Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, 2020, T. 495, № 1, стр. 643-647

ДЕЙСТВИЕ НАНОКРЕМНИЯ НА СОДЕРЖАНИЕ ФОТОСИНТЕТИЧЕСКИХ ПИГМЕНТОВ И БИОГЕННЫХ ЭЛЕМЕНТОВ В РАСТЕНИЯХ ТОМАТОВ ПРИ ИНВАЗИИ ГАЛЛОВОЙ НЕМАТОДОЙ MELOIDOGYNE INCOGNITA

Ж. В. Удалова 1, Г. Э. Фолманис 2, М. А. Федотов 2, Л. А. Пельгунова 1, Е. Ю. Крысанов 1, Ф. К. Хасанов 1, С. В. Зиновьева 1*

1 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова Российской академии наук
Москва, Россия

2 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт металлургии и материаловедения Российской академии наук
Москва, Россия

* E-mail: zinovievas@mail.ru

Поступила в редакцию 14.07.2020
После доработки 24.07.2020
Принята к публикации 25.07.2020

Полный текст (PDF)

Аннотация

Представлены новые данные о действии коллоидного нанокремния на содержание биогенных элементов и фотосинтетических пигментов в инфицированных галловой нематодой Meloidogyne incognita растениях томатов. При внекорневой обработке растений препаратами водного коллоидного раствора нанокремния в концентрациях 0.5 и 1.0 мкг/мл выявлено возрастание содержания фотосинтетических пигментов и ряда биогенных элементов (P, Mg, K, S, Fe) в листьях томатов, свидетельствующее об улучшении физиологического состояния инвазированных растений. Показано стимулирующее влияние нанокремния на развитие и рост растений и ингибирующее – на поражаемость растений нематодами и морфофизиологические параметры паразита.

Ключевые слова: нанокремний, галловая нематода, томаты, биогенные элементы, фотосинтетические пигменты, морфофизиологические показатели паразита

Паразитические нематоды р. Meloidogyne (галловые нематоды) – опасные паразиты корневой системы, поражающие практически все виды высших растений, ущерб от которых исчисляется миллионами долларов [1]. Эффективные способы борьбы с этими паразитами отсутствуют. В последнее время успешно развивается экологически безопасное направление в защите растений, основанное на индукции их устойчивости [2]. Индуцированную устойчивость (ИУ) вызывают факторы биотической и абиотической природы, способные активизировать сложную интегрированную систему защитных механизмов и тем самым максимально реализовать естественный иммунный потенциал растений. Научный и практический интерес с этой точки зрения представляет изучение роли эссенциальных (жизненно необходимых) микроэлементов в реализации ИУ. Одним из таких элементов является кремний. Многочисленные исследования показали его значение в жизнедеятельности растений и регуляции абиотических и биотических стрессов, вызванных различными фитопатогенами, в том числе паразитическими нематодами [3]. Показано, что защитная роль кремния при биогенных стрессах связана с укреплением стенки эпидермальных клеток, обеспечивающих механический барьер. Присутствие кремния затрудняет атаку патогенов и вредителей, а также индуцирует биохимические защитные реакции растений [4]. О действии наноразмерного кремния (нанокремния) на растения в стрессовых условиях известно еще очень немного. Показано положительное влияние нанокремния при действии ряда абиогенных факторов (обезвоживание, соленость, тяжелые металлы) [5]. Изучения роли нанокремния как индуктора устойчивости растений в условиях биогенного стресса, вызванного фитопатогенами, до настоящего времени не проводилось. Антистрессовая активность кремния побудила нас к исследованию способности его наноразмерной формы выступать в качестве абиогенного индуктора устойчивости растений к паразитическим нематодам.

Исследования проводили на модельной системе: томаты Lycopersicon esculentum – галловая нематода Meloidogyne incognita (Kofoid et White, 1919) Chitwood, 1949. В работе были использованы томаты гибрида Гамаюн (ИУ 30%).

Для работы был использован препарат водного коллоидного раствора нанокремния, полученного методом лазерной абляции [6]. В качестве мишени был применен монокристаллический кремний. Средний размер частиц составлял 65.3 ± 1.6 нм, рН раствора 4.92, дзета-потенциал равен – 12.3 мВ, исходная концентрация – 10 мкг/мл. Работу проводили с двумя концентрациями препарата – 0.5 и 1.0 мкг/мл, эффективность действия которых на растения была показана ранее [6].

