Агрохимия, 2021, № 10, стр. 81-88

Влияние цеолитов на развитие ярового рапса в присутствии остатков метсульфурон-метила в почве

Ю. Я. Спиридонов 1*, Н. Д. Чкаников 2, А. В. Пастухов 2, М. М. Ильин 2, И. Ю. Спиридонова 1

1 Всероссийский научно-исследовательский институт фитопатологии
143050 Московская обл., р. п. Большие Вяземы, ул. Институт, влад. 5, Россия

2 Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова РАН
119991 Москва, ул. Вавилова, 28, Россия

* E-mail: spiridonov@vniif.ru

Поступила в редакцию 09.04.2021
После доработки 21.04.2021
Принята к публикации 12.07.2021

Полный текст (PDF)

Аннотация

Для решения проблемы фитотоксичности остатков гербицидов – производных сульфонилмочевины в почве изучена возможность снижения их фитотоксического действия на посевы с помощью цеолитов. С этой целью перед посевом ярового рапса в почву, содержащую остатки метсульфурон-метила вносили природный цеолит (клиноптилолит, ЦПС-исх) и его кислотно-модифицированное производное (ЦПС-H+), которое было способно катализировать разложение гербицида при непосредственном контакте в присутствии воды. Характеристики пористой структуры природного цеолита ЦПС-исх и его кислотной формы ЦПС-Н+ были определены с помощью метода низкотемпературной сорбции азота. Показано, что сорбция гербицида на цеолитах не могла вносить существенного вклада в процесс детоксикации. Проведенные эксперименты на вегетирующих растениях ярового рапса показали, что исходный цеолит ЦПС-исх и его кислотная форма ЦПС-Н+ частично снимали фитотоксическое действие остатков гербицида в почве. При этом они обладали умеренной собственной фитотоксичностью, достоверная разница между воздействием образцов ЦПС-исх и ЦПС-Н+ отсутствовала. Защитное действие цеолитов существенно возрастало, а их собственная фитотоксичность снижалась до незначительных показателей при предпосевной 3-недельной экспозиции почвы с цеолитами. Высказано предположение, что в почве образуются агрегаты цеолитов с гуминовыми соединениями, которые сорбируют, а возможно и разлагают сульфонилмочевины. Изучению этого вопроса будут посвящены последующие работы.

Ключевые слова: сульфонилмочевины, почвы, фитотоксичность, цеолиты, яровой рапс.

ВВЕДЕНИЕ

Цеолиты широко применяются как катализаторы при переработке нефти, в процессах сорбции и разделения, а также в сельском хозяйстве и экологической инженерии. Использование цеолитов в сельском хозяйстве возможно благодаря катионообменным свойствам, способности обратимо накапливать воду и адсорбционным свойствам, которые делают возможным более эффективное использование удобрений. Цеолиты способствуют удерживанию в зоне корней таких важных элементов для развития растений как азот и калий, а также кальций, магний и микроэлементы [1, 2]. Существует информация о сорбции цеолитами органических соединений, в том числе некоторых гербицидов, например, атразина [3, 4]. В настоящей работе на примере метсульфурон-метила (МСМ) была предпринята попытка нейтрализации с помощью цеолитов фитотоксичности остатков гербицидов сульфонилмочевинового ряда. Сульфонилмочевины широко используют для прополки зерновых культур, которые к ним относительно устойчивы. Вместе с тем даже незначительные остатки этих гербицидов в почве способны существенно подавлять развитие и, как следствие этого, уменьшать урожайность культур, следующих в севообороте за зерновыми.

