Журнал аналитической химии, 2022, T. 77, № 3, стр. 263-268

Микроэкстракционное выделение 17-β-эстрадиола из лекарственных препаратов для последующего ВЭЖХ-УФ-определения

З. Р. Якупова ab*, С. А. Лебединец a, К. С. Вах a, С. Ю. Гармонов b, А. В. Булатов a

a Санкт-Петербургский государственный университет, Институт химии
198504 Санкт-Петербург, Петергоф, Университетский просп., 26, Россия

b Казанский национальный исследовательский технологический университет
420015 Казань, ул. К. Маркса, 68, Республика Татарстан, Россия

* E-mail: yakupovalab@yandex.ru

Поступила в редакцию 08.06.2021
После доработки 21.06.2021
Принята к публикации 21.06.2021

Аннотация

Предложен способ хроматографического определения 17-β-эстрадиола в лекарственных препаратах, включающий микроэкстракционное выделение аналита из раствора пробы. Процедура предполагает диспергирование экстрагента (1-додеканола) в водной фазе при вращении хлопкового диска, оснащенного вкладышем магнитной мешалки. Образование эмульсии экстрагента обеспечивает быстрый массоперенос целевого аналита. При вращении диска в водной фазе также происходит образование центрального вихря, в котором формируется капля экстракта при последующем разрушении эмульсии. Охлаждение экстракционной системы обеспечивает кристаллизацию экстракта, который отбирают для выполнения анализа методом ВЭЖХ-УФ. Достигнут предел обнаружения (3σ) 0.03 мг/л. Аналитические возможности разработанного способа показаны на примере определения 17-β-эстрадиола в трансдермальных гелях.

Ключевые слова: микроэкстракция, высокоэффективная жидкостная хроматография, 17-β-эстрадиол, трансдермальный гель.

Список литературы

  1. Ruggiero RJ, Likis FE. Estrogen: Physiology, pharmacology, and formulations for replacement therapy // J. Midwifery Womens Health. 2002. V. 47. № 3. P. 130. https://doi.org/10.1016/S1526-9523(02)00233-7

  2. Ricanyova J., Gadzala-Kopciuch R., Reiffova K., Bazel Y., Buszewski B. Molecularly imprinted adsorbents for preconcentration and isolation of progesterone and testosterone by solid phase extraction combined with HPLC // Adsorption. 2010. V. 16. P. 473. https://doi.org/10.1007/s10450-010-9265-7

  3. Середа Е.Е., Кондакова И.В., Слонимская Е.М. Ферменты метаболизма эстрогенов и рецепторы как факторы риска развития и прогноза при раке молочной железы // Сибирский онкологический журн. 2004. № 1(9). С. 35. (Sereda E.E., Kondakova I.V., Slonimskaya E.M. Enzymes of estrogen metabolism and receptors as risk factors for the development and prognosis in breast cancer // Siberian J. Oncol. 2004. V. 1. № 9. P. 35.)

  4. Saini Shivender Singh. A novel hybrid micro extraction for the sensitive determination of 17b-estradiol in water samples // Anal. Methods. 2020. V. 12. P. 2614. https://doi.org/10.1039/D0AY00581A

  5. Robles J., Marcos J., Renau N., Garrostas L., Segura J., Ventura R., Barceló B., Barceló A., Pozo O.J. Quantifying endogenous androgens, estrogens, pregnenolone and progesterone metabolites in human urine by gas-chromatography tandem mass spectrometry // Talanta. 2017. V. 169. P. 20. https://doi.org/10.1016/j.talanta.2017.03.032

  6. DeMaleki Z, Lai EPC, Dabek-Zlotorzynska E. Capillary electrophoresis characterization of molecularly imprinted polymer particles in fast binding with 17α-estradiol // J. Sep. Sci. 2010. V. 33. P. 2796. https://doi.org/10.1002/jssc.201000257

  7. Zhao L., Lin J.M., Li Z., Ying X. Development of a highly sensitive, second antibody format chemiluminescence enzyme immunoassay for the determination of 17β-estradiol in wastewater // Anal. Chim. Acta. 2006. V. 558. P. 290. https://doi.org/10.1016/j.aca.2005.11.034

  8. Kim Y.S., Jung H.S., Matsuura T., Lee H.Y., Kawai T., Gu M.B. Electrochemical detection of 17β-estradiol using DNA aptamer immobilized gold electrode chip // Biosens. Bioelectron. 2007. V. 22. P. 2525. https://doi.org/10.1016/j.bios.2006.10.004

