Доклады Российской академии наук. Науки о жизни. T. 512, Номер 1, 2023

Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, 2023, T. 512, № 1, стр. 417-421

Антидиабетический эффект нового оригинального дипептидного миметика NT-3

С. С. Ягубова 1, *, М. А. Чернышевская 1, Р. У. Островская 1, член-корреспондент РАН Т. А. Гудашева 1, академик РАН С. Б. Середенин 1

1 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение “НИИ фармакологии имени В.В. Закусова”
Москва, Россия

* E-mail: syagubova@yandex.com

Поступила в редакцию 02.05.2023
После доработки 23.05.2023
Принята к публикации 24.05.2023

Полный текст (PDF)

Аннотация

Ранее установлено, что оригинальный дипептидный миметик 4-й петли NT-3 гексаметилендиамид бис-(N-моносукцинил-L-аспарагинил-L-аспарагина) (ГТС-301) обладает выраженным нейропротективным эффектом in vitro в концентрациях 10–5–10–12 М. В настоящем исследовании в экспериментах на стрептозотоциновой модели диабета у мышей линии C57Bl/6 установлено, что ГТС-301 при 32-дневном внутрибрюшинном введении в дозах 0.1 и 0.5 мг/кг обладает антидиабетической активностью по показателям снижения гипергликемии, полидипсии и увеличения выживаемости животных. Полученные результаты подтверждают концепцию сходства нейрохимических механизмов регуляции функций нейронов и β-клеток.

Ключевые слова: NT-3, низкомолекулярный миметик, дипептид, ГТС-301, стрептозотоцин, диабет, антидиабетическая активность, мыши C57Bl/6

На основе конструирования N-ацил-дипептидных миметиков наиболее экспонированных бета-поворотных фрагментов петель NGF и BDNF в НИИ фармакологии имени В.В. Закусова созданы соединения, воспроизводящие эффекты нейротрофинов. В модельных опытах in vitro ряд соединений по-разному активировали пострецепторные сигнальные пути Trk-рецепторов; выявлены особенности их фармакологических эффектов. Изучение связи структуры и активности низкомолекулярных миметиков NGF по нейропротективным и антидиабетическим эффектам позволило отобрать в качестве соединения лидера дипептид ГК-2. В ряду миметиков BDNF комплекс нейропротективных и антидепрессант-подобных свойств зарегистрирован у миметика ГСБ-106 [1].

В развитие стратегии создания низкомолекулярных миметиков нейротрофинов выполнен дизайн и изучены свойства миметиков нейротрофина-3 (NT-3). NT-3, подобно NGF и BDNF, играет важную роль в регуляции пролиферации, дифференцировки, миелинизации, сохранении фенотипической стабильности нейронов. Отличие NT-3 от других нейротрофинов состоит в активации преимущественно TrkC, с меньшей аффинностью TrkB и с еще более низкой – TrkA.

Для полноразмерной молекулы NT-3, как и для других нейротрофинов, характерны низкая энзиматическая устойчивость и неудовлетворительные фармакокинетические свойства, что определяет целесообразность создания и выявления фармакологических свойств его низкомолекулярных системно-активных миметиков. Как и в предыдущих работах, для конструирования миметика NT-3 был выбран наиболее экспонированный фрагмент 4-й петли –Glu92–Asn93–Asn94–, на основе которого синтезирован димерный дипептидный миметик – гексаметилендиамид бис-(N-моно-сукцинил-L-аспарагинил-L-аспарагина) (ГТС-301) [2]. Для этого миметика показана активация, как и для полноразмерной молекулы, преимущественно TrkC рецепторов. Нейропротекторная активность in vitro установлена в пикомолярных концентрациях. В опытах in vivo обнаружен антидепрессант-подобный эффект при внутрибрюшинном введении в дозах 10–40 мг/кг [2].

Исходя из ранее предложенной концепции сходства нейрохимических механизмов регуляции функций нейронов и β-клеток [3, 4], в настоящей работе изучена антидиабетическая активность соединения ГТС-301.