Основным путем разложения в почве метсульфурон-метила при величинах pH < 6.0 является химический гидролиз. В слабокислых условиях (рН 4.0–6.0) с достаточно высокой скоростью реализуется гидролиз карбамидных связей сульфонилмочевин. Как следствие этого, гербициды теряют фитотоксичность. При более высоком pH преобладает, как правило, медленное микробиологическое разложение. Соответственно, остатки сульфонилмочевин представляют опасность для посевов в нейтральных и щелочных почвах [57]. Недавно был подробно рассмотрен вопрос защиты культурных растений от остатков в почве сульфонилмочевин с помощью сейфнеров (антидотов), использующихся при предпосевной обработке семян [8]. Этот путь хорош тем, что не требует дополнительных агротехнических процедур, но полностью проблему решить он не может. Другим решением является внесение в почву сорбентов, в частности активированных углей [9]. Недостатком этого метода является обратимость связывания остатков гербицидов. Оптимальным решением был бы сорбент, катализирующий разложение фитотоксичных остатков, обладающий при этом дополнительными полезными свойствами для растениеводства. Поскольку цеолиты имеют в структуре 2 типа кислотных центров, то можно предположить, что они способны катализировать разложение сульфонилмочевин. В качестве экспериментального объекта защиты от метсульфурон-метила выбрали культуру ярового рапса, который высокочувствителен к воздействию гербицидов сульфонилмочевинового ряда. Цель работы – исследование влияния цеолитов на развитие ярового рапса в присутствии остатков метсульфурон-метила в почве.

МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ

Исследована возможность применения цеолитов для снятия токсического действия одного из широко используемых гербицидов – метсульфурон-метила. С этой целью был использован природный цеолит марки ЦПC (поставщик компания “Алсис”, Екатеринбург) с содержанием клиноптилолита в сырье – не менее 65–70% (ЦПС-исх), а также цеолит, полученный обработкой ЦПС соляной кислотой (ЦПС-H+).

Кислотная модификация цеолита осуществлена при его обработке раствором соляной кислоты (0.1 М раствор) в динамических условиях. Через делительную воронку с 200–250 г цеолита пропускали 8–10 л раствора кислоты в течение 2–3-х сут. Полученный цеолит в кислотной форме (ЦПС-Н+) промывали большим количеством воды и сушили при 150°С в течение 1 сут.

Для определения характеристик пористой структуры природного цеолита ЦПС и его кислотной формы был использован метод низкотемпературной сорбции азота. Измерения проведены на анализаторе пористой структуры материалов Nova-1200е (Quantachrome, USA). Расчеты характеристик пористой структуры проведены в программе NOVAWin (Version 11.04), имеющей встроенный пакет программных алгоритмов для нескольких теоретических методов, включающих теории Brunauer–Emmett–Teller (BET), Barrett–Joyner–Halenda (BJH), функционала плотности (DFT), Дубинина–Рудушкевича, Дубинина–Астахова, сравнительный t–метод и Alpha–S–метод. Температура измерений сорбции азота – 77 К.

Для изучения процесса деструкции метсульфурон-метила готовили суспензии цеолитов в водном растворе МСМ с концентрацией 20–22 мг/л. Количество цеолитов составляло 0.2 г и 2 г/10 мл раствора. После ввода цеолитов в раствор суспензию перемешивали 4 ч в шейкере (горизонтально-круговые движения, 170 об./мин), а затем выдерживали в статическом состоянии. Для хроматографического анализа отбирали по 1 мл суспензии и отделяли осадок на центрифуге (5000 об./мин, 10–15 мин). Объем пробы фильтрата для анализа составлял 1 мкл. Степень конверсии МСМ оценивали по изменению его концентрации в водной фазе суспензии (фильтрате), эквивалентной площади пика метсульфурон-метила на хроматограммах. Формула для расчета степени конверсии (k) метсульфурон-метила: k = (So–S)/So) × 100 (Sо – площадь пика МСМ в контрольном растворе, S – площадь пика МСМ в фильтрате).

Концентрацию МСМ в водных растворах определяли методом ВЭЖХ по результатам анализа на жидкостном хроматографе Agilent 1100 (Германия) с УФ-детектором и аналитической колонкой Диасфер-100-С18 (4.6 × 250 мм, 5 мкм). Элюент (0.05 М фосфорная кислота и ацетонитрил в соотношении 70 : 30) подавался со скоростью 1 мл/мин в изократическом режиме. Температура термостата колонки 25°С, УФ-детектирование – при длине волны 230 нм. Прием и обработку данных проводили при помощи программы Chemstation.

Биологические испытания проводили на растениях ярового рапса сорта Ратник в камере “Фетч” (ФРГ) в лаборатории искусственного климата (ЛИК) ВНИИФ. В качестве источника метсульфурон-метила использовали коммерческий гербицид Зингер, СП (Щелково Агрохим), который содержит 600 мг/г действующего вещества – метсульфурон-метила.

