Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, 2020, T. 491, № 1, стр. 168-171

АНАЛИЗ ИЗМЕНЕНИЯ АКТИВНОСТИ ГЕНОВ, КОНТРОЛИРУЮЩИХ РЕГУЛЯЦИЮ ГЕМОПОЭЗА ПРИ ФОРМИРОВАНИИ ОПУХОЛЕЙ У ОБЛУЧЕННЫХ МЫШЕЙ

Д. В. Салеева 1*, В. Ф. Михайлов 1, Л. М. Рождественский 1, Л. В. Шуленина 1, Н. Ф. Раева 1, Г. Д. Засухина 12

1 ФГБУ ГНЦ Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна ФМБА России
Москва, Россия

2 Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова Российской академии наук
Москва, Россия

* E-mail: dasha_saleeva@inbox.ru

Поступила в редакцию 04.12.2019
После доработки 04.12.2019
Принята к публикации 04.12.2019

Полный текст (PDF)

Аннотация

В опытах на 183 мышах (CBA × C57Bl) F1 изучали отдаленные эффекты на 8 и 10 месяцы после воздействия низкомощностного пролонгированного γ-облучения в дозе 12.6 Гр (10 мГр/мин). На 8 месяц в костном мозге (КМ) отмечено увеличение экспрессии транскрипционного фактора (ТФ) NFkB и его генов-мишеней (iNOS, G-SCF). На 10 месяц у 14 из 94 мышей отмечено появление злокачественных лимфом в печени, брюшной полости и подкожно. В КМ этих мышей обнаружено ингибирование транскрипции генов PTEN, NFkB, iNOS, а также снижение содержания длинных некодирующих РНК (днРНК) lnc p21, NEAT1 и микроРНК miR-125b. На 10 месяц в КМ облученных мышей без выхода опухолей отмечается ингибирование экспрессии гена NFkB(р65) и miR-125b. Данные свидетельствуют о дисрегуляции Р53-системы поддержания стабильности генома в КМ у облученных мышей. Эти показатели будут исследованы на предмет возможности их использования в качестве маркеров риска развития радиоционно-индуцированных опухолей.

Ключевые слова: P53, NFkB, микроРНК, днРНК, γ-облучение, отдаленные эффекты облучения, лимфома

Применение современных технологий для анализа генома и транскриптома показывает, что онкотрансформация клеток связана со структурными нарушениями генов, кодирующих белки и регуляторные РНК, и изменениями их экспрессии. Актуальной задачей является исследование этих генетических и эпигенетических изменений, поскольку они могут выступать в качестве показателей риска развития опухолей.

В настоящее время показано, что появление в организме злокачественных новообразований, включая солидные опухоли, активирует пластичность клеток в опухолевом микроокружении и КМ, направленную как на стимуляцию врожденного иммунитета, так и защиту новообразований [1].

В процессе онкотрансформации иммунокомпетентных клеток могут принимать участие различные факторы: активные формы кислорода (АФК), регуляторные РНК и цитокины. В литературе описано возникновение лимфом в отдаленные сроки после действия сублетальных доз радиации на мышей [2].

Целью нашей работы явилось изучение изменения экспрессии генов и некодирующих РНК в КМ мышей в отдаленные сроки после воздействия низкомощностного пролонгированного облучения.

В работе использовали мышей-гибридов (CBA × C57Bl) F1, самцов массой 20–24 г. Исследования проводили в соответствии с требованиями нормативно-правовых актов. Пролонгированное облучение мышей в дозе 12.6 Гр осуществляли на цезиевой гамма-установке Панорама-3С (10 мГр/мин). После облучения определяли профили экспрессии мРНК генов (p53, PTEN, TNFα, NFκβ(p50), NFκβ(p65), G-SCF, IAP-1, IAP-2, IκBα, iNOS, TAL1, CTCF), днРНК (NEAT1, MALAT1, DINO, lnc p21) и микроРНК (miR-21, miR-125b, miR-145) в КМ, полученном от 89 и 94 мышей на 8 и 10 месяцы после облучения соответственно.

