Генетика, 2022, T. 58, № 2, стр. 232-238
Филогенетическое положение сигов группы Coregonus lavaretus (L.) из Телецкого озера (Сибирь) на основе полногеномных данных митохондриальной ДНК
М. М. Соловьев 1, 2, *, Н. А. Бочкарев 1, Н. В. Орешкова 3, 4, Е. Н. Кашинская 1, Е. П. Симонов 1, 5
1 Институт систематики и экологии животных Сибирского отделения
Российской академии наук
630091 Новосибирск, Россия
2 Томский государственный университет
634050 Томск, Россия
3 Федеральный исследовательский центр, Красноярский научный центр Сибирского отделения
Российской академии наук
660036 Красноярск, Россия
4 Сибирский федеральный университет
660041 Красноярск, Россия
5 Тюменский государственный университет
625003 Тюмень, Россия
* E-mail: yarmak85@mail.ru
Поступила в редакцию 10.04.2021
После доработки 12.06.2021
Принята к публикации 25.06.2021
- EDN: BBYYMU
- DOI: 10.31857/S0016675822020126
Аннотация
Систематика комплекса видов европейского сига Coregonus lavaretus (L.) чрезвычайно сложна. Благодаря широкому распространению от Центральной Европы до водоемов Чукотки и высокой биологической пластичности описаны многие формы с различным таксономическим статусом. В Телецком озере (Россия) обитает эндемичная пара сигов – сиг Правдина Coregonus lavaretus pravdinellus и телецкий сиг C. smitti. Ранее было отсеквенировано 106 митогеномов комплекса C. lavaretus из разных популяций Европы, в то время как для сигов из Сибири такие данные полностью отсутствуют. Нами получены митохондриальные геномы C. smitti и C. l. pravdinellus длиной 16 738 пн с высоким покрытием. Митогеномы различаются по 46 позициям (0.27%). Совместный анализ митогеномов C. lavaretus из водоемов Европы и Телецкого озера подтверждает общее происхождение популяций сига восточной части Балтийского моря и водоемов Сибири. Кроме того, анализ полных митогеномов телецкого сига и сига Правдина не подтверждает их отдельный таксономический статус, по крайней мере, на основе мтДНК.
Сиги рода Coregonus (семейство Salmonidae) имеют циркумполярное распространение и в течение длительного времени служат моделью для изучения различных аспектов эволюционной биологии [1–8]. Считается, что систематика комплекса Coregonus lavaretus s.l. чрезвычайно сложна, и благодаря высокой биологической пластичности комплексного вида, в нем было описано множество внутривидовых форм [9, 10]. Относительно описанных форм/видов существует точка зрения, согласно которой значительная часть разнообразия принадлежит к одной форме/виду и является синонимами [11–13]. В Южной Сибири представители комплекса распространены от Телецкого озера до притоков р. Лена, где, как и в Арктике, было описано большое число “экологических форм” и видов [10, 11].
Первое упоминание о сигах из Телецкого озера можно найти в статье С.И. Гуляева “О сельдях в Телецком озере”, опубликованной в 1865 г. в газете “Томские губернские ведомости” [14]. Однако в статье нет какого-либо разделения сигов на формы или виды и только упоминается, что “похожи на каспийских и принадлежат к породе пресноводных сельдей” [14]. В 1900 г. в статье Н.А. Варпаховского “Рыбы Телецкого озера” опубликованы сведения о C. lavaretus из Телецкого озера, где он описан как C. smitti [15]. Позже, в 1916 г. Л.С. Берг отнес этого сига к ледовитоморским сигам C. lavaretus pidschian (Gmelin) natio Smitti Warpachowski, поскольку он не нашел четких различий между сигом из Телецкого озера и сигами из других водоемов Сибири [16]. Е.П. Радченко в своей работе, опубликованной в 1935 г., также использует название C. l. pidschian (Gmelin) natio Smitti Warpachowski для обозначения телецкого сига – сельди при описании его биологии. В работе не отмечаются различия между формами, хотя приводятся данные по сигам со средней длиной 92.7–170.8 мм (по Смитту) [17]. В 1949 г. Г.Д. Дулькейт публикует статью “Ихтиофауна Телецкого озера и реки Бия”, в которой телецкий сиг упоминается как форма сига-пыжьяна C. l. pidschian natio smitti Warpachowski и дает описание нового вида сига из Телецкого озера – сига Правдина Coregonus pravdinellus sp. nov. [18]. В 1962 г. А.