Выращивание тест-растений осуществляли в контролируемых условиях ЛИК: влажность воздуха в камере 70%, длительность светового дня – 16 ч, ночи – 8 ч, освещенность днем – 20 тыс. лк, температура воздуха днем – 25°С, ночью – 16°С, влажность почвы поддерживали на уровне 60% ПВ путем ежедневного полива по массе каждого вегетационного сосуда водопроводной обессоленной водой. В исследовании использовали дерново-подзолистую среднесуглинистую почву с содержанием гумуса 2.8%, рНKCl 5.8, ЕКО – 11 мг-экв/100 г почвы.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Элементный состав цеолитов. Изменение элементного состава образов цеолита после проведения кислотной модификации обнаружено методом рентгено-флуоресцентного анализа (табл. 1). Установлено многократное снижение содержания в образцах кальция и натрия. Это вызвано процессом обмена ионов кальция и натрия на протоны при промывке природного цеолита раствором соляной кислоты. В результате такого обмена в структуре цеолита появлялись слабо связанные ионы водорода.

Таблица 1.

Конверсия метсульфурон-метила (МСМ) в водных суспензиях цеолитов

Тип цеолита Масса адсорбента, г МСМ : цеолит, мг/г Время контакта, сут Степень конверсии МСМ, %
ЦПС 0.2050 1.07 2 (14) 0 (0)
ЦПС-Н+ 0.1992 1.10 2 (14) 23.4 (93)
ЦПС 2.0066 0.10 2 (4) 0 (0)
ЦПС-Н+ 2.0020 0.10 2 (4) 55.0 (70)

Исследования пористой структуры цеолитов. Адсорбционные методы широко применяют для описания пористой структуры адсорбентов, катализаторов, носителей для хроматографии и других пористых твердых тел различной природы [1013]. Основным методом для определения характеристик пористой структуры адсорбентов является метод низкотемпературной сорбции–десорбции азота [14]. В данной работе этот метод использован для исследования пористой структуры цеолитов. Установлено, что во всех образцах цеолитов имеются микро-, мезо- и макропоры. Удельная поверхность пор цеолитов, определенная по методу BET, составила 22 и 106 м2/г, суммарный объем пор размером до 190 нм – 0.087 и 0.128 см3/г для исходного и кислотно-модифицированного цеолита соответственно. Анализ распределения пор по размерам в 2-х типах исследованных цеолитов ЦПС и ЦПС-Н+ показал, что кислотная обработка приводила к изменению микропористой структуры природного цеолита. В образце ЦПС выявлены 2 фракции мезопор с размерами 3.8–9.8 нм (объем этой фракции пор – 23% от суммарного объема пор с размерами до 75 нм) и 9.8–20 нм (объем фракции 26%). После кислотной модификации, в образце ЦПС-Н+ 33% от суммарного объема пор занимали микропоры размером 1.7–3.5 нм, а 34% – мезопоры с размерами 4–20 нм. Эти результаты получены при анализе распределений пор по размерам на основе расчетных алгоритмов теории функционала плотности для цилиндрической модели пор (метод NLDFT [15, 16]) в программе NovaWin 11.04.

Для изучения влияния цеолитов на химическую устойчивость метсульфурон-метила в водных растворах были проведены исследования состава водной фазы суспензий цеолитов при их длительном контакте в статических условиях. Использовали ЦПС в кальциевой (ЦПС-исх) и кислотной (ЦПС-Н+) форме. Концентрацию метсульфурон-метила в водном растворе суспензий с цеолитом определяли методом ВЭЖХ, периодически отбирая пробы в течение 2–14 сут. Сравнение хроматограмм для раствора метсульфурон-метила и водной фазы из суспензии природного цеолита ЦПС (рис. 1) показало неизменность площади пика МСМ. Вместе с тем, на хроматограммах водных растворов, выделенных из суспензий кислотного цеолита ЦПС-Н+, хорошо видно значительное уменьшение площади пика основного вещества метсульфурон-метила и появление пиков продуктов его гидролиза (рис. 2).

Рис. 1.