Поверхностно стерилизованные семена томатов замачивали в 2 мл препарата коллоидного раствора нанокремния течение 2 ч перед высадкой в грунт. Через 3 недели после прорастания семян часть растений инфецировали нематодой (3000 личинок на растение) и опрыскивали растворами нанокремния в тех же концентрациях, которыми обрабатывали семена (10 мл/растение). Контрольные семена и растения обрабатывали водой. Опыты проводили в 6-кратной повторности. Растительные пробы для анализов отбирали на 14-е сутки после инвазии и обработки растений препаратом кремния. Морфофизиологические параметры растений и нематод анализировали через 40 дней после инвазии. Устойчивость растений оценивали по степени поражения корней, количеству галлов/г корня и морфофизиологическим параметрам нематод (число половозрелых самок, их размеры).

Растения, пораженные галловыми нематодами, проявляют симптомы минерального голодания (хлороз листьев) и недостатка воды [7]. Поэтому, для оценки действия наноразмерного кремния на растения при инвазии паразитическими нематодами в настоящей работе были исследованы такие показатели как содержание фотосинтетических пигментов в листьях (важный и чувствительный показатель фотосинтеза, отражающими физиологическое состояния растений при действии стресса) и содержание ряда биогенных минеральных элементов в листьях и корнях растений томатов.

Содержание хлорофиллов и каротиноидов оценивали по спектрам поглощения этанольных экстрактов из листьев опытных растений [8].

Для определения элементного состава образцов применяли метод рентгено-флуоресцентного анализа (РФА). Качественный анализ образцов проводился на приборе M4 TORNADO, количественный – S2 PicoFox (оба прибора производства Bruker, Германия). Корни, стебли и листья здоровых и инвазированных нематодой томатов анализировали по стандартной методике ISO/TS 18705:2015 [9].

Статистический анализ был выполнен с использованием программного обеспечения “STATISTICA 12.0” (StatSoft Inc., USA). Для определения статистической значимости различия использовался t-критерий Стьюдента. Статистически значимыми считались различия при р < 0.05.

Результаты исследований показали, что обработка растений водными растворами нанокремния оказала влияние на устойчивость растений. При анализе морфофизиологического состояния нематод, а также зараженности растений и их состояния в период проведения эксперимента было выявлено стимулирующее влияние нанокремния на развитие и рост растений и ингибирующее на поражаемость растений и развитие паразита (табл. 1). Длина и вес стебля растений при обработке водными растворами нанокремния в концентрациях 0.5 и 1.0 мкг/мл, превосходили контрольные, что являлось показателем положительного действия препарата на инфицированные растения. Зараженность растений по сравнению с контролем в этих случаях была снижена на 28 и 32% соответственно. Меньший размер галлов и самок, а также отсутствие яиц в их отеках свидетельствует о задержке развития нематод в корнях обработанных растений.

Таблица 1.

Влияние водных коллоидных растворов нанокремния на развитие инвазированных растений и морфофизиологические параметры галловой нематоды M. incognita

Вид обработки Длина стебля, см Вес стебля, г Число галлов/г корня Размер галлов, мм Размер самки, мм
Длина тела Ширина тела
Вода (контроль) 33.6 ± 4.8 9.5 ± 2.1 225 ± 38 7.6 ± 0.6 0.521 ± 0.122 0.322 ± 0.112
Нанокремний, 0.5 мкг/мл 36.8 ± 4.0 9.8 ± 1.9 152 ± 27* 3.9 ± 0.4* 0.480 ± 0.111* 0.149 ± 0.042*
Нанокремний, 1.0 мкг/мл 38.8 ± 5.1* 11.1 ± 3.5* 163 ± 32* 3.2 ± 0.3* 0.510 ± 0.114 0.105 ± 0.038*

* – достоверные различия относительно контроля, при р ≤ 0.05; n = 10 для растений; n = 50 для галлов и нематод.

