Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, 2020, T. 491, № 1, стр. 168-171
АНАЛИЗ ИЗМЕНЕНИЯ АКТИВНОСТИ ГЕНОВ, КОНТРОЛИРУЮЩИХ РЕГУЛЯЦИЮ ГЕМОПОЭЗА ПРИ ФОРМИРОВАНИИ ОПУХОЛЕЙ У ОБЛУЧЕННЫХ МЫШЕЙ
Д. В. Салеева 1, *, В. Ф. Михайлов 1, Л. М. Рождественский 1, Л. В. Шуленина 1, Н. Ф. Раева 1, Г. Д. Засухина 1, 2
1 ФГБУ ГНЦ Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна ФМБА России
Москва, Россия
2 Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова Российской академии наук
Москва, Россия
* E-mail: dasha_saleeva@inbox.ru
Поступила в редакцию 04.12.2019
После доработки 04.12.2019
Принята к публикации 04.12.2019
Аннотация
В опытах на 183 мышах (CBA × C57Bl) F1 изучали отдаленные эффекты на 8 и 10 месяцы после воздействия низкомощностного пролонгированного γ-облучения в дозе 12.6 Гр (10 мГр/мин). На 8 месяц в костном мозге (КМ) отмечено увеличение экспрессии транскрипционного фактора (ТФ) NFkB и его генов-мишеней (iNOS, G-SCF). На 10 месяц у 14 из 94 мышей отмечено появление злокачественных лимфом в печени, брюшной полости и подкожно. В КМ этих мышей обнаружено ингибирование транскрипции генов PTEN, NFkB, iNOS, а также снижение содержания длинных некодирующих РНК (днРНК) lnc p21, NEAT1 и микроРНК miR-125b. На 10 месяц в КМ облученных мышей без выхода опухолей отмечается ингибирование экспрессии гена NFkB(р65) и miR-125b. Данные свидетельствуют о дисрегуляции Р53-системы поддержания стабильности генома в КМ у облученных мышей. Эти показатели будут исследованы на предмет возможности их использования в качестве маркеров риска развития радиоционно-индуцированных опухолей.
Применение современных технологий для анализа генома и транскриптома показывает, что онкотрансформация клеток связана со структурными нарушениями генов, кодирующих белки и регуляторные РНК, и изменениями их экспрессии. Актуальной задачей является исследование этих генетических и эпигенетических изменений, поскольку они могут выступать в качестве показателей риска развития опухолей.
В настоящее время показано, что появление в организме злокачественных новообразований, включая солидные опухоли, активирует пластичность клеток в опухолевом микроокружении и КМ, направленную как на стимуляцию врожденного иммунитета, так и защиту новообразований [1].
В процессе онкотрансформации иммунокомпетентных клеток могут принимать участие различные факторы: активные формы кислорода (АФК), регуляторные РНК и цитокины. В литературе описано возникновение лимфом в отдаленные сроки после действия сублетальных доз радиации на мышей [2].
Целью нашей работы явилось изучение изменения экспрессии генов и некодирующих РНК в КМ мышей в отдаленные сроки после воздействия низкомощностного пролонгированного облучения.
В работе использовали мышей-гибридов (CBA × C57Bl) F1, самцов массой 20–24 г. Исследования проводили в соответствии с требованиями нормативно-правовых актов. Пролонгированное облучение мышей в дозе 12.6 Гр осуществляли на цезиевой гамма-установке Панорама-3С (10 мГр/мин). После облучения определяли профили экспрессии мРНК генов (p53, PTEN, TNFα, NFκβ(p50), NFκβ(p65), G-SCF, IAP-1, IAP-2, IκBα, iNOS, TAL1, CTCF), днРНК (NEAT1, MALAT1, DINO, lnc p21) и микроРНК (miR-21, miR-125b, miR-145) в КМ, полученном от 89 и 94 мышей на 8 и 10 месяцы после облучения соответственно.
Общую РНК и кДНК получали с использованием наборов фирмы ООО “Лаборатория Изоген” (Россия), ПЦР-РВ осуществляли с применением наборов “Thermo Scientific Maxima SYBR Green/ROX qPCR Master Mix (2X)” и специфических праймеров. Последовательность праймеров подбирали с помощью базы данных NCBI, а условия проведения ПЦР – экспериментальным путем. Уровень экспрессии исследуемых показателей нормировали относительно мРНК гена GAPDH.
Расчет относительной экспрессии исследуемых показателей проводили по методу ΔΔCt. Статистическую обработку результатов осуществляли с помощью программы “STATISTICA7.0”. Для оценки достоверности различий применяли непараметрический критерий Манна–Уитни при уровне значимости p < 0.05.
Статистически значимые отличия показателей на 8 и 10 месяцы после облучения от данных необлученного контроля представлены в табл. 1. На 8 месяц наблюдалось увеличение содержания мРНК в КМ у облученных мышей для генов NFkB(р50), NFkB(р65), G-SCF и iNOS.
Таблица 1.
8 месяц после облучения | |||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Мыши | NFkB(50) | NFkB(р65) | G-SCF | iNOS | IAP-1 | miR-125b | |||
Контрольные | 1.00 [0.9–1.37] |
1.00 [0.93–1.07] |
1.00 [0.55–1.04] |
1.00 [0.71–1.07] |
1.00 [0.87–1.15] |
1.00 [0.44–1.32] |
|||
Облученные | 1.27* [1.11–1.57] |
1.23* [1.00–1.52] |
1.19* [0.97–1.37] |
1.32* [1.07–1.74] |
0.81* [0.71–1.00] |
0.12* [0.04–0.33] |
|||
10 месяц после облучения | |||||||||
Мыши | PTEN | NFkB (р65) | IkBa | iNOS | NEAT1 | Lnc p21 | CTCF | TAL1 | miR-125b |
Контрольные | 1.00 [0.64–1.46] |
1.00 [0.81–1.87] |
1.00 [0.87–1.41] |
1.00 [0.76–1.62] |
1.00 [0.55–1.57] |
1.00 [0.93–1.41] |
1.00 [0.84–1.93] |
1.00 [0.9–1.57] |
1.00 [0.66-2.64] |
Облученные | 0.9 [0.68–1.37] |
0.87* [0.62–1.15] |
0.81* [0.70–1.23] |
1.07 [0.64–1.68] |
0.55 [0.37–1.11] |
1.15 [0.76–1.87] |
0.87 [0.59–1.27] |
0.78* [0.64–1.11] |
0.23* [0.05-1.74] |
Облученные, с опухолями | 0.64*,** [0.45–0.78] |
0.79* [0.66–0.90] |
1.11 [0.74–1.28] |
0.62*,** [0.54–1.04] |
0.42* [0.24–0.84] |
0.76** [0.52–1.24] |
0.58* [0.45–1.04] |
0.71* [0.5–0.9] |
0.04*,** [0.01-0.41] |
Примечание. * – Отличия показателей в группах “Контроль” и “Облучение” или “Контроль” и “Опухоль” статистически значимы (p < 0.05). ** – отличия показателей между группами “Облучение” и “Опухоль” статистически значимы (p < 0.05). Медианы групп контроля (необлученные мыши) на 8 и 10 месяцы после облучения приняты за единицу.
NF-κB индуцирует экспрессию цитокинов, а также гена MDM2 и miR-21, которые ингибируют активность р53-зависимой системы сохранения стабильности генома и, таким образом, способствуют увеличению жизнеспособности облученных клеток с поврежденным геномом и сохранению их пролиферативной активности [3].
Индуцибельная синтаза оксида азота (iNOS) генерирует свободные радикалы, оказывающие генотоксическое действие и участвующие в развитии рака [4].
На 8 месяц отмечается увеличение экспрессии NFkB и его генов – мишеней (iNOS, G-SCF), контролирующих пролиферацию и сохранение клеток с поврежденным геномом, что помогает злокачественным клеткам сохранять способность к выживанию. Следует отметить, что активацию NFkB в клетках КМ наблюдали уже на 6 месяц после облучения (1 Гр) мышей [5].
Таким образом, увеличение экспрессии изученных генов в КМ на 8 месяц может способствовать развитию состояния нестабильности генома, и, как следствие, выступать в качестве предикторов онкотрансформации клеток.
У 14 из 94 мышей, проанализированных на 10 месяц, гистологически были выявлены лимфомы в печени, брюшной полости и подкожно. В КМ мышей с опухолями отмечается значительное снижение экспрессии мРНК генов NFkB(р65), iNOS, CTCF, TAL1, днРНК NEAT1 и miR-125b по сравнению с показателями группы контроля и мРНК генов PTEN, iNOS, днРНК lnc p21 и miR-125b по отношению к группе облученных животных без опухолей.
Следует отметить, что к 10 месяцу в КМ мышей с опухолями гены и микроРНК, обладающие свойствами онкогенов (NFkB(р65), TAL1, lnc NEAT1 и miR-125b), либо онкосупрессоров (PTEN, lnc p21) снижают свою активность. У таких животных изменение экспрессии РНК показателей может быть связано не только с облучением, но и проникновением в КМ выделяемых опухолями “онкосом”.
С другой стороны, ниши, с поврежденным геномом возникшие в гемопоэтических стволовых клетках (ГСК) и сохранившиеся на 8 и 10 месяцы после облучения и возникающий из них пул прогениторных клеток в отдаленные сроки после облучения при выходе из КМ, увеличивают риск возникновения периферических новообразований.
Применение регрессионного анализа показало, что уровень экспрессии NFkB, определяемый на 8 месяц в КМ облученных мышей коррелировал с последующим выходом лимфом на 10 месяц после воздействия радиации (R = 0.9; p < 0.05).
Ген PTEN, lnc p21 и NEAT1 являются мишенями ТФ белка Р53. Мутации в гене р53 или его связывание с MDM2 могут ингибировать транскрипционную активность р53 и снижать экспрессию этих его мишеней [6].
PTEN является онкосупрессором и контролирует процессы образования АФК, клеточной пролиферации и стабильность генома, а также влияет на развитие Т- и В-клеток [7].
Уровень экспрессии miR-125b в КМ важен для регуляции ранних этапов дифференцировки кроветворных клеток. Высокая экспрессия miR-125b наблюдается в ГСК и необходима для сохранения их пула. Нарушение процессов самообновления и дифференцировки ГСК могут способствовать онкотрансформации [8].
Lnc p21 подавляет пролиферацию клеток и индуцирует апоптоз. Ее взаимодействие с MDM2 приводит к активации ТФ Р53. Наблюдаемый нами на 10 месяц в КМ пониженный уровень lnc p21 формируется и в лимфомах, и может служить прогностическим маркером.
Таким образом, изменение активности генов, днРНК и микроРНК, участвующих в гемопоэзе, может свидетельствовать о пластичности клеток не только в микроокружении опухоли, но и в КМ. Изучение экспрессии генов и некодирующих РНК и их взаимодействия важно для понимания процессов канцерогенеза, и в перспективе может быть использовано в качестве показателей риска развития лимфом и терапевтических мишеней для лечения новообразований.
Список литературы
Giles A., Chien C., Reid C., et al. // Pharmacology&Therapeutics. 2016. V. 168. P. 53–60.
Ina Y., Tanooka H., Yamada T., et al. // Radiation Research. 2005. V. 163. № 2. P. 153–158
Wang W., Subhasree A., Zhang R. // Curr. Med. Chem. 2015. V. 22. № 2. P. 264–289.
Bignon E., Rizza S., Filomeni G., et al. // Computational and Structural Biotechnology Journal. 2019. V. 17. P. 415–429.
Jangiam W., Udomtanakunchai C., Reungpatthanaphong P., et al. // Doze-Response. 2018. V. 16. № 4.
Михайлов В., Шуленина Л., Васильева И., и др. // Усп. совр. Биол. 2018. V. 138. № 5. P. 427–445.
Martelli A., Paganelli F., Fazio A., et al. // Cancers. 2019. V. 11. № 5. P. 629.
Shao L., Luo Y., Zhou D. // Antioxidants & Redox Signaling. 2014. V. 20. № 9. P. 1447–1462.
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Доклады Российской академии наук. Науки о жизни