Хроматограммы исходного водного раствора МСМ (22 мг/л) (а) и водной фазы суспензии ЦПС-исх, соотношение МСМ : цеолит = 0.11 мг/г (б). Время контакта цеолита с раствором МСМ – 4 ч в динамике (встряхивание в шейкере), 2 сут – в статическом состоянии.

Рис. 2.

Хроматограмма водной фазы суспензии цеолита в кислотной форме (ЦПС-Н+). Соотношение МСМ : цеолит = 1.1 мг/г. Время контакта цеолита с раствором МСМ – 4 ч в динамике (встряхивание в шейкере): (а) – 2 сут, (б) – 14 сут в статическом состоянии.

Таким образом, установлено, что только для водных суспензий с кислотно-модифицированным цеолитом ЦПС-Н+ было характерно резкое уменьшение концентрации метсульфурон-метила. Через 2 сут концентрация МСМ снижалась на 55%, через 4 сут – на 70%, а через 2 нед – на 93% (табл. 2). Основной причиной уменьшения содержания МСМ в водной суспензии с цеолитом, по-видимому, было каталитическое разрушение метсульфурон-метила, а не его сорбция на цеолите, т.к. даже для суспензий цеолита 10Х с высокой удельной поверхностью пор (400–500 м2/г) изменение концентрации МСМ было незначительным. Выше было отмечено, что цеолит ЦПС-Н+ содержит в структуре ионы водорода, способные катализировать процесс гидролиза метсульфурон-метила.

Таблица 2.

Влияние цеолитов на массу растений рапса в присутствии гербицида и без него (без экспозиции перед посевом)

Марка цеолита Цеолит, кг/га Зингер, СП г/га Масса, г Снижение массы тест-растений, % к контролю
повторности средние
1 2 3 4 5
ЦПС-исх 100 12.9 14.2 12.5 15.3 13.7 17.5
0.4 13.0 14.2 12.6 13.3 13.3 19.9
ЦПС-Н+ 14.7 14.3 14.4 14.8 13.1 14.3 13.9
0.4 13.9 14.1 13.7 14.3 14.3 14.1 15.1
Контроль (Зингер, СП) 0.4 11.4 10.5 13.5 10.1 11.4 11.4 31.3
Контроль без цеолита и гербицида 17.3 16.6 16.6 14.5 17.9 16.6 0
ЦПС-исх 100 14.7 15.2 14.9 17.0 15.5 21.3
0.4 14.0 15.6 14.7 16.0 15.1 23.4
ЦПС-Н+ 16.1 14.7 16.6 16.4 14.8 15.7 20.3
0.4 15.5 16.2 14.0 15.4 15.2 15.3 22.3
Контроль (Зингер, СП) 0.4 14.3 12.5 14.7 12.0 14.7 13.6 31.0
Контроль без цеолита и гербицида 18.2 23.7 21.0 17.1 18.7 19.7 0

Примечание. Тест-растение – рапс, внесение в почву гербицида Зингер, СП – 29 июня 2020 г., внесение цеолита – 30 июня, посев рапса – 01 июля, учет – 04 августа. То же в табл. 3.

Для водных суспензий с природным цеолитом (ЦПС) количество МСМ в растворе не изменилось, либо изменилось незначительно, на 1–2%. Таким образом, проведенное физико-химическое исследование свидетельствовало о том, что в присутствии кислотно-модифицированного цеолита (ЦПС-H+) гербицид метсульфурон-метил медленно разлагался. Биологические эксперименты должны были продемонстрировать, какие эффекты возникают при внесении в почву цеолитов ЦПС-исх и ЦПС-H+ в присутствии в ней остатков метсульфурон-метила или в отсутствии таковых.

Биологические испытания цеолитов при внесении в почву. В соответствии с традиционной методикой дерново-подзолистую почву обрабатывали гербицидом Зингер, СП в дозе 0.4 г/га с помощью лабораторного опрыскивателя. Затем через 1 сут в обработанную гербицидом почву вносили цеолит. В первом случае через 1 сут и во втором случае через 3 нед после внесения цеолита почву распределяли в вазоны вместимостью 3 кг и проводили посев тест-растений рапса. Повторность опыта пятикратная.