Фотосинтетический аппарат в первую очередь подвергается воздействию стрессовых факторов. Особый интерес представляет изменение содержания фотосинтетических пигментов – хлорофилла а (Chl a), хлорофилла b (Cl b) и каротиноидов (Car). Результаты проведенных исследований показали, что содержание фотосинтетических пигментов в инвазированных растениях было ниже, в сравнении со здоровыми – Chl a на 10%, Cl b на 18%, Car на 20% (табл. 2).

Таблица 2.

Содержание хлорофиллов и каротиноидов в листьях томатов при действии наноразмерного кремния и инвазии M. incognita

Группа растений   Chl a (мг/г ) Cl b (мг/г) Car (c) (мг/г) Cl (a + b) (мг/г)
Здоровые 1.41 ± 0.26 0.78 ± 0.29 0.54 ± 0.02 2.19 ± 0.21
Инвазированные 1.33 ± 0.34* 0.64 ± 0.18* 0.43 ± 0.06* 1.97 ± 0.51*
Нанокремний, 0.5 мкг/мл, здоровые 1.49 ± 032 0.76 ± 0.14 0.58 ± 0.12 2.25 ± 0.38
Нанокремний, 0.5 мкг/мл, инвазированные 1.62 ± 0.27* 0.69 ± 0.21 0.62 ± 0.09* 2.31 ± 0.39*
Нанокремний, 1.0 мкг/мл, здоровые 1.44 ± 0.30 0.79 ± 0.16 0.30 ± 0.04* 2.23 ± 0.35
Нанокремний, 1.0 мкг/мл, инвазированные 1.69 ± 0.21 0.56 ± 0.09 0.50 ± 013 2.25 ± 0.49

* – достоверные различия относительно здорового контроля, при р ≤ 0.05; n = 6.

Обработка приводила к незначительному превышению общего количества хлорофиллов в листьях, но содержание каротиноидов при концентрации 1.0 мг/мл снизилось на 44%. Обработка зараженных растений нанокремнием в концентрации 0.5 мкг/мл приводила к увеличению содержания фотосинтетических пигментов (хлорофиллов и каротиноидов) даже по сравнению со здоровыми растениями, что свидетельствовало о нормализации физиологического состояния растений, нарушенного инвазией нематодами. Концентрация 1.0 мкг/мл оказалась менее эффективной – количество хлорофиллов и каротиноидов в листьях хотя и было выше, чем в листьях необработанных инвазированных растений, однако было ниже, чем при обработке растений препаратом в концентрации 0.5 мкг/мл.

В регуляции процессов фотосинтеза и продуктивности растений большое значение имеют элементы минерального питания. Проведенные исследования показали, что экзогенная обработка растений нанокремнием существенно отразилась на содержании исследованных биогенных элементов (табл. 3). Так, на 14-й день после обработки в листьях неинвазированных (здоровых) растений существенно повысилось содержание Mg, Cl, P, Fe, а также P и K в корнях растений. В то же время содержание Ca и S в листьях и Cl в корнях заметно снизилось по сравнению с контрольными растениями. Инвазия растений нематодами значительное снизила содержание в листьях биогенных элементов, играющих важную роль в фотосинтезе и обменных процессах растений: P, Mg, K, S, Fe и Zn [10]. Повышение концентрации S, K и Са в корнях растений при инвазии, возможно, объясняется их оттоком из листьев и связано с жизнедеятельностью корнеобитающих нематод. При обработке нанокремнием в листьях инвазированных растений содержание P, Mg, K, S и Fe значительно возрастало по сравнению с необработанными и даже было больше, чем в здоровых растениях (табл. 3). В корнях, местах локализации паразита, содержание P и K было больше, чем в здоровых растениях, тогда, как содержание Ca, Mg, Fe практически не отличалось от содержания в здоровых корнях. Содержание S, Cl и Zn было ниже, чем в здоровых растениях, что, возможно, связано с особенностями метаболизма растений, обработанных нанокремнием. Томаты классифицируют как растения, не накапливающие кремний [11].

Таблица 3.