Исследование проведено на стрептозотоциновой модели диабета на мышах C57Bl/6. Мышей делили на следующие группы: Контроль, Диабет, Диабет + ГТС-301 (0.1 мг/кг), Диабет + ГТС-301 (0.5 мг/кг), Диабет + ГТС-301 (5 мг/кг). Диабет моделировали однократным внутрибрюшинным (в/б) введением стрептозотоцина (СТЗ) в дозе 110 мг/кг. Группе Контроль в/б на протяжении 32 дней вводили дистиллированную воду (ДВ) или 1% раствор Tween 80 в ДВ. Группе Диабет вводили ДВ или 1% раствор Tween 80 в/б в течение 14 дней, на 15-й день – СТЗ, а затем продолжали введение ДВ или 1% раствора Tween 80 в течение последующих 17 дней. ГТС-301 в 1% растворе Tween 80 вводили в дозах 0.1, 0.5 или 5 мг/кг в/б в течение 14 дней до введения СТЗ и в течение 17 дней после введения СТЗ (см. рис. 1). Все вещества вводили в/б из расчета 0.01 мл на 1 г массы животного. Измерение уровня глюкозы в крови, взятой из хвостовой вены мышей, проводили при помощи глюкометра One Touch Select Plus Flex до введения и на разные сроки после введения СТЗ. Ежедневно проводили измерение потребления воды.

Рис. 1.

Дизайн эксперимента.

Профилактическое введение (до СТЗ) дипептида ГТС-301 в течение 14 дней в дозах 0.1, 0.5 и 5 мг/кг не вызывало изменений уровня глюкозы в крови животных.

Введение СТЗ в дозе 110 мг/кг вызывало выраженное (⁓ в 3 раза) повышение уровня глюкозы в крови у животных группы Диабет, которое сохранялось после индукции диабета до 61-го дня (табл. 1).

Таблица 1.

Уровень глюкозы в крови мышей (ммоль/л)

  Сутки после введения СТЗ
Группа 5-е 19-е 33-е 47-е 61-е
Контроль 8.35 ± 0.34 8.23 ± 0.27 8.67 ± 0.32 7.97 ± 0.23 8.18 ± 0.25
Диабет 22.41 ± 2.11 * 21.80 ± 1.97 * 21.55 ± 2.76 * 22.66 ± 2.29 * 25.79 ± 2.88 *
Диабет+ГТС-301 (0.1 мг/кг) 17.69 ± 2.87 * 16.39 ± 2.33 *# 14.72 ± 1.91 *# 17.22 ± 2.64 *# 17.24 ± 2.88 *#
Диабет+ГТС-301 (0.5 мг/кг) 15.79 ± 2.33 *# 20.65 ± 1.21 * 16.04 ± 1.60 *# 16.95 ± 1.51 *# 21.20 ± 2.29 *
 
Контроль 8.60 ± 0.30 8.93 ± 0.30 8.15 ± 0.39 8.03 ± 0.36 7.28 ± 0.26
Диабет 22.55 ± 2.13 * 19.92 ± 2.06 * 15.87 ± 2.18 * 17.04 ± 2.56 * 14.41 ± 2.26 *
Диабет+ГТС-301 (5 мг/кг) 24.26 ± 2.25 * 27.79 ± 1.47 * 23.34 ± 2.78 *# 25.31 ± 2.75 *# 23.17 ± 3.79 *#

Заболевшими считались животные с уровнем глюкозы в крови ≥13 ммоль/л [5]. Поскольку эксперименты с разными дозами ГТС-301 проводились в разные дни, для каждой из двух серий эксперимента представлены свои значения для групп Контроль и Диабет. Данные представлены в виде средних значений по группе с указанием стандартной ошибки среднего (M ± SЕM). Статистические отличия групп (однофакторный ANOVA с последующими попарными межгрупповыми сравнениями с помощью теста Дункана, р < 0.05): * от группы Контроль; # от группы Диабет.

Последующее (превентивное + лечебное) введение ГТС-301 в дозах 0.1 и 0.5 мг/кг в/б оказывало антигипергликемический эффект, который отсутствовал в дозе 5 мг/кг (табл. 1). В дозе 0.1 мг/кг статистически значимое снижение глюкозы в крови было выявлено с 19-х по 61-е сутки после СТЗ. В дозе 0.5 мг/кг снижение глюкозы проявилось с 5-х по 47-е сутки после введения СТЗ. Таким образом, ГТС-301 оказывает пролонгированный лечебный эффект.