Н. Гундризер понижает таксономический статус сига Правдина до подвидового – Coregonus lavaretus pravdinellus Dulkeit и приводит сравнительную морфологическую характеристику относительно телецкого сига [19]. В 1981 г. коллективом авторов была опубликована монография “Рыбы Телецкого озера”, где анализируются морфологические, биологические, экологические характеристики сигов и рассматривается их происхождение [20]. Позже были опубликованы еще несколько работ, касающихся морфологической и биологической изменчивости сига Правдина [21–23]. Основываясь на данных аллозимного анализа в 2010 г., С.Н. Балдина с соавт. и Д.В. Политов с соавт. из-за заметных отличий этого сига от C. lavaretus из других географических регионов предложили рассматривать телецкого сига как самостоятельный вид C. smitti [24, 25]. Однако исследования мтДНК (1930 пн ND1 [26] и 1140 пн Cytb [27]) не выявили значительных отличий как между телецкими сигами, так и между ними и сигами C. lavaretus из других водоемов бассейна р. Обь. Также не было обнаружено морфологического и генетического соответствия между различными формами/видами симпатрических сигов Телецкого озера [26]. Такое состояние мтДНК может являться результатом, как формообразования, так и встречного расселения с последующей гибридизацией.
В настоящем исследовании телецкого сига мы будем называть как “C. smitti”, а сига Правдина как “C. l. pravdinellus”. Телецкий сиг может достигать длины по Смитту 20–25 см (в возрасте семи лет) и общей массы тела около 150–200 г, имеет в среднем (Sp.br) 27–28 тычинок на первой жаберной дуге (малотычинковая форма), в то время как сиг Правдина значительно меньше и относится к среднетычинковым сигам (Sp.br = 33–34) [28]. Обе формы/вида сигов Телецкого озера относятся к малочешуйчатым сигам (ll = 81–83), широко распространенным в водоемах Евразии. Спектр питания телецкого сига таксономически разнообразен и включает в себя личинок насекомых, моллюсков, гаммарид и др., в то время как сиг Правдина питается преимущественно планктонными ракообразными [22]. Подобные формы сигов в литературе часто упоминаются как нормальные (normal) (бентофаги) и карликовые (dwarf) (планктофаги) [5, 29].
В 2012 г. Якобсен с соавт. анализируя 106 митогеномов представителей комплекса C. lavaretus из разных популяций в Европе, достигли гораздо более разрешенной топологии дерева, чем это было возможно ранее на основе небольших фрагментов мтДНК [30]. Однако в этот анализ не были включены представители C. lavaretus из Сибири. Чтобы частично восполнить этот пробел, в настоящей работе мы предлагаем полные митогеномы телецких симпатрических сигов C. smitti и C. l. pravdinellus.
Сиги были пойманы в сентябре 2017 г. в северной части Телецкого озера (52.32° с.ш. 87.50° в.д.) (Республика Алтай, Западная Сибирь, Россия). Митогеномы были собраны из данных, полученных в эксперименте по секвенированию транскриптомов желудочно-кишечного тракта (RNA-seq). Тотальную РНК из кишечников по одной особи от каждого сига выделяли с использованием реагента ExtractRNA для выделения суммарной РНК (ЗАО “Евроген”, Москва) по инструкции производителя. Целостность выделенной РНК проверяли на электрофоретической системе Bioanalyzer 2100 (Agilent Technologies) с использованием Agilent RNA 6000 Nano Reagents (Agilent Technologies). Концентрацию РНК в образце измеряли с помощью флуориметра Qubit (Thermo Fisher Scientific, США). Библиотеку готовили с использованием набора RNA NEBNext Ultra II для Illumina (New England Biolabs) в соответствии с инструкциями производителя. Контроль качества подготовленной библиотеки проводили на приборе Bioanalyzer 2100 с использованием реагентов Agilent DNA 1000 (Agilent Technologies). Готовую библиотеку секвенировали на платформе Illumina NovaSeq 6000 (300 циклов, 2 × 150 пн). Качество полученных прочтений оценивалось с помощью FastQC 0.11.7 [31]. Удаление адаптеров и низкокачественных ридов выполнялись с помощью Cutadapt 1.9.1 [32]. Прочтения были картированы на митохондриальные геномы Coregoninae и собраны в отдельный файл с помощью bowtie2 2.3.5 (с параметрами по умолчанию) [33]. Затем эти чтения были собраны de novo в контиги с помощью инструмента “De Novo Assembly” в CLC Genomics Workbench с настройками по умолчанию. Полученные контиги были выровнены на ранее опубликованный митогеном C. lavaretus (NC_002646.1) с помощью инструмента CLC “Map Reads to Reference”. Выровненные на митогеном контиги объединялись в консенсусную последовательность с помощью инструмента CLC “Extract Consensus Sequence”.