Изменения концентраций биогенных элементов в тканях растений томатов, при инвазии и обработке нанокремнием (0.5 мкг/мл) (% от содержания в здоровых необработанных кремнием растениях)

  Mg P S Cl K Ca Mn Fe Zn Cu
Здоровые растения, обработанные нанокремнием
Листья +23* +103* –43* +23* +36* –34* 0 +27* +4 –8
Корни +10 +20* +37* –45* +24* +57* +40* –8 +6 –16*
Инвазированные растения
Листья –14* –9 –10 +169* –4 –58* –21* –23* –35* –22 *
Корни +5 –52* +125* 24* +40* +58* –34* –11* –17* –9
Инвазированные растения, обработанные нанокремнием
Листья +9 + 58* +49* +6 +62* +3 + 4 +17* 0 +3
Корни +5 +20* –12* –35* +31* +6 +40* +1 –12* –4

* указывает на существенное отличие от концентраций элемента в здоровых, необработанных растениях при р ≤ 0.05; n = 3.

Проведенные нами исследования не выявили присутствия кремния в листьях, стеблях и корнях необработанных растений. При внекорневой обработке препаратом нанокремния он был обнаружен во всех органах растений, при этом распределение этого элемента по органам в инвазированных и здоровых растениях происходило по-разному (табл. 4). В здоровых растениях наибольшее количество кремния было обнаружено в листьях, а в инвазированных – в корнях. Изменение концентрации минеральных элементов в корнях обработанных препаратом растений, возможно, связано с присутствием в них кремния, поскольку известно, что он оказывает существенное влияние на поглощение и использование растениями других элементов минерального питания [12]. Аккумуляция кремния в корнях томатов, в местах их паразитирования и, соответственно, физического и секреторного воздействия на организм хозяина, вероятно указывает на участие этого элемента в индукции защитных реакций растений. Содержание кремния в данном случае более чем в 3 раза превышало содержание его в корнях здоровых растений. Ранее, на растениях риса, инвазированных галловой нематодой Meloidogyne graminicola, было показано, что уровень проявления защитных реакций, опосредованных кремнием, связан с увеличением его содержания в корнях растений [13].

Таблица 4.

Распределение кремния по органам здоровых и инвазированных растений (мг/кг воздушно-сухой массы)

  Здоровые растения Инвазированные растения
Концентрация Si 0.5 мкг/мл 1.0 мкг/мл 0.5 мкг/мл 1.0 мкг/мл
Листья 2.01 ± 0.12* 2.42 ± 0.34 2.24 ± 0.14 3.19 ± 0.26
Стебли 1.07 ± 0.19 1.44 ± 0.21 1.39 ± 0.02 1.19 ± 0.20
Корни 1.52 ± 0.16 0.84 ± 0.09 4.26 ± 0.52 3.55 ± 0.37

* мг/кг воздушно-сухой массы; n = 3.

Таким образом, проведенные исследования показали, что обработка растений томатов нанокремнием стимулирует ростовые процессы, снижает зараженность корневой системы нематодами и оказывает ингибирующее влияние на морфофизиологические показатели нематод. Отмеченное при этом возрастание содержания фотосинтетических пигментов и ряда биогенных элементов в инвазированных растениях, свидетельствует об улучшении их физиологического состояния. Этот факт, а также аккумуляция кремния в зоне паразитирования, позволяют рассматривать водный раствор коллоидного нанокремния в качестве абиогенного индуктора, активизирующего системы стрессорного ответа на инвазию, ограничивающие развитие паразита. Детали механизма этого индуцирования еще предстоит выяснить. В настоящее время показано, что кремний стимулирует устойчивость растений к бактериям, грибам, вирусам, насекомым и нематодам. Опосредованные кремнием механизмы устойчивости включают в себя синтез низкомолекулярных соединений, обладающих биоцидными свойствами (фитоалексины, фенолы), генерацию активных форм кислорода, активацию сигнальной системы растений (салициловой и жасминовой кислот, а также этилена) и индукцию защитных белков [14]. Свойства наночастиц кремния позволяют им непосредственно проникать в клетки растений и взаимодействовать с белками и другими биомолекулами. Такое прямое действие нанокремния может способствовать быстрой передаче клеточных сигналов и позволяет ему проявить большую биологическую эффективность в отношении фитопатогенов по сравнению с полноразмерным Si [15]. В настоящее время активно исследуются возможности применения нанокремния в сельском хозяйстве для производства удобрений, пестицидов и гербицидов, создании генетически модифицированных растений и ряда других технологий, направленных на решение сельскохозяйственных проблем, связанных с повышением продуктивности растений [5].

