1. На главную
  2. Электронные версии
  3. Цитология
  4. T. 65, № 4, 2023

Цитология, 2023, T. 65, № 4, стр. 348-353

Синаптофизин в супраэпендимных структурах головного мозга крысы

В. А. Разенкова 1, *, О. В. Кирик 1

1 Институт экспериментальной медицины
197376 Санкт-Петербург, Россия

* E-mail: valeriya.raz@yandex.ru

Поступила в редакцию 12.03.2023
После доработки 29.03.2023
Принята к публикации 04.04.2023

Аннотация

Cупраэпендимное сплетение желудочков головного мозга – одно из самых загадочных структурных образований центральной нервной системы. Поскольку как топография супраэпендимных элементов, так и их функциональное значение остаются неясными, целью настоящего исследования стало изучение распределения супраэпендимных структур в пределах желудочковой системы головного мозга крыс с использованием функционального иммуногистохимического маркера – синаптофизина. С помощью иммуногистохимической реакции на синаптофизин и тирозингидроксилазу были изучены последовательные срезы головного мозга крыс Вистар (4–6 мес., n = 6). Показано, что супраэпендимные структуры образуют на апикальной поверхности эпендимоцитов некрупные дискретные скопления, что указывает на зоны формирования синаптических контактов. Установлено, что катехоламинергические волокна присутствуют на поверхности эпендимоцитов всех исследованных областей, при этом наличие нервных волокон на поверхности желудочков не всегда сопряжено с наличием в них синаптофизина. Таким образом предполагается, что функциональное назначение супраэпендимного нервного сплетения зависит от его локализации и может быть связано как с регуляцией функционального статуса эпендимных клеток и формированием состава ликвора, так и с образованием межнейронных синаптических коммуникаций.

Ключевые слова: синаптофизин, желудочки головного мозга, тирозингидроксилаза, иммуногистохимия

Список литературы

  1. Колос Е.А., Григорьев И.П., Коржевский Д.Э. 2015. Маркер синаптических контактов – синаптофизин. Морфология. Т. 147. № 1. С. 78. (Kolos E.A., Grigoriyev I.P., Korzhevskiy D.E. 2015. A synaptic marker synaptophysin. Morphologija. V. 147. № 1. P. 78.)

  2. Муртазина А.Р., Бондаренко Н.С., Пронина Т.С., Чандран К.И., Богданов В.В., Дильмухаметова Л.К., Угрюмов М.В. 2021. Сравнительный анализ содержания моноаминов как нейрогормонов в ликворе и крови крыс в онтогенезе. Acta Naturae. Т. 13. № 4. С. 89. https://doi.org/10.32607/actanaturae.11516 (Murtazina A.R., Bondarenko N.S., Pronina T.S., Chandran K.I., Bogdanov V.V., Dilmukhametova L.K., Ugrumov M.V. 2021. A comparative analysis of CSF and the blood levels of monoamines as neurohormones in rats during ontogenesis. Acta Naturae. V. 13. № 4. P. 89.)

  3. Суфиева Д.А., Кирик О.В., Коржевский Д.Э. 2019. Астроцитарные маркеры в таницитах третьего желудочка головного мозга крысы в постнатальном онтогенезе и при старении. Онтогенез. Т. 50. № 3. С. 205. https://doi.org/10.1134/S0475145019030066 (Sufieva D.A., Kirik O.V., Korzhevskii D.E. 2019. Astrocyte markers in the tanycytes of the third brain ventricle in postnatal development and aging in rats. Russ. J. Dev. Biol. V. 50. P. 146.)

  4. Угрюмов М.В. 2009. Эндокринные функции мозга у взрослых млекопитающих и в онтогенезе. Онтогенез. Т. 40. № 1. С. 19. (Ugryumov M.V. 2009. Endocrine functions of brain in adult and developing mammals. Russ. J. Dev. Biol. V. 40. № 1. P. 14.)