В качестве альтернативного подхода прочтения картировались на референсный митогеном с помощью инструмента CLC “Map Reads to Reference” (настройки по умолчанию) с извлечением консенсусной последовательности. Затем обе консенсусные последовательности мтДНК, полученные двумя разными подходами, вручную выравнивались и сопоставлялись друг с другом в SeaView 4.5.4 [34]. Полученное выравнивание проверялось вручную, и несколько конфликтующих позиций были исправлены путем сопоставления с результатами обратного картирования ридов на полученные консенсусные последовательности. Автоматическая аннотация митохондриальных геномов выполнена с помощью MitoAnnotator [35], проверена и скорректирована вручную. Нами успешно получены митохондриальные геномы C. smitti и C. l. pravdinellus длиной 16 738 пн со средним покрытием 9301× и 13 187× соответственно (номера доступа в NCBI GenBank MK913369 и MW817086).
Реконструкция филогенетических отношений выполнялась при помощи методов максимального правдоподобия (maximum likelihood, ML) и байесовского анализа (Bayesian inference, BI). Митохондриальные геномы C. lavaretus были получены из публичных данных в GenBank (номера доступа даны на рис. 1), множественное выравнивание последовательностей выполнено с помощью Muscle 3.8.31 [36]. Выравнивание было разделено на отдельные партиции согласно схеме аннотации мтДНК, поиск оптимальной схемы разделения и выбор моделей нуклеотидных замен проведен в PartitionFinder 2.1.1 [37] для BI, или в IQ-TREE 2.1.2 [38] с использованием ModelFinder [39] для ML-анализа (табл. 1). Программа MrBayes 3.2.6 [40] использовалась для байесовского анализа со следующими параметрами: два одновременных запуска по 106 генераций с частотой записи параметров каждые 500 генераций. Первые 25% генераций были исключены как тренировочные (burn-in). ML-анализ выполнен в программе IQ-TREE, с оценкой устойчивости узлов филогенетических деревьев при помощи процедуры ультрабыстрого бутстрепа [41] с 1000 реплик. Некорректированные генетические дистанции между проанализированными митогеномами были рассчитаны в MEGA7 [42].
Таблица 1.
Анализ | Модель | Разделы |
---|---|---|
BI | HKY + I | tRNA-Ser, tRNA-His, tRNA-Tyr, tRNA-Ala, tRNA-Pro, tRNA-Glu, tRNA-Met, L-strand rep. origin, ATP8, tRNA-Leu, COX2, COX3, COX1, tRNA-Phe, control region, tRNA-Gln |
HKY | tRNA-Lys, tRNA-Asp, tRNA-Val, tRNA-Trp, 12S, 16S, tRNA-Ser, tRNA-Thr, tRNA-Arg, tRNA-Cys | |
GTR | tRNA-Gly, tRNA-Asn, ND4l, ND1, ND3, CYTB, ATP6, ND2, ND4, ND5, tRNA-Ile, tRNA-Leu | |
HKY | ND6 | |
ML | TN + F | tRNA-Phe, 12S, tRNA-Val, 16S, tRNA-Trp, L-strand rep. origin, ND6, tRNA-Thr |
TN + F + I | tRNA-Leu, ND1, tRNA-Ile, tRNA-Gln, tRNA-Met, ND2, tRNA-Ala, tRNA-Asn, tRNA-Cys, tRNA-Tyr, COX1, tRNA-Ser2, tRNA-Asp, COX2, tRNA-Lys, ATP8, ATP6, COX3, tRNA-Gly, ND3, tRNA-Arg, ND4l, ND4, tRNA-His, tRNA-Ser, tRNA-Leu2, ND5, tRNA-Glu, CYTB, tRNA-Pro, control region |
Полученные митогеномы различаются по 46 позициям (0.27%). Филогенетические деревья, реконструированные двумя методами, имеют одинаковую топологию и помещают обоих исследованных сигов в “европейскую северо-восточную” кладу C. lavaretus (согласно [30]) со 100%-ной поддержкой (на рис. 1 приведены только результаты BI). Среднее нескорректированное генетическое расстояние (p-distance) между членами клады составляет 0.14 ± 0.01% (min–max: 0.006–0.29%), в то время как среднее расстояние до членов сестринской “Европейской юго-западной” клады (по [30]) составляет 0.48 ± 0.05%. Таким образом, совместный анализ митогеномов C. lavaretus из водоемов Европы и Телецкого озера подтверждает общее происхождение популяций сига восточной части Балтийского моря и водоемов Сибири. Кроме того, анализ полных митогеномов не подтверждает их отдельный таксономический статус (как “C. smitti” и “C. l. pravdinellus”), по крайней мере на основе мтДНК.
