi.org/10.1002/jlb.47.2.111

  30. Zhen A., Krutzik S.R., Levin B.R. et al. CD4 ligation on human blood monocytes triggers macrophage differentiation and enhances HIV infection // J. Virol. 2014. V. 88 (17). P. 9934–9946. https://doi.org/10.1128/jvi.00616-14

Дополнительные материалы отсутствуют.

Инструменты

следующая статья выпуска предыдущая статья выпуска содержание выпуска

Успехи современной биологии

Архивы выпусков Информация о журнале Отправить рукопись в журнал