  5. Calhoun M.E., Jucker M., Martin L.J., Thinakaran G., Price D.L., Mouton P.R. 1996. Comparative evaluation of synaptophysin-based methods for quantification of synapses. J. Neurocytol. V. 25. P. 821. https://doi.org/10.1007/BF02284844

  6. Chan-Palay V. 1976. Serotonin axons in the supra- and subependymal plexuses and in the leptomeninges; their roles in local alterations of cerebrospinal fluid and vasomotor activity. Brain Res. V. 102. P. 103. https://doi.org/10.1016/0006-8993(76)90578-3

  7. Cupédo R.N.J. 1977. The surface ultrastructure of the habenular complex of the rat. Anat. Embryol. V. 152. P. 43. https://doi.org/10.1007/BF00341434

  8. Cupédo R.N.J., de Weerd H. 1980. Serotonergic intraventricular axons in the habenular region. Phagocytosis after induced degeneration. Anat. Embryol. V. 158. P. 213. https://doi.org/10.1007/BF00315907

  9. Haemmerle C.A., Nogueira M.I., Watanabe I.S. 2015. The neural elements in the lining of the ventricular-subventricular zone: making an old story new by high-resolution scanning electron microscopy. Front. Neuroanat. V. 9. https://doi.org/10.3389/FNANA.2015.00134

  10. Hámori J., Somogyi J. 1983. Differentiation of cerebellar mossy fiber synapses in the rat: a quantitative electron microscope study. J. Comp. Neurol. V. 220. P. 365. https://doi.org/10.1002/CNE.902200402

  11. Janz R., Südhof T.C., Hammer R.E., Unni V., Siegelbaum S.A., Bolshakov V.Y. 1999. Essential roles in synaptic plasticity for synaptogyrin I and synaptophysin I. Neuron. V. 24. P. 687. https://doi.org/10.1016/S0896-6273(00)81122-8

  12. Korzhevskii D.E., Sukhorukova E.G., Kirik O.V., Grigorev I.P. 2015. Immunohistochemical demonstration of specific antigens in the human brain fixed in zinc-ethanol-formaldehyde. Eur. J. Histochem. V. 59. P. 5. https://doi.org/10.4081/EJH.2015.2530

  13. Martínez P.M., de Weerd H. 1977. The fine structure of the ependymal surface of the recessus infundibularis in the rat. Anat. Embryol. V. 151. P. 241. https://doi.org/10.1007/BF00318929

  14. Mollgard K., Wiklund L. 1979. Serotoninergic synapses on ependymal and hypendymal cells of the rat subcommissural organ. J. Neurocytol. V. 8. P. 445. https://doi.org/10.1007/BF01214802

  15. Mullier A., Bouret S.G., Prevot V., Dehouck B. 2010. Differential distribution of tight junction proteins suggests a role for tanycytes in blood-hypothalamus barrier regulation in the adult mouse brain. J. Comp. Neurol. V. 518. P. 943. https://doi.org/10.1002/CNE.22273

  16. Navone F., Jahn R., Di Gioia G., Stukenbrok H., Greengard P., De Camilli P. 1986. Protein p38: an integral membrane protein specific for small vesicles of neurons and neuroendocrine cells. J. Cell Biol. V. 103. P. 2511. https://doi.org/10.1083/JCB.103.6.2511

  17. Page R.B. 2006. Anatomy of the hypothalamo-hypophysial omplex. In: Physiology of Reproduction. Academic Press. P. 1309.

  18. Rabey J.M., Hefti F. 1990. Neuromelanin synthesis in rat and human substantia nigra. J. Neural Transm.: Parkinson’s Dis. Dementia Sect. V. 2. P. 1. https://doi.org/10.1007/BF02251241

  19. Richards J.G., Lorez H.P., Colombo V.E., Guggenheim R., Kiss D., Wu J.Y. 1981. Demonstration of supra-ependymal 5-HT nerve fibres in human brain and their immunohistochemical identification in rat brain. J. Physiol. (Paris). V. 77. P. 219.

  20. Tong C.K., Chen J., Cebrián-Silla A., Mirzadeh Z., Obernier K., Guinto C.D., Tecott L.H., García-Verdugo J.M., Kriegstein A., Alvarez-Buylla A. 2014. Axonal control of the adult neural stem cell niche. Cell Stem Cell. V. 14. P. 500. https://doi.org/10.1016/J.STEM.2014.01.014

  21. Troshev D., Bannikova A., Blokhin V., Kolacheva A., Pronina T., Ugrumov M. 2022. Striatal neurons partially expressing a dopaminergic phenotype: functional significance and regulation. Int. J. Mol. Sci. V. 23. https://doi.org/10.3390/IJMS231911054/S1

Дополнительные материалы отсутствуют.

Инструменты

следующая статья выпуска предыдущая статья выпуска содержание выпуска

Цитология

Архивы выпусков Информация о журнале Отправить рукопись в журнал