Одним из важных индикаторов сахарного диабета является полидипсия [6]. В группе Диабет наблюдалось выраженное повышение количества выпитой жидкости (рис. 2), которое проявлялось с 6 суток после индукции диабета и сохранялось до окончания регистрации данного показателя (48 дней). ГТС-301 в дозе 0.5 мг/кг в/б ослаблял полидипсию на 50–57% до 18-го дня после индукции диабета (рис. 2).

Рис. 2.

Динамика потребления воды. Статистические отличия групп (точный тест Фишера, р < 0.05): * – от группы Контроль; # – от группы Диабет. Данные представлены в виде количества выпитой воды (мл) в сутки.

ГТС-301 в дозах 0.1 и 0.5 мг/кг также достоверно уменьшал число животных с повышенным (≥13 ммоль/л) уровнем глюкозы в крови и полностью предотвращал их гибель (рис. 3). Так, в группе животных, получавших ГТС-301 в дозе 0.1 мг/кг, количество животных с гипергликемией на 5-е и 61-е сутки составило 45% по сравнению с 90% в группе Диабет (p < 0.05, критерий хи-квадрат). В дозе 0.5 мг/кг эффект ГТС-301 был менее выражен.

Рис. 3.

Заболеваемость и смертность на 61-е сутки после введения СТЗ.

Таким образом, в настоящей работе, при моделировании стрептозотоцинового диабета, впервые выявлена антидиабетическая активность соединения ГТС-301 по показателям снижения гипергликемии, полидипсии и увеличения выживаемости животных.

Известно, что NT-3 представлен не только в мозговой ткани, но и в периферических органах, в некоторых из них его содержание существенно превышает таковое для структур мозга. Так, если содержание NT-3 в мозжечке составляет 0.71 нг/г, в гиппокампе 6.3 нг/г, то в печени 45 нг/г, а в поджелудочной железе уровень NT-3 достигает 892 нг/г [7]. Для β-клеток поджелудочной железы характерна экспрессия TrkC [8]. Несмотря на наличие этих данных, вопрос о возможном антидиабетическом эффекте полноразмерной молекулы ранее практически не изучался. При тщательном анализе литературы мы обнаружили только одну публикацию [9], которая была выполнена на диабетической генетической модели – мышах линии db/db. В этой работе отмечалось, что подкожное введение NT-3 в дозе 20 мг/кг ведет к снижению содержания сахара в крови db/db мышей с 20 до 8 мг/дл, однако этот эффект был кратковременным – через 24 ч было отмечено восстановление исходного, гипергликемического уровня.

В качестве перспективных свойств ГТС-301 можно отметить малые эффективные дозы (0.1 и 0.5 мг/кг) и наличие выраженного эффекта последействия. Важнейшей особенностью изученного миметика является возможность применения при системном введении.

В то же время применение полноразмерной молекулы NT-3 требует сложных и инвазивных методов введения [10]. Так, в экспериментах по изучению эффекта NT-3 на модели диабетической нейропатии этот нейротрофин доставлялся интратекально в спинной мозг [11]. Применялось нанесение рекомбинантного NT-3 непосредственно на место хирургического повреждения головного мозга крысы с помощью гелевой пены [12], а также использовалась инъекционная композитная система, состоящая из биоразлагаемых полимерных наночастиц, диспергированных в гиалурон-метилцеллюлозном геле для интратекального введения NT-3 в спинной мозг [13]. В исследованиях использовались также биоактивные каркасы (из желатиновой губки, фиброина шелка, хитозана) с NT-3 [14–16].

Тот факт, что низкомолекулярный миметик NT-3, дипептид ГТС-301, для которого была выявлена выраженная нейропротективная активность [2], проявляет, как было впервые установлено в приведенных выше экспериментах, также и антидиабетический эффект, является важным свидетельством в пользу развиваемой нами концепции сходства механизмов защиты нейронов и β-клеток поджелудочной железы [3, 4]. Установленное наличие у миметика NT-3 антидиабетического эффекта представляет также практический интерес в аспекте возможной разработки нового оригинального средства лечения диабета.