Филогенетический анализ показал базальное положение сигов Телецкого озера в пределах их клады, то есть как наиболее раннюю ветвь, отделившуюся от самого недавнего общего предка “европейской северо-восточной” клады. В предыдущих работах с сибирскими популяциями сигов показано, что сиги Телецкого озера имеют общие гаплотипы мтДНК по фрагменту ND1 (975 пн) и 16S-ND1 (1929 пн) с сигами из притоков нижнего течения р. Обь (Западная Сибирь), бассейнов рек Большой Енисей и Анабар, водоемов п-ова Таймыр (Восточная Сибирь) и водоемов Фенноскандии [13, 26]. Что свидетельствует о широком распространении и расселении этой гаплогруппы сигов в водоемах Евразии.
Заселение сигами постледниковых водоемов Европы из водоемов Сибири скорее всего происходило двумя путями. В настоящее время известно, что сиги из рефугиумов Алтае-Саянской горной страны расселялись вниз по течению основной магистрали р. Обь, и мигрировали как на восток (в бассейны рек Оленек, Анабар, Пра-Енисей), так и в западном направлении, до бассейна Балтийского моря [13, 43]. Кроме того, морфологически и генетически дистантные ледниково-равнинные сиги (С. l. pidschian n. glacialis), вероятно арктического происхождения, мигрировали вдоль побережья в западном направлении [1]. Таким образом, разнообразие сигов с нижним и полунижним ртом в европейских водоемах обеспечивалось гибридизацией, по крайней мере четырех генетических линий сигов: сформировавшимся в европейских рефугиумах Альпийской и Североморской, и пришедшими с Востока Южно-Сибирской и Сибирской Арктической [1, 2].
Исследование поддержано грантом РНФ 17-74-10071.
Все применимые международные, национальные и/или институциональные принципы ухода и использования животных были соблюдены.
Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.
Вклад авторов: М.М.С. и Е.П.С. внесли равный вклад в работу и подготовку рукописи.
Список литературы
Østbye K., Bernatchez L., Næsje T.F. et al. Evolutionary history of the European whitefish Coregonus lavaretus (L.) species complex as inferred from mtDNA phylogeography and gill-raker numbers // Mol. Ecol. 2005. V. 14. P. 4371–4387. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2005.02737.x
Østbye K., Amundsen P., Bernatchez L. et al. Parallel evolution of ecomorphological traits in the European whitefish Coregonus lavaretus (L.) species complex during postglacial times // Mol. Ecol. 2006. V. 15. № 13. P. 3983–4001. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2006.03062.x
Rogers S.M., Bernatchez L. The genetic architecture of ecological speciation and the association with signatures of selection in natural lake whitefish (Coregonus sp. Salmonidae) species pairs // Mol. Biol. Evol. 2007. V. 24. № 6. P. 1423–1438. https://doi.org/10.1093/molbev/msm066
Lundsgaard-Hansen B., Matthews B., Vonlanthen P. et al. Adaptive plasticity and genetic divergence in feeding efficiency during parallel adaptive radiation of whitefish (Coregonus spp.) // J. Evol. Biol. 2013. V. 26. № 3. P. 483–498. https://doi.org/10.1111/jeb.12063
Sevellec M., Derome N., Bernatchez L. Holobionts and ecological speciation: the intestinal microbiota of lake whitefish species pairs // Microbiome. 2018. V. 6. № 47. https://doi.org/10.1186/s40168-018-0427-2
Solovyev M.M., Kashinskaya E.N., Bochkarev N.A. et al. The effect of diet on the structure of gut bacterial community of sympatric pair of whitefishes (Coregonus lavaretus): One story more // PeerJ. 2019. V. 7. P. e8005. https://doi.org/10.7717/peerj.8005
Bychenko O.S., Sukhanova L.V., Azhikina T.L. et al. Differences in brain transcriptomes of closely related Baikal Coregonid species // Bio. Med. Res. Int. 2014. V. 2014. P. 1–11. https://doi.org/10.1155/2014/857329
Teterina V., Sukhanova L., Smirnov V. et al. Complete mitochondrial genomes of Baikal endemic coregonids: Omul and lacustrine whitefish (Salmonidae: Coregonus sp.) // Mitochondrial DNA Part B-Resources. 2020. V. 5. P. 414–416. https://doi.org/0.1080/23802359.2019.1703565
Правдин И.Ф. Сиги водоемов Карело-Финской ССР. М., Л.: Изд-во АН СССР, 1954. 324 с.
