Журнал эволюционной биохимии и физиологии, 2019, T. 55, № 4, стр. 299-301

ВЛИЯНИЕ ИНСУЛИНА НА УРОВЕНЬ ПЕРЕКИСНОГО ОКИСЛЕНИЯ ЛИПИДОВ И СОДЕРЖАНИЕ ГЛУТАТИОНА ПРИ ДВУХСОСУДИСТОЙ ИШЕМИИ ПЕРЕДНЕГО МОЗГА КРЫС И РЕПЕРФУЗИИ

И. И. Зорина 1*, О. В. Галкина 2, Л. В. Баюнова 1, И. О. Захарова 1

1 Институт эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова РАН
Санкт-Петербург, Россия

2 Санкт-Петербургский государственный университет
Санкт-Петербург, Россия

* E-mail: zorina.inna.spb@gmail.com

Поступила в редакцию 28.08.2018
После доработки 06.02.2019
Принята к публикации 15.03.2019

Полный текст (PDF)

Ишемия и последующая реперфузия мозга представляют собой комплексный патологический процесс. Нарушение мозгового кровообращения приводит к ухудшению работы митохондрий, развитию окислительного повреждения биомолекул, ингибированию синтеза белков, выходу Ca2+ из клеточных депо и эксайтотоксичности, что приводит в конечном итоге к некротической и апоптотической гибели нейронов [1]. Эти процессы могут быть более интенсивными при старении из-за снижения восстановительного потенциала организма. В настоящее время идет интенсивный поиск нейропротекторов, которые могли бы предотвращать или снижать интенсивность повреждающих процессов и в дальнейшем смогли бы найти применение в клинике для лечения инсульта и предынсультных состояний. Известно, что инсулин выполняет широкий спектр функций в ЦНС, оказывая модулирующее и нейропротекторное действие, как в норме, так и при патологии. Показаны различные, в том числе, и негативные эффекты инсулина, вводимого подкожно, внутрибрюшинно и внутримышечно, в условиях ишемии и реперфузии, при которых инсулин вызывал значительную гипогликемию в отличие от интраназального введения [2]. Однако исследования по изучению защитного действия интраназально вводимого инсулина при ишемии мозга практически не встречаются, несмотря на показанный им защитный потенциал при терапии болезни Альцгеймера [2].

Целью нашего исследования является изучение влияния интраназального введения 0.5 IU инсулина крысам, подвергнутым двухсосудистой ишемии переднего мозга с гипотензией и последующей реперфузией (ИР), на процессы перекисного окисления липидов (ПОЛ) и уровень общего глутатиона в коре головного мозга.

Крысы линии Вистар в возрасте 3–4 мес. содержались в стандартных условиях вивария. В качестве наркоза использовали хлоралгидрат в дозе 400 мг/кг веса. Исследование проводилось с учетом рекомендаций, данных в [3]. ИР вызывалась у крыс путем окклюзии каротидных артерий в сочетании с гипотензией [4, 5], которая осуществлялась путем отбора артериальной крови в шприц (перед отбором крови крысам вводили 0.2 мл 0.9% NaCl, содержащий гепарин 50 Ед/мл) до достижения артериального давления в 50 мм рт. ст. По окончании 20 мин окклюзии проводили реперфузию мозга в течение 1 ч, разжимая каротидные артерии и возвращая в кровяное русло кровь в смеси с гепарином, отобранную шприцом на стадии ишемии. Ложно-оперированных (ЛО) крыс использовали как контрольных. Инсулин в дозе 0.5 IU вводили крысам интраназально за 1 ч до окклюзии артерий (в каждую ноздрю по 10 мкл раствора, содержащего 1 мг бычьего инсулина (“Sigma Aldrich”, USA) в 1 мл цитратного буфера, pH 4.4). По окончании реперфузии проводили декапитацию животных и выделяли кору головного мозга. Индекс окисленности липидов, содержание ТБК-активных продуктов (ТБК-АП) и оснований Шиффа, которые отражают уровень первичных и конечных продуктов ПОЛ, соответственно, определяли в липидных экстрактах коры мозга, выделенных по методу Фолча [6], как это описано ранее [7]. Содержание общего глутатиона определяли в цитоплазматической фракции [8].