Список литературы

  1. Gudasheva T.A., Povarnina P.Y., Tarasiuk A.V., et al. Low-molecular mimetics of nerve growth factor and brain-derived neurotrophic factor: Design and pharmacological properties // Med Res Rev. 2021. V. 41. № 5. P. 2746–2774.

  2. Гудашева Т.А., Сазонова Н.М., Тарасюк А.В. и др. Первый дипептидный миметик нейротрофина-3: дизайн и фармакологические свойства // Доклады Российской Академии наук. Науки о жизни. 2022. Т. 505. С. 54–60.

  3. Островская Р.У., Ягубова С.С. Общие механизмы в патогенезе болезни Альцгеймера и диабета: пути фармакологической коррекции // Психиатрия. 2014. Т. 61. № 1. С. 35–43.

  4. Ostrovskaya R.U., Ivanov S.V. Neuroprotective Substances: Are they Able to Protect the Pancreatic Beta-Cells Too? // Endocrine, Metabolic & Immune Disorders – Drug Targets. 2022. V. 22. P. 834–841.

  5. Watcho P., Stavniichuk R., Tane P., et al. Evaluation of PMI-5011, an ethanolic extract of Artemisia dracunculus L., on peripheral neuropathy in streptozotocin-diabetic mice // Int J Mol Med. 2011. V. 27. № 3. P. 299–307.

  6. Hakim Z.S., Patel B.K., Goyal R.K. Effects of chronic ramipril treatment in streptozotocin-induced diabetic rats // Indian J Physiol Pharmacol. 1997. V. 41. № 4. P. 353–360.

  7. Katoh-Semba R., Kaisho Y., Shintani A., et al. Tissue distribution and immunocytochemical localization of neurotrophin-3 in the brain and peripheral tissues of rats // J Neurochem. 1996. V. 66. № 1. P. 330–337.

  8. Tazi A., Le Bras S., Lamghitnia H., et al. Neurotrophin-3 Increases Intracellular Calcium in a Rat Insulin-secreting Cell Line through Its Action on a Functional TrkC Receptor // J Biol Chem. 1996. V. 271. № 17. P. 10154–60.

  9. Ono M., Ichihara J., Nonomura T., et al. Brain-Derived Neurotrophic Factor Reduces Blood Glucose Level in Obese Diabetic Mice but Not in Normal Mice // Biochem Biophys Res Commun. 1997. V. 238. № 2. P. 633–637.

  10. El Ouaamari Y., Van den Bos J., Willekens B., et al. Neurotrophic Factors as Regenerative Therapy for Neurodegenerative Diseases: Current Status, Challenges and Future Perspectives // Int J Mol Sci. 2023. V. 24. № 4. P. 3866.

  11. Christianson J.A., Ryals J.M., Johnson M.S., et al. Neurotrophic modulation of myelinated cutaneous innervation and mechanical sensory loss in diabetic mice // Neuroscience. 2007. V. 145. № 1. P. 303–313.

  12. Akyol O., Sherchan P., Yilmaz G., et al. Neurotrophin-3 provides neuroprotection via TrkC receptor dependent pErk5 activation in a rat surgical brain injury model. // Exp Neurol. 2018. V. 307. P. 82–89.

  13. Donaghue I.E., Tator C.H., Shoichet M.S. Sustained delivery of bioactive neurotrophin-3 to the injured spinal cord. // Biomater Sci. 2015. V. 3. № 1. P. 65–72.

  14. Ji W.C., Li M., Jiang W.T., et al. Protective effect of brain-derived neurotrophic factor and neurotrophin-3 overexpression by adipose-derived stem cells combined with silk fibroin/chitosan scaffold in spinal cord injury. // Neurol Res. 2020. V. 42. № 5. P. 361–371.

  15. Sun X., Zhang C., Xu J., et al. Neurotrophin-3-Loaded Multichannel Nanofibrous Scaffolds Promoted Anti-Inflammation, Neuronal Differentiation, and Functional Recovery after Spinal Cord Injury. // ACS Biomater Sci Eng. 2020. V. 6. № 2. P. 1228–1238.

  16. Oudega M., Hao P., Shang J., et al. Validation study of neurotrophin-3-releasing chitosan facilitation of neural tissue generation in the severely injured adult rat spinal cord. // Exp Neurol. 2019. V. 312. P. 51–62.

Дополнительные материалы отсутствуют.