Журнал аналитической химии, 2023, T. 78, № 2, стр. 159-165

Автоматизированная жидкостная микроэкстракция фторхинолонов для их последующего хроматографического определения

И. И. Тимофеева a***, К. А. Барбаянов a, А. В. Булатов a

a Санкт-Петербургский государственный университет, Институт химии
198504 Санкт-Петербург, Университетский просп., 26, Россия

* E-mail: i.i.timofeeva@spbu.ru
** E-mail: timofeeva.irina.7@gmail.com

Поступила в редакцию 30.04.2022
После доработки 11.07.2022
Принята к публикации 19.07.2022

Аннотация

Разработан автоматизированный способ дисперсионной жидкостной микроэкстракции антибиотиков фторхинолонового ряда на принципах циклического инжекционного анализа. Способ предполагает диспергирование экстрагента газовой фазой, которая образуется in situ в экстракционной камере проточного анализатора. В качестве экстрагента для выделения и концентрирования фторхинолонов изучен глубокий эвтектический растворитель на основе терпеноида и смеси гидрофильной и гидрофобной карбоновых кислот, и обоснована возможность его применения. Гидрофильная карбоновая кислота в составе экстрагента выступает донором протонов для образования углекислого газа-диспергатора в присутствии растворенного в водной фазе карбоната натрия. На примере определения фторхинолонов в сточных водах показана возможность сочетания разработанного способа с методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с флуориметрическим детектированием. Пределы обнаружения (3σ) для офлоксацина, флероксацина и норфлоксацина составили 0.3 мкг/л.

Ключевые слова: дисперсионная жидкостная микроэкстракция, автоматизация, фторхинолоны, глубокий эвтектический растворитель, сточные воды, жидкостная хроматография.

Список литературы

  1. Крылов В.А., Крылов А.В., Мосягин П.В., Маткивская Ю.О. Жидкофазное микроэкстракционное концентрирование примесей // Журн. аналит. химии. 2011. Т. 66. С. 341.

  2. Дмитриенко С.Г., Апяри В.В., Толмачева В.В., Горбунова М.В. Жидкостная экстракция органических соединений в каплю экстрагента. Обзор обзоров // Журн. аналит. химии. 2021. Т. 76. № 8. С. 675. https://doi.org/10.31857/S0044450221080041

  3. Дмитриенко С.Г., Апяри В.В., Толмачева В.В., Горбунова М.В. Дисперсионная жидкостно-жидкостная микроэкстракция органических соединений. Обзор обзоров // Журн. аналит. химии. 2020. Т. 75. № 10. С. 867. https://doi.org/10.31857/S0044450220100059

  4. Золотов Ю.А. Проточный химический анализ: монография. М.: Наука, 2014. 428 с.

  5. Цизин Г.И., Статкус М.А., Золотов Ю.А. Сорбционное и экстракционное концентрирование микрокомпонентов в проточных системах анализа // Журн. аналит. химии. 2015. Т. 70. № 11. С. 1123.

  6. Vakh C., Falkova M., Timofeeva I., Moskvin A., Moskvin L., Bulatov A. Flow analysis: A novel approach for classification // Crit. Rev. Anal. Chem. 2016. V. 46 P. 374. https://doi.org/10.1080/10408347.2015.1087301

  7. Вах К.С., Тимофеева И.И., Булатов А.В. Автоматизация микроэкстракционного концентрирования на принципах циклического инжекционного анализа // Журн. аналит. химии. 2019. Т. 74. № 11. С. 846. https://doi.org/10.1134/S106193481911011X

  8. Smith E.L., Abbott A.P., Ryder K.S. Deep eutectic solvents (DESs) and their applications // Chem. Rev. 2014. V. 114. № 21. P. 11060. https://doi.org/10.1021/cr300162p

  9. Shishov A., Bulatov A., Locatelli M., Carradori S., Andruch V. Application of deep eutectic solvents in analytical chemistry. A review // Microchem. J. 2017. V. 135. P. 33. https://doi.org/10.1016/j.microc.2017.07.015

  10. Cao J., Su E. Hydrophobic deep eutectic solvents: The new generation of green solvents for diversified and colorful applications in green chemistry // J. Clean. Prod. 2021. V. 314. Article 127965. https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2021.127965

  11. Ma Y., Wang Q., Zhu T. Comparison of hydrophilic and hydrophobic deep eutectic solvents for pretreatment determination of sulfonamides from aqueous environments // Anal. Methods. 2019. V. 11. P. 5901. https://doi.org/10.1039/C9AY02244A

  12. Turnidge J. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of fluoroquinolones // Drugs. 1999. V. 58. P. 29. https://doi.org/10.2165/00003495-199958002-00006

  13. Martins M.A.R., Crespo E.A., Pontes P.V.A., Silva L.P., Bülow M., Maximo G.J., Batista E.A.C., Held C., Pinho S.P., Coutinho J.A.P. Tunable hydrophobic eutectic solvents based on terpenes and monocarboxylic acid // ACS Sustain. Chem. Eng. 2018. V. 6. P. 8836. https://doi.org/10.1021/acssuschemeng.8b01203

  14. Taverniers I., De Loose M., Van Bockstaele E. Trends in quality in the analytical laboratory. II. Analytical method validation and quality assurance // Trends Anal. Chem. 2004. V. 23. P. 535. https://doi.org/10.1016/j.trac.2004.04.001

  15. Herrera-Herrera A.V., Hernández-Borges J., Borges-Miquel T.M., Rodríguez-Delgado M.Á. Dispersive liquid-liquid microextraction combined with ultra-high performance liquid chromatography for the simultaneous determination of 25 sulfonamide and quinolone antibiotics in water samples // J. Pharm. Biomed. Anal. 2013. V. 75. P. 130. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2012.11.026

  16. Selahle S.K., Nomngongo P.N. Determination of fluoroquinolones in the environmental samples using vortex assisted dispersive liquid-liquid microextraction coupled with high performance liquid chromatography // Int. J. Environ. Anal. Chem. 2020. V. 100. P. 282. https://doi.org/10.1080/03067319.2019.1636042

  17. Herrera-Herrera A.V., Hernández-Borges J., Borges-Miquel T.M., Rodríguez-Delgado M.Á. Dispersive liquid–liquid microextraction combined with nonaqueous capillary electrophoresis for the determination of fluoroquinolone antibiotics in waters // Electrophoresis. 2010. V. 31. P. 3457. https://doi.org/10.1002/elps.201000285

Дополнительные материалы отсутствуют.