Показано (табл. 2), что оба препарата (исходный цеолит ЦПС и его кислотная форма ЦПС-H+) частично снимали фитотоксическое действие остатков гербицида в почве. При этом они обладали умеренной собственной фитотоксичностью; достоверная разница между воздействием образцов ЦПС-исх и ЦПС-H+ отсутствовала. К таким выводам приводило примерно одинаковое воздействие на растения цеолитов независимо от того, содержался в почве гербицид или нет. При этом угнетение растений было существенно меньше, чем в случае контрольного варианта с внесением гербицида. Эти эффекты прослежены как в случае контроля массы только надземных частей растения, так и для целого растения. Подобные сравнительные эксперименты проведены также после 3-недельной экспозиции образцов цеолитов ЦПС-исх и ЦПС-H+ в почве перед посевом. Полученные при этом данные (табл. 3) находились в соответствии со сделанными выводами на основании анализа результатов, приведенных в табл. 2. Вместе с тем в случае экспозиции препаратов перед посевом фитотоксичность цеолитов существенно снижалась. Полученные данные схематично представлены на рис. 3.

Таблица 3.

Влияние цеолитов на массу растений рапса в присутствии гербицида и без него (после 3-недельной экспозиции перед посевом)

Марка цеолита Цеолит, кг/га Зингер, СП г/га Масса, г Снижение массы тест-растений, % к контролю
повторности средние
1 2 3 4 5
ЦПС-исх 100 18.2 13.1 14.9 15.3 15.4 7.2
0.4 15.3 14.0 16.9 16.3 13.7 15.2 8.4
ЦПС-Н+ 15.6 16.7 15.9 14.4 15.4 15.6 6.0
0.4 18.2 15.4 16.3 14.5 16.1 3.0
Контроль (Зингер, СП) 0.4 11.4 10.5 13.5 10.1 11.4 11.4 31.3
Контроль без цеолита и гербицида 17.3 16.6 16.6 14.5 17.9 16.6 0
ЦПС-исх 100 19.7 14.0 15.9 17.4 16.8 14.7
0.4 16.8 17.1 18.5 17.8 15.7 17.2 12.7
ЦПС-Н+ 18.6 17.4 18.8 16.4 17.0 17.6 10.7
0.4 20.6 17.8 17.3 15.7 17.9 9.1
Контроль (Зингер, СП) 0.4 14.3 12.5 14.7 12.0 14.7 13.6 31.0
Контроль без цеолита и гербицида 18.2 23.7 21.0 17.1 18.7 19.7 0
Рис. 3.

Влияние цеолитов на массу растений рапса в присутствии гербицида и без него: (а) – без экспозиции перед посевом, (б) – после 3-недельной экспозиции перед посевом.

Таким образом, в качестве попытки интерпретации полученных результатов можно сделать некоторые предварительные предположения, касающиеся механизма действия цеолитов в почве. Существуют данные, указывающие на то, что цеолиты эффективно сорбируют гуминовые кислоты из воды [17]. Кроме того, авторы этой статьи в другой своей работе показали, что образующиеся при этом агрегаты цеолитов с гуминовыми кислотами способны извлекать из воды гербициды ряда фенилмочевины [18].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Таким образом, можно предположить, что в данном случае в почве образуются агрегаты цеолитов с гуминовыми соединения (Humic acid), которые сорбируют, а возможно и разлагают содержащийся в почве метсульфурон-метил. Эти предположения, безусловно, требуют экспериментальной проверки, которой будут посвящены последующие работы.

Список литературы

  1. Sangeetha C., Baskar P. Zeolite and its potential uses in agriculture: A critical review // Agricult. Rev. 2016. V. 37. № 2. P. 101–108. https://doi.org/0.18805/ar.v0iof.9627

  2. Rumesh K., Reddy D.D., Biswas A.K., Subbarao A. Potential uses of zeolite in agricultrure // Adv. Agron. 2012. V. 113. P. 215–236. https://doi.org/1016/B978-0-12-386473-4-00009-9

  3. Salvestrini S., Sagliano P., Lovino P., Capasso S., Collella C. Atrazine absorption by acid activated zeolited rich tuff // Appl. Clay Sci. 2010. V. 49. № 3. P. 330–335. https://doi.org/1016/j.clay.2010.04.08

  4. Jamil T.S., Gad-Allah T.A., Ibrahim H.S., Saleh T.S. Adsorption and isothermal models of atrazine by zeolite prepared from Egiptian kaolin // Solid States Sci. 2011. V. 13. № 1. P. 1998–2003. https://doi.org/1016/j.solidstatesciences.2010.11.014

  5. Li Y., Zimmerman W.T., Gorman M.K., Reiser R.W., Fogel A.J., Haney P.E. Aerobic soil methabolism of metsulfuron-methyl // Pest. Sci. 1999. V. 55. P. 434–445.