Полученные нами данные, позволяют рассматривать водный раствор коллоидного нанокремния в качестве индуктора устойчивости растений к биогенному стрессу, вызванному паразитическими нематодами. Возможно, это не единственная функция исследованного препарата, и спектр его применения может быть расширен.

Список литературы

  1. Elling A. A. Major emerging problems with minor Meloidogyne species // Phytopathology. 2013. V. 103. № 11. P. 1092–1102. https://doi.org/10.1094/PHYTO-01-13-0019-RVW

  2. Udalova Zh.V., Zinovieva S.V. Systemic induced plant resistance as a control strategy to parasites alternative to pesticides // Ecol. Eng. Environ. Protection. 2015. № 2. P. 59–66. http://ecoleng.org/Contents2.2015.html#9

  3. Frew A., Weston L. A., Reynolds O. L., Gurr G.M. The role of silicon in plant biology: a paradigm shift in research approach // Ann. Bot. 2018. V. 121. № 7. P. 1265–1273. https://doi.org/10.1093/aob/mcy009

  4. Sakr N. Silicon-enhanced resistance of plants to biotic stresses. Review article // Acta Phytopathol. et Entomol. Hung. 2018. V. 53. № 2. P. 125–141. https://doi.org/10.1556/038.53.2018.005

  5. Rastogi A., Tripathi D.K., Yadav S..K., Chauhan D.K., Živčák, M., Ghorbanpour M., Elsheery N.I., Brestic M. Application of silicon nanoparticles in agriculture // Biotech 2019. V. 9. 90. https://doi.org/10.1007/s13205-019-1626-7

  6. Roldugin V.I., Fedotov M.A., Folmanis G.E., Kovalenko L.V., Tananaev I.G. Formation of aqueous colloidal solutions of selenium and silicon by laser ablation // Dokl. Phys. Chem. 2015. T. 463. № 1. P. 161–164. https://doi.org/10.1134/S0012501615070064

  7. Bartlem D.G., Jones M.G., Hammes U.Z. Vascularization and nutrient delivery at root-knot nematode feeding sites in host roots // J. Exp. Bot. 2014. V. 65 № 7. P. 1789–1798. https://doi.org/10.1093/jxb/ert415

  8. Lichtenthaler H.K. Chlorophylls and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes // Methods in Enzymology. 1987. V. 148. P. 350–382. https://doi.org/10.1016/0076-6879(87)48036-1

  9. ISO/TS 18705:2015. Surface chemical analysis – Use of Total Reflection X-ray Fluorescence spectroscopy in biological and environmental analysis.

  10. Mengel K., Kirkby E.A. Principles of Plant Nutrition. 5th ed. Kluwer Academic Publishers; Dordrecht, The Netherlands: 2001. P. 849. ISBN 978-1-4020-0008-9

  11. Nikolic M., Nikolic N., Liang Y. C., Kirkby E.A, Romheld V. Germanium-68 as an adequate tracer for silicon transport in plants. Characterization of silicon uptake in different crop species // Plant Physiol. 2007. V. 143. № 1. P. 495–503. https://doi.org/10.1104/pp.106.090845

  12. Greger M., Ladberg T., Vaculík M. Silicon influences soil availability and accumulation of mineral nutrients in various plant species //Plants (Basel). 2018. V. 19. № 7 (2). P. 41. https://doi.org/10.3390/plants7020041

  13. Zhan L.P., Peng D.L., Wang X.L., Kong L. A., Peng H., Liu S. M., Liu Y., Huang W. K. Priming effect of root-applied silicon on the enhancement of induced resistance to the root-knot nematode Meloidogyne graminicola in rice // BMC Plant. Biol. 2018. V. 18. № 1. P. 50 . https://doi.org/10.1186/s12870-018-1266-9

  14. Wang M., Gao L., Dong S., Sun Y., Shen Q., Guo S. Role of Silicon on Plant-Pathogen Interactions // Front Plant Sci. 2017. V. 8. 701.https://doi.org/10.3389/fpls.2017.00701

  15. Saptarshi S.R., Duschl A., Lopata A.L. Interaction of nanoparticles with proteins: relation to bio-reactivity of the nanoparticle // J. Nanobiotechnol. 2013. V. 11. № 1. Р. 26.https://doi.org/10.1186/1477-3155-11-26

Дополнительные материалы отсутствуют.