Данные представлены в виде медианы и меж-квартильного размаха (25-й процентиль; 75-й процентиль). Статистическую достоверность различий определяли по U-критерию Манна–Уитни. Достоверными различия считали при р < 0.05.

Нами показано, что в коре головного мозга крыс, подвергнутых ИР, происходило достоверное увеличение исследованных продуктов ПОЛ по сравнению с ЛО животными, за исключением уровня ТБК-АП, который достоверно не менялся (табл. 1). Так, индекс окисленности липидов, свидетельствующий об увеличении отношения конъюгированных двойных связей к изолированным двойным связям, повышался с 0.144 (0.125; 0.158) у ЛО животных до 0.164 (0.157; 0.171) у крыс, подвергшихся ИР (p < 0.05). Инсулин снижал этот показатель до уровня контрольных животных. ИР переднего мозга приводила к повышению уровня оснований Шиффа в 1.7 раза (p < 0.05) по сравнению с их количеством в мозге ЛО крыс. Интраназальное введение 0.5 IU инсулина не влияло на уровень оснований Шиффа у контрольных животных, но достоверно снижало этот показатель (p < 0.05) у крыс, подвергшихся ИР, до уровня ЛО животных, не получавших инсулин. Влияние введения инсулина на содержание ТБК-АП в коре головного мозга, как контрольных крыс, так и перенесших ИР выявлено не было.

Таблица 1.

Влияние интраназального введения 0.5 IU инсулина на уровень продуктов ПОЛ и общего глутатиона в коре головного мозга ложно-оперированных и подвергнутых двухсосудистой ишемии и реперфузии мозга крыс

  Без введения инсулина Введение 0.5 IU инсулина
Крысы Ложно-опери-рованные (n = 7) После ишемии и реперфузии (n = 7) Ложно-опери-рованные (n = 6) После ишемии и реперфузии (n = 7)
Индекс окисленности 0.144 (0.125; 0.158) 0.164 (0.157; 0.171)* 0.146 (0.133; 0.159) 0.151 (0.132; 0.142)#
Основания Шиффа, у.е./мг липидов 0.259 (0.188; 0.283) 0.585 (0.398; 0.585)* 0.273 (0.239; 0.297) 0.346 (0.307; 0.447)#
ТБК-АП, нмоль/мг белка 0.152 (0.137; 0.167) 0.170 (0.150; 0.196) 0.148 (0.133; 0.173) 0.166 (0.152; 0.174)
Глутатион общий, мкмоль/мг белка 0.147 (0.129; 0.147) 0.161 (0.135; 0.151) 0.302 (0.279; 0.296)* 0.355 (0.323; 0.384)#

Примечание. Данные представлены в виде медианы и межквартильного размаха (25-й процентиль; 75-й процентиль). Различия достоверны по U-критерию Манна–Уитни: * – по сравнению с содержанием в коре головного мозга ложно-оперированных крыс, не получавших инсулин, p < 0.05; # – по сравнению с содержанием в коре головного мозга крыс, подвергнутых ишемии и реперфузии и не получавших инсулин, p < 0.05.

Можно предположить, что инсулин, вводимый интраназально в количестве 0.5 IU, уменьшает интенсивность свободнорадикальных процессов при ишемии и реперфузии мозга, что приводит к снижению уровня продуктов ПОЛ. Известно, что инсулин способен оказывать влияние на образование активных форм кислорода и опосредовать снижение интенсивности свободнорадикальных процессов [9], что может проявляться в уменьшении уровня продуктов ПОЛ. С другой стороны, введение инсулина может способствовать активации отдельных компонентов антиоксидантной защиты. В связи с этим мы исследовали влияние инсулина на содержание общего глутатиона в цитоплазматической фракции. Мы не обнаружили достоверных изменений в уровне общего глутатиона в цитоплазматической фракции коры мозга крыс, подвергшихся ИР (табл.). Однако введение 0.5 IU инсулина приводило к достоверному увеличению количества общего глутатиона, как у ЛО животных, так и после ИР (табл. 1).