Общую РНК и кДНК получали с использованием наборов фирмы ООО “Лаборатория Изоген” (Россия), ПЦР-РВ осуществляли с применением наборов “Thermo Scientific Maxima SYBR Green/ROX qPCR Master Mix (2X)” и специфических праймеров. Последовательность праймеров подбирали с помощью базы данных NCBI, а условия проведения ПЦР – экспериментальным путем. Уровень экспрессии исследуемых показателей нормировали относительно мРНК гена GAPDH.

Расчет относительной экспрессии исследуемых показателей проводили по методу ΔΔCt. Статистическую обработку результатов осуществляли с помощью программы “STATISTICA7.0”. Для оценки достоверности различий применяли непараметрический критерий Манна–Уитни при уровне значимости p < 0.05.

Статистически значимые отличия показателей на 8 и 10 месяцы после облучения от данных необлученного контроля представлены в табл. 1. На 8 месяц наблюдалось увеличение содержания мРНК в КМ у облученных мышей для генов NFkB(р50), NFkB(р65), G-SCF и iNOS.

Таблица 1.

Содержание мРНК генов, микроРНК и днРНК (медиана и квартили), имеющих статистически значимые различия между изученными группами в костном мозге мышей на 8 и 10 месяцы после облучения

8 месяц после облучения
Мыши NFkB(50) NFkB(р65) G-SCF iNOS IAP-1 miR-125b
Контрольные 1.00
[0.9–1.37]
1.00
[0.93–1.07]
1.00
[0.55–1.04]
1.00
[0.71–1.07]
1.00
[0.87–1.15]
1.00
[0.44–1.32]
Облученные 1.27*
[1.11–1.57]
1.23*
[1.00–1.52]
1.19*
[0.97–1.37]
1.32*
[1.07–1.74]
0.81*
[0.71–1.00]
0.12*
[0.04–0.33]
10 месяц после облучения
Мыши  PTEN NFkB (р65) IkBa iNOS NEAT1 Lnc p21 CTCF TAL1 miR-125b
Контрольные 1.00
[0.64–1.46]
1.00
[0.81–1.87]
1.00
[0.87–1.41]
1.00
[0.76–1.62]
1.00
[0.55–1.57]
1.00
[0.93–1.41]
1.00
[0.84–1.93]
1.00
[0.9–1.57]
1.00
[0.66-2.64]
Облученные 0.9
[0.68–1.37]
0.87*
[0.62–1.15]
0.81*
[0.70–1.23]
1.07
[0.64–1.68]
0.55
[0.37–1.11]
1.15
[0.76–1.87]
0.87
[0.59–1.27]
0.78*
[0.64–1.11]
0.23*
[0.05-1.74]
Облученные, с опухолями 0.64*,**
[0.45–0.78]
0.79*
[0.66–0.90]
1.11
[0.74–1.28]
0.62*,**
[0.54–1.04]
0.42*
[0.24–0.84]
0.76**
[0.52–1.24]
0.58*
[0.45–1.04]
0.71*
[0.5–0.9]
0.04*,**
[0.01-0.41]

Примечание. * – Отличия показателей в группах “Контроль” и “Облучение” или “Контроль” и “Опухоль” статистически значимы (p < 0.05). ** – отличия показателей между группами “Облучение” и “Опухоль” статистически значимы (p < 0.05). Медианы групп контроля (необлученные мыши) на 8 и 10 месяцы после облучения приняты за единицу.

NF-κB индуцирует экспрессию цитокинов, а также гена MDM2 и miR-21, которые ингибируют активность р53-зависимой системы сохранения стабильности генома и, таким образом, способствуют увеличению жизнеспособности облученных клеток с поврежденным геномом и сохранению их пролиферативной активности [3].

Индуцибельная синтаза оксида азота (iNOS) генерирует свободные радикалы, оказывающие генотоксическое действие и участвующие в развитии рака [4].

На 8 месяц отмечается увеличение экспрессии NFkB и его генов – мишеней (iNOS, G-SCF), контролирующих пролиферацию и сохранение клеток с поврежденным геномом, что помогает злокачественным клеткам сохранять способность к выживанию. Следует отметить, что активацию NFkB в клетках КМ наблюдали уже на 6 месяц после облучения (1 Гр) мышей [5].