  9. Крылов В.А., Крылов А.В., Мосягин П.В., Маткивская Ю.О. Жидкофазное микроэкстракционное концентрирование примесей // Журн. аналит. химии. 2011. Т. 6. № 4. С. 341. (Krylov V.A., Krylov A.V., Mosyagin P.V., Matkivskaya Yu.O. Liquid-phase microextraction concentration of impurities // J. Anal. Chem. 2011.V. 6. № 4. P. 341.) https://doi.org/10.31857/S0044450220100059

  10. Дмитриенко С.Г., Апяри В.В., Толмачева В.В., Горбунова М.В. Дисперсионная жидкостно-жидкостная микроэкстракция органических соединений. Обзор обзоров // Журн. аналит. химии. 2020. Т. 75. № 10. С. 867. (Dmitrienko S.G., Apyari V.V., Tolmacheva V.V., Gorbunova M.V. Dispersion liquid-liquid microextraction of organic compounds. Review of Reviews // J. Anal. Chem. 2020. V. 75. № 10. P. 867.) https://doi.org/10.31857/S0044450220100059

  11. Olatz Zuloaga, Maitane Olivares, Patricia Navarro, Asier Vallejo, Ailette Prieto. Dispersive liquid-liquid microextraction: Trends in the analysis of biological samples // Bioanalysis. 2015. V. 7. № 17. P. 2211. https://doi.org/10.4155/bio.15.141

  12. Mansour F.R., Khairy M.A. Pharmaceutical and biomedical applications of dispersive liquid–liquid microextraction // J. Chromatogr. B: Anal. Technol. Biomed. Life Sci. 2017. V. 1061–1062. P. 382. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2017.07.055

  13. Andruch Vasil, Ioseph S. Balogh, Lívia Kocúrová, Jana Šandrejová. Five years of dispersive liquid–liquid microextraction // Appl. Spectrosc. Rev. 2013. V. 48. № 3. P. 161. https://doi.org/10.1080/05704928.2012.697087

  14. Mansour F.R., Danielson N.D. Solidification of floating organic droplet in dispersive liquid-liquid microextraction as a green analytical tool // Talanta. 2017. V. 170. P. 22. https://doi.org/10.1016/j.talanta.2017.03.084

  15. Jafarinejad M., Ezoddin M., Lamei N., Abdi K., Babhadi-Ashar N., Pirooznia N., Akhgari M. Effervescent tablet-assisted demulsified dispersive liquid–liquid microextraction based on solidification of floating organic droplet for determination of methadone in water and biological samples prior to GC-flame ionization and GC−MS // J. Sep. Sci. 2020. V. 43. № 16. P. 3266. https://doi.org/10.1002/jssc.202000078

  16. Wang, X., Wang Y., Zou X., Cao Y. Improved dispersive liquid-liquid microextraction based on the solidification of floating organic droplet method with a binary mixed solvent applied for determination of nicotine and cotinine in urine // Anal. Methods. 2014. V. 6. № 7. P. 2384. https://doi.org/10.1039/C3AY42308E

  17. Farahmand Farnaz, Bahar Ghasemzadeh, Abdolhossein Naseri. Air-assisted liquid–liquid microextraction using floating organic droplet solidification for simultaneous extraction and spectrophotometric determination of some drugs in biological samples through chemometrics methods // Spectrochim. Acta A: Mol. Biomol. Spectrosc. 2018. № 188. P. 72. https://doi.org/10.1016/j.saa.2017.06.069

  18. Pelit F.O., Yengin T. Application of solidified floating organic drop microextraction method for biomonitoring of chlorpyrifos and its oxon metabolite in urine samples // J. Chromatogr. B: Anal. Technol. Biomed. Life Sci. 2014. V. 949. P. 109. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2014.01.004

  19. Regueiro J., Llompart M., Garcia-Jares C., Garcia-Monteagudo J.C., Cela R. Ultrasound-assisted emulsification-microextraction of emergent contaminants and pesticides in environmental waters // J. Chromatogr. A. 2008. V. 1190. P. 27. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2008.02.091

  20. Shishov A., Chromá R., Vakh C., Kuchár J., Simon A., Andruch V., Bulatov A. In situ decomposition of deep eutectic solvent as a novel approach in liquid-liquid microextraction // Anal. Chim. Acta. 2019. V. 1065. P. 49. https://doi.org/10.1016/j.aca.2019.03.038

  21. Perez Avila A.D., Rodriguez-Barona S., Fontalvo-Alzate J. Molecular toxicity of potential liquid membranes for lactic acid removal from fermentation broths using lactobacillus Casei ATCC 393 // DYNA. 2018. V. 85. P. 360. https://doi.org/10.15446/dyna.v85n207.72374

  22. Maryadele J. O’Neil. The Merck Index: An Encyclopedia of Chemicals, Drugs and Biologicals. Cambridge, UK: Royal Society of Chemistry, 2013. P. 6.

Дополнительные материалы отсутствуют.