Таким образом, показано, что двухсосудистая ишемия мозга с гипотензией и последующей реперфузией приводит к усилению свободнорадикальных процессов, что проявляется в увеличении индекса окисленности липидов и повышении количества оснований Шиффа, но не сопровождается изменением уровня общего глутатиона. Интраназальное введение инсулина в количестве 0.5 IU крысам, перенесшим ИР, нормализует процессы ПОЛ, что возможно опосредовано повышением под влиянием инсулина уровня общего глутатиона, который играет ключевую роль в антиоксидантной защите мозга. Так, в опытах на первичной культуре нейронов коры мозга показано, что инсулин способен повышать уровень общего глутатиона, как в контрольных клетках, так и при окислительном стрессе, усиливая активность глутатионредуктазы и снижая активность глутатионпероксидазы [10], что может иметь место и при ишемии-реперфузии мозга in vivo.

Полученные данные о защитном эффекте инсулина, вводимого интраназально, при ишемии и реперфузии мозга открывают перспективу его дальнейшего изучения при острых нарушениях мозгового кровообращения. При этом возникает необходимость подобных исследований на стареющих животных, у которых регенеративный потенциал тканей мозга ниже, чем у молодых особей.

Список литературы

  1. White B.C., Sullivan J.M., DeGracia D.J., O’Neil B.J., Neumar R.W., Grossman L.I., Rafols J.A., Krause G.S. Brain ischemia and reperfusion: molecular mechanisms of neuronal injury. J. Neurol. Sci. 179 (1): 1–33. 2000.

  2. Lioutas V.A., Alfaro-Martinez F., Bedoya F., Chung C.C., Pimentel D.A., Novak V. Intranasal insulin and insulin-like growth factor 1 as neuroprotectants in acute ischemic stroke. Transl. Stroke Res. V. 6. №. 4. P. 264–275. 2015.

  3. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. М: Гриф и К. 2012. Rukovodstvo po provedeniyu doklinicheskih issledovanij lekarstvennyh sredstv [Guide to carrying out preclinical researches of pharmaceutical products]. М: Griph and Co. 2012 (In Russ)].

  4. Молчанова С.М., Москвин А.Н., Захарова И.О., Юрлова Л.А., Носова И.Ю., Аврова Н.Ф. Влияние двухсосудистой ишемии переднего мозга и введения индометацина и квинакрина на активность Na+, K+-АТФ-азы в разных областях мозга крыс. Ж. эвол. биохим. и физиол. 41 (1): 33–38. 2005. [Molchanova S.M., Moskvin A.N., Zakharova I.Yu., Yurlova L.A., Nosova I.Yu., Avrova N.F. Effects of two-vessel forebrain ischemia and of administration of indomethacin and quinacrine on Na+, K+-ATPase activity in various rat brain areas. J. Evol. Biochem. Physiol. 41 (1): 33–38. 2005. (In Russ)].

  5. Raval A.P., Liu C., Hu B.R. Rat Model of Global Cerebral Ischemia: The Two-Vessel Occlusion (2VO) Model of Forebrain Ischemia. Animal Models of Acute Neurological Injuries. Humana Press. 77–86. 2009.

  6. Галкина О.В., Ещенко Н.Д., Путилина Ф.Е., Вилкова В.А., Захарова Л.И. Влияние аналогов эстрогенов на перекисное окисление липидов в головном мозге и печени. Вестник СпБГУ. Сер. 3: Биол. 1: 90–94. 2009. [Galkina O.V., Еshchenko N.D., Putilina F.Е., Vilkova V.A., Zaharova L.I. Influence of estrogen analogs on lipid peroxidation in a brain and a liver. Vestnik SpBGU. Series 3. Biol. 1: 90–94. 2009. (In Russ)].

  7. Folch J., Lees M., Sloane Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. J. Biol. Chem. 226 (1): 497–509. 1957.

  8. Akerboom T.P.M., Sies H. Assay of glutathione, glutathione disulfide, and glutathione mixed disulfides in biological samples. Methods in enzymology. – Academic Press. 77: 373–382. 1981.

  9. Muller A.P., Haas C.B., Camacho-Pereira J., Brochier A.W., Gnoatto J., Zimmer E.R., de Souza D.O., Galina A., Portela L.V. Insulin prevents mitochondrial generation of H2O2 in rat brain. Exp. Neurol. 247: 66–72. 2013.

  10. Duarte A.I., Santos M.S., Oliveira C.R., Rego A.C. Insulin neuroprotection against oxidative stress in cortical neurons – Involvement of uric acid and glutathione antioxidant defenses. Free Radic. Biol. Med. 39 (7): 876–889. 2005.

Дополнительные материалы отсутствуют.