Генетика, 2022, T. 58, № 2, стр. 232-238

Филогенетическое положение сигов группы Coregonus lavaretus (L.) из Телецкого озера (Сибирь) на основе полногеномных данных митохондриальной ДНК

М. М. Соловьев 12*, Н. А. Бочкарев 1, Н. В. Орешкова 34, Е. Н. Кашинская 1, Е. П. Симонов 15

1 Институт систематики и экологии животных Сибирского отделения Российской академии наук
630091 Новосибирск, Россия

2 Томский государственный университет
634050 Томск, Россия

3 Федеральный исследовательский центр, Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук
660036 Красноярск, Россия

4 Сибирский федеральный университет
660041 Красноярск, Россия

5 Тюменский государственный университет
625003 Тюмень, Россия

* E-mail: yarmak85@mail.ru

Поступила в редакцию 10.04.2021
После доработки 12.06.2021
Принята к публикации 25.06.2021

Полный текст (PDF)

Аннотация

Систематика комплекса видов европейского сига Coregonus lavaretus (L.) чрезвычайно сложна. Благодаря широкому распространению от Центральной Европы до водоемов Чукотки и высокой биологической пластичности описаны многие формы с различным таксономическим статусом. В Телецком озере (Россия) обитает эндемичная пара сигов – сиг Правдина Coregonus lavaretus pravdinellus и телецкий сиг C. smitti. Ранее было отсеквенировано 106 митогеномов комплекса C. lavaretus из разных популяций Европы, в то время как для сигов из Сибири такие данные полностью отсутствуют. Нами получены митохондриальные геномы C. smitti и C. l. pravdinellus длиной 16 738 пн с высоким покрытием. Митогеномы различаются по 46 позициям (0.27%). Совместный анализ митогеномов C. lavaretus из водоемов Европы и Телецкого озера подтверждает общее происхождение популяций сига восточной части Балтийского моря и водоемов Сибири. Кроме того, анализ полных митогеномов телецкого сига и сига Правдина не подтверждает их отдельный таксономический статус, по крайней мере, на основе мтДНК.

Keywords: Coregoninae, Coregonus smitti, Coregonus lavaretus pravdinellus, Алтай, митогеном, Сибирь.

Сиги рода Coregonus (семейство Salmonidae) имеют циркумполярное распространение и в течение длительного времени служат моделью для изучения различных аспектов эволюционной биологии [18]. Считается, что систематика комплекса Coregonus lavaretus s.l. чрезвычайно сложна, и благодаря высокой биологической пластичности комплексного вида, в нем было описано множество внутривидовых форм [9, 10]. Относительно описанных форм/видов существует точка зрения, согласно которой значительная часть разнообразия принадлежит к одной форме/виду и является синонимами [1113]. В Южной Сибири представители комплекса распространены от Телецкого озера до притоков р. Лена, где, как и в Арктике, было описано большое число “экологических форм” и видов [10, 11].

Первое упоминание о сигах из Телецкого озера можно найти в статье С.И. Гуляева “О сельдях в Телецком озере”, опубликованной в 1865 г. в газете “Томские губернские ведомости” [14]. Однако в статье нет какого-либо разделения сигов на формы или виды и только упоминается, что “похожи на каспийских и принадлежат к породе пресноводных сельдей” [14]. В 1900 г. в статье Н.А. Варпаховского “Рыбы Телецкого озера” опубликованы сведения о C. lavaretus из Телецкого озера, где он описан как C. smitti [15]. Позже, в 1916 г. Л.С. Берг отнес этого сига к ледовитоморским сигам C. lavaretus pidschian (Gmelin) natio Smitti Warpachowski, поскольку он не нашел четких различий между сигом из Телецкого озера и сигами из других водоемов Сибири [16]. Е.П. Радченко в своей работе, опубликованной в 1935 г., также использует название C. l. pidschian (Gmelin) natio Smitti Warpachowski для обозначения телецкого сига – сельди при описании его биологии. В работе не отмечаются различия между формами, хотя приводятся данные по сигам со средней длиной 92.7–170.8 мм (по Смитту) [17]. В 1949 г. Г.Д. Дулькейт публикует статью “Ихтиофауна Телецкого озера и реки Бия”, в которой телецкий сиг упоминается как форма сига-пыжьяна C. l. pidschian natio smitti Warpachowski и дает описание нового вида сига из Телецкого озера – сига Правдина Coregonus pravdinellus sp. nov. [18]. В 1962 г. А.Н. Гундризер понижает таксономический статус сига Правдина до подвидового – Coregonus lavaretus pravdinellus Dulkeit и приводит сравнительную морфологическую характеристику относительно телецкого сига [19]. В 1981 г. коллективом авторов была опубликована монография “Рыбы Телецкого озера”, где анализируются морфологические, биологические, экологические характеристики сигов и рассматривается их происхождение [20]. Позже были опубликованы еще несколько работ, касающихся морфологической и биологической изменчивости сига Правдина [2123]. Основываясь на данных аллозимного анализа в 2010 г., С.Н. Балдина с соавт. и Д.В. Политов с соавт. из-за заметных отличий этого сига от C. lavaretus из других географических регионов предложили рассматривать телецкого сига как самостоятельный вид C. smitti [24, 25]. Однако исследования мтДНК (1930 пн ND1 [26] и 1140 пн Cytb [27]) не выявили значительных отличий как между телецкими сигами, так и между ними и сигами C. lavaretus из других водоемов бассейна р. Обь. Также не было обнаружено морфологического и генетического соответствия между различными формами/видами симпатрических сигов Телецкого озера [26]. Такое состояние мтДНК может являться результатом, как формообразования, так и встречного расселения с последующей гибридизацией.