Решетников Ю.С. Экология и систематика сиговых рыб. М.: Наука, 1980. 300 с.
Скрябин А.Г. Сиговые рыбы юга Сибири. Новосибирск: Наука, 1979. 229 с.
Романов В.И., Зуйкова Е.И., Бочкарев Н.А. Морфологическая и экологическая дифференциация симпатрических сигов рода Сoregonus из оз. Таймыр // Сиб. экологич. журн. 2016. № 9. С. 290–296.
Бочкарёв Н.А. Пестрякова Л.А., Захаров Е.С. и др. Сиг-пыжьян (Сoregonus lavaretus pidschian, Coregonidae) реки Aнабар: морфогенетическая структура популяции // Генетика. 2018. Т. 54. № 9. С. 1057–1067. https://doi.org/10.1134/S1022795418090041
Гуляев С.И. О сельдях в Телецком озере // Томские губернские ведомости (часть неофициальная). 1865. № 43. С. 1–4.
Варпаховский Н.А. Рыбы Телецкого озера // Ежегодник зоол. музея АН. 1900. Т. 5. С. 241–271.
Берг Л.С. Рыбы пресных вод Российской Империи. М.: Типография Т-ва Рябушинских, 1916. 563 с.
Радченко Е.П. О рыбном хозяйстве Телецкого озера (промыслово-биологический очерк) // Тр. ВНИРО. 1935. Т. 2. С. 64–100.
Дулькейт Г.Д. Ихтиофауна озера Телецкого и реки Бия // Заметки по фауне и флоре Сибири. Томск: Томский гос. ун-тет, 1949. № 8. С. 9–12.
Гундризер А.Н. К биологии сига Правдина из Телецкого озера и реки Бия // Изв. Сиб. отд. АН СССР. 1962. № 3. С. 111–119.
Гундризер А.Н., Иоганзен Б.Г., Кафанова В.В., Кривощеков Г.М. Рыбы Телецкого озера. Новосибирск: Наука, 1981. 189 с.
Бочкарёв Н.А., Гафина Т.Э. Сравнительная характеристика телецкого сига и сига Правдина Телецкого озера. (Алтайский край) // Сиб. биол. журн. 1993. № 2. С. 64–69.
Бочкарёв Н.А., Зуйкова Е.И. Морфобиологическая и экологическая дифференциация симпатрических сигов рода Coregonus из Телецкого озера // Зоол. журн. 2006. Т. 85. № 8. С. 950–958.
Голубцов А.С., Малков Н.П. Очерк ихтиофауны Республики Алтай: систематическое разнообразие, распространение и охрана. М.: Тов-во науч. изд. КМК, 2007. 164 с.
Балдина С.Н., Гордон Н.Ю., Политов Д.В. Генетическая дифференциация некоторых видов сиговых рыб Сибири // Биология, биотехника разведения и состояние запасов сиговых рыб. Матер. VII Международного научно-произв. совещ. / Под ред. Литвиненко А.И., Решетникова Ю.С. Тюмень: Госрыбцентр, 2010. С. 5–9.
Политов Д.В., Гордон Н.Ю., Балдина С.Н. Филогенетика и филогеография сиговых – сравнение морфологического и генетического подходов // Биология, биотехника разведения и состояние запасов сиговых рыб. Матер. VII Международного научно-произв. совещ. / Под ред. Литвиненко А.И., Решетникова Ю.С. Тюмень: Госрыбцентр, 2010. С. 37–41.