  6. Haney A.K., Sabadie J. Hydrolysis of sulfonylurea in soil and aqueous solution: a Review // Agric. Food Chem. 2002. V. 50. № 22. P. 6253–6265. https://doi.org/10.107/s11356-014-2512-9

  7. Grey T.L., McCullough P.E. Sulfonylurea herbicides fatein soil: Dissipation, mobility, and other process // Weed Technol. 2012. V. 26. № 3. P. 579–581. D oi: https://doi.org/10.1614/WT-D-11-00168.1

  8. Chkanikov N.D., Spiridonov Yu.Ya., Khalikov S.S., Muzafarov A.M. Antidotes to reduce phitotoxicity of Sulfonylurea herbicides // INEOS OPEN. 2019. V. 2. № 5. P. 145–152. https://doi.org/103293/io1921r

  9. Spiridonov Ju.Ja., Mukhin V.M., Karpachev V.V., Gorshkov V.I., Gorshkova E.K., Voropaeva N.L., Figovsky O.L. Soil detoxication by the means of activated carbon inbreeding process // Inter. Lett. Natur. Sci. 2017. V. 62. P. 28–64. https://doi.org/10.18052/scipress.com/ILNS.62.28

  10. Gregg S.J., Sing K.S. Adsorption, surface area and porosity. London: Acad. Press, 1982. 437 p.

  11. Qianqian Y., Huayang S., Houxiang S., Lei L., Xiaochun Z., Shenyong R., Qiaoxia G., Baojian S. Highly mesoporous IM-5 zeolite prepared by alkaline treatment and its catalytic cracking performance // Microporous and Mesoporous Materials. 2019. V. 273. № 1. P. 297–306. https://doi.org/10.1016/j.micromeso.2018.08.016

  12. Thommes M., Skudas R., Unger K.K., Lubda D. Textural characterization of native and n-alky-bonded silica monoliths by mercury intrusion/extrusion, inverse size exclusion chromatography and nitrogen adsorption // J. Chromatography A. 2008. V. 1191. № 1–2. P. 57–66. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2008.03.077

  13. Pastukhov A.V. Mesoporous polymer systems based on divinylbenzene copolymers modified with linear rubbers // Europ. Polymer J. 2020. V. 124. № 109480.https://doi.org/10.1016/j.eurpolymj.2020.109480

  14. Lowell S., Shields J.E., Thomas M.A., Thommes M. Characterization of porous solids and powders: Surface area, pore size and density. Springer, 2004. 347 p.https://doi.org/10.1007/978-1-4020-2303-3

  15. Landers J., Gor G.Yu., Neimark A.V. Density functional theory methods for characterization of porous materials // Colloids and Surfaces A: Physicochem. Eng. Aspects. 2013. V. 437. № 11. P. 3–32.https://doi.org/10.1016/j.colsurfa.2013.01.007

  16. Ravikovitch P.I., Vishnyakov A., Russo R., Neimark A.V. Unified approach to pore size characterization of microporous carbonaceous materials from N2, Ar, and CO2 adsorption isotherms // Langmuir. 2000. V. 16. № 5. P. 2311–2320.https://doi.org/10.1021/la991011c

  17. Capasso S., Coppola E., Lovino P., Selvestrini S., Collela C. Sorption of humic acids on zeolitic tuffs // Microporous and Mesoporous Materials. 2007. V. 105 № 3. P. 324–328. https://doi.org/10.16/j.micromeso.2007.04.017

  18. Capasso S., Coppola E., Lovino P., Selvestrini S., Collela C. Uptake of phenylurea herbicides by humic acid-zeolitic tuff aggregate // Stud. Surfase Sci. Catalis. 2007. V. 170. P. 2122–2127.

Дополнительные материалы отсутствуют.