В настоящем исследовании телецкого сига мы будем называть как “C. smitti”, а сига Правдина как “C. l. pravdinellus”. Телецкий сиг может достигать длины по Смитту 20–25 см (в возрасте семи лет) и общей массы тела около 150–200 г, имеет в среднем (Sp.br) 27–28 тычинок на первой жаберной дуге (малотычинковая форма), в то время как сиг Правдина значительно меньше и относится к среднетычинковым сигам (Sp.br = 33–34) [28]. Обе формы/вида сигов Телецкого озера относятся к малочешуйчатым сигам (ll = 81–83), широко распространенным в водоемах Евразии. Спектр питания телецкого сига таксономически разнообразен и включает в себя личинок насекомых, моллюсков, гаммарид и др., в то время как сиг Правдина питается преимущественно планктонными ракообразными [22]. Подобные формы сигов в литературе часто упоминаются как нормальные (normal) (бентофаги) и карликовые (dwarf) (планктофаги) [5, 29].

В 2012 г. Якобсен с соавт. анализируя 106 митогеномов представителей комплекса C. lavaretus из разных популяций в Европе, достигли гораздо более разрешенной топологии дерева, чем это было возможно ранее на основе небольших фрагментов мтДНК [30]. Однако в этот анализ не были включены представители C. lavaretus из Сибири. Чтобы частично восполнить этот пробел, в настоящей работе мы предлагаем полные митогеномы телецких симпатрических сигов C. smitti и C. l. pravdinellus.

Сиги были пойманы в сентябре 2017 г. в северной части Телецкого озера (52.32° с.ш. 87.50° в.д.) (Республика Алтай, Западная Сибирь, Россия). Митогеномы были собраны из данных, полученных в эксперименте по секвенированию транскриптомов желудочно-кишечного тракта (RNA-seq). Тотальную РНК из кишечников по одной особи от каждого сига выделяли с использованием реагента ExtractRNA для выделения суммарной РНК (ЗАО “Евроген”, Москва) по инструкции производителя. Целостность выделенной РНК проверяли на электрофоретической системе Bioanalyzer 2100 (Agilent Technologies) с использованием Agilent RNA 6000 Nano Reagents (Agilent Technologies). Концентрацию РНК в образце измеряли с помощью флуориметра Qubit (Thermo Fisher Scientific, США). Библиотеку готовили с использованием набора RNA NEBNext Ultra II для Illumina (New England Biolabs) в соответствии с инструкциями производителя. Контроль качества подготовленной библиотеки проводили на приборе Bioanalyzer 2100 с использованием реагентов Agilent DNA 1000 (Agilent Technologies). Готовую библиотеку секвенировали на платформе Illumina NovaSeq 6000 (300 циклов, 2 × 150 пн). Качество полученных прочтений оценивалось с помощью FastQC 0.11.7 [31]. Удаление адаптеров и низкокачественных ридов выполнялись с помощью Cutadapt 1.9.1 [32]. Прочтения были картированы на митохондриальные геномы Coregoninae и собраны в отдельный файл с помощью bowtie2 2.3.5 (с параметрами по умолчанию) [33]. Затем эти чтения были собраны de novo в контиги с помощью инструмента “De Novo Assembly” в CLC Genomics Workbench с настройками по умолчанию. Полученные контиги были выровнены на ранее опубликованный митогеном C. lavaretus (NC_002646.1) с помощью инструмента CLC “Map Reads to Reference”. Выровненные на митогеном контиги объединялись в консенсусную последовательность с помощью инструмента CLC “Extract Consensus Sequence”.

В качестве альтернативного подхода прочтения картировались на референсный митогеном с помощью инструмента CLC “Map Reads to Reference” (настройки по умолчанию) с извлечением консенсусной последовательности. Затем обе консенсусные последовательности мтДНК, полученные двумя разными подходами, вручную выравнивались и сопоставлялись друг с другом в SeaView 4.5.4 [34]. Полученное выравнивание проверялось вручную, и несколько конфликтующих позиций были исправлены путем сопоставления с результатами обратного картирования ридов на полученные консенсусные последовательности. Автоматическая аннотация митохондриальных геномов выполнена с помощью MitoAnnotator [35], проверена и скорректирована вручную. Нами успешно получены митохондриальные геномы C. smitti и C. l. pravdinellus длиной 16 738 пн со средним покрытием 9301× и 13 187× соответственно (номера доступа в NCBI GenBank MK913369 и MW817086).

Реконструкция филогенетических отношений выполнялась при помощи методов максимального правдоподобия (maximum likelihood, ML) и байесовского анализа (Bayesian inference, BI). Митохондриальные геномы C. lavaretus были получены из публичных данных в GenBank (номера доступа даны на рис. 1), множественное выравнивание последовательностей выполнено с помощью Muscle 3.8.31 [36]. Выравнивание было разделено на отдельные партиции согласно схеме аннотации мтДНК, поиск оптимальной схемы разделения и выбор моделей нуклеотидных замен проведен в PartitionFinder 2.1.1 [37] для BI, или в IQ-TREE 2.1.2 [38] с использованием ModelFinder [39] для ML-анализа (табл. 1). Программа MrBayes 3.2.6 [40] использовалась для байесовского анализа со следующими параметрами: два одновременных запуска по 106 генераций с частотой записи параметров каждые 500 генераций. Первые 25% генераций были исключены как тренировочные (burn-in). ML-анализ выполнен в программе IQ-TREE, с оценкой устойчивости узлов филогенетических деревьев при помощи процедуры ультрабыстрого бутстрепа [41] с 1000 реплик. Некорректированные генетические дистанции между проанализированными митогеномами были рассчитаны в MEGA7 [42].

Рис. 1.

Филогенетическое дерево комплекса C. lavaretus, полученное при помощи