Bochkarev N.A., Zuykova E.I., Katokhin A.V. Morphology and mitochondrial DNA variation of the Siberian whitefish Coregonus lavaretus pidschian (Gmelin) in the upstream water bodies of the Ob and Yenisei rivers // Evol. Ecol. 2011. V. 25. P. 557–572. https://doi.org/10.1007/s10682-010-9437-7
Sukhanova L.V., Smirnov V.V., Smirnova-Zalumi N.S. et al. Molecular phylogeography of Lake Baikal coregonid fishes // Advanc. Limnol. 2012. V. 63. P. 261–283. https://doi.org/10.1127/advlim/63/2012/261
Бочкарёв Н.А. Межгодовая изменчивость биологических признаков у симпатрических сигов Телецкого озера // Вест. СВНЦ ДВО РАН. 2009. № 3. С. 40–45.
Bernatchez L. Ecological theory of adaptive radiation: an empirical assessment from coregonine fishes (Salmoniformes) // Evolution Illuminated: Salmon and Their Relatives. N.Y.: Oxford Univ. Press, 2004. P. 175–207.
Jacobsen M.M., Hansen M.M., Orlando L. et al. Mito-genome sequencing reveals shallow evolutionary histories and recent divergence time between morphologically and ecologically distinct European whitefish (Coregonus spp.) // Mol. Ecol. 2012. V. 21. P. 2727–2742. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2012.05561.x
Andrews S. FastQC: A quality control tool for high throughput sequence data. [accessed 2019 March 10]. 2010. http://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/ projects/fastqc
Martin M. Cutadapt removes adapter sequences from high-throughput sequencing reads // EMBnet.journal. 2011. V. 17. № 1. P. 10–12. https://doi.org/10.14806/ej.17.1.200
Langmead B., Salzberg S.L. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2 // Nat. Methods. 2012. V. 185. № 9. P. 357–354. https://doi.org/10.1038/nmeth.1923
Gouy M., Guindon S., Gascuel O. SeaView version 4: A multiplatform graphical user interface for sequence alignment and phylogenetic tree building // Mol. Biol. Evol. 2010. V. 27. P. 221–224. https://doi.org/10.1093/molbev/msp259
Iwasaki W., Fukunaga T., Isagozawa R. et al. MitoFish and MitoAnnotator: A mitochondrial genome database of fish with an accurate and automatic annotation pipeline // Mol. Biol. Evol. 2013. V. 30. № 11. P. 2531–2540. https://doi.org/10.1093/molbev/mst141
Edgar R.C. MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput // Nucl. Ac. Res. 2004. V. 32. P. 1792–1797. https://doi.org/10.1093/nar/gkh340
Lanfear R., Frandsen P.B., Wright A.M. et al. PartitionFinder 2: New methods for selecting partitioned models of evolution for molecular and morphological phylogenetic analyses // Mol. Biol. Evol. 2016. V. 34. № 3. P. 772–773. https://doi.org/10.1093/molbev/msw260
Minh B.Q., Schmidt H.A., Chernomor O. et al. IQ-TREE 2: New models and efficient methods for phylogenetic inference in the genomic era // Mol. Biol. Evol. 2020. V. 37. P. 1530–1534. https://doi.org/10.1093/molbev/msaa015
Kalyaanamoorthy S., Minh B.Q., Wong T.K.F. et al. ModelFinder: Fast model selection for accurate phylogenetic estimates // Nat. Methods. 2017. V. 14. P. 587–589. https://doi.org/10.1038/nmeth.4285
Ronquist F., Huelsenbeck J.P. MRBAYES 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models // Bioinformatics. 2003. V. 19. P. 1572–1574. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btg180
Hoang D.T., Chernomor O., von Haeseler A. et al. UFBoot2: Improving the ultrafast bootstrap approximation // Mol. Biol. Evol. 2018. V. 35. P. 518–522. https://doi.org/10.1093/molbev/msx281
Kumar S., Stecher G., Tamura K. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 7.0 for Bigger Datasets // Mol. Biol. Evol. 2016. V. 33. P. 1870–1874. https://doi.org/10.1093/molbev/msw054
Бочкарёв Н.А., Сендек Д.С., Зуйкова Е.И. и др. Популяционная структура и происхождение некоторых экологических форм Сoregonus lavaretus pidschian из р. Оленек // Генетика. 2021. Т. 57. № 7. С. 797–809. https://doi.org/10.31857/S0016675821070043
Дополнительные материалы отсутствуют.