Таким образом, увеличение экспрессии изученных генов в КМ на 8 месяц может способствовать развитию состояния нестабильности генома, и, как следствие, выступать в качестве предикторов онкотрансформации клеток.

У 14 из 94 мышей, проанализированных на 10 месяц, гистологически были выявлены лимфомы в печени, брюшной полости и подкожно. В КМ мышей с опухолями отмечается значительное снижение экспрессии мРНК генов NFkB(р65), iNOS, CTCF, TAL1, днРНК NEAT1 и miR-125b по сравнению с показателями группы контроля и мРНК генов PTEN, iNOS, днРНК lnc p21 и miR-125b по отношению к группе облученных животных без опухолей.

Следует отметить, что к 10 месяцу в КМ мышей с опухолями гены и микроРНК, обладающие свойствами онкогенов (NFkB(р65), TAL1, lnc NEAT1 и miR-125b), либо онкосупрессоров (PTEN, lnc p21) снижают свою активность. У таких животных изменение экспрессии РНК показателей может быть связано не только с облучением, но и проникновением в КМ выделяемых опухолями “онкосом”.

С другой стороны, ниши, с поврежденным геномом возникшие в гемопоэтических стволовых клетках (ГСК) и сохранившиеся на 8 и 10 месяцы после облучения и возникающий из них пул прогениторных клеток в отдаленные сроки после облучения при выходе из КМ, увеличивают риск возникновения периферических новообразований.

Применение регрессионного анализа показало, что уровень экспрессии NFkB, определяемый на 8 месяц в КМ облученных мышей коррелировал с последующим выходом лимфом на 10 месяц после воздействия радиации (R = 0.9; p < 0.05).

Ген PTEN, lnc p21 и NEAT1 являются мишенями ТФ белка Р53. Мутации в гене р53 или его связывание с MDM2 могут ингибировать транскрипционную активность р53 и снижать экспрессию этих его мишеней [6].

PTEN является онкосупрессором и контролирует процессы образования АФК, клеточной пролиферации и стабильность генома, а также влияет на развитие Т- и В-клеток [7].

Уровень экспрессии miR-125b в КМ важен для регуляции ранних этапов дифференцировки кроветворных клеток. Высокая экспрессия miR-125b наблюдается в ГСК и необходима для сохранения их пула. Нарушение процессов самообновления и дифференцировки ГСК могут способствовать онкотрансформации [8].

Lnc p21 подавляет пролиферацию клеток и индуцирует апоптоз. Ее взаимодействие с MDM2 приводит к активации ТФ Р53. Наблюдаемый нами на 10 месяц в КМ пониженный уровень lnc p21 формируется и в лимфомах, и может служить прогностическим маркером.

Таким образом, изменение активности генов, днРНК и микроРНК, участвующих в гемопоэзе, может свидетельствовать о пластичности клеток не только в микроокружении опухоли, но и в КМ. Изучение экспрессии генов и некодирующих РНК и их взаимодействия важно для понимания процессов канцерогенеза, и в перспективе может быть использовано в качестве показателей риска развития лимфом и терапевтических мишеней для лечения новообразований.

Список литературы

  1. Giles A., Chien C., Reid C., et al. // Pharmacology&Therapeutics. 2016. V. 168. P. 53–60.

  2. Ina Y., Tanooka H., Yamada T., et al. // Radiation Research. 2005. V. 163. № 2. P. 153–158

  3. Wang W., Subhasree A., Zhang R. // Curr. Med. Chem. 2015. V. 22. № 2. P. 264–289.

  4. Bignon E., Rizza S., Filomeni G., et al. // Computational and Structural Biotechnology Journal. 2019. V. 17. P. 415–429.

  5. Jangiam W., Udomtanakunchai C., Reungpatthanaphong P., et al. // Doze-Response. 2018. V. 16. № 4.

  6. Михайлов В., Шуленина Л., Васильева И., и др. // Усп. совр. Биол. 2018. V. 138. № 5. P. 427–445.

  7. Martelli A., Paganelli F., Fazio A., et al. // Cancers. 2019. V. 11. № 5. P. 629.

  8. Shao L., Luo Y., Zhou D. // Antioxidants & Redox Signaling. 2014. V. 20. № 9. P. 1447–1462.

Дополнительные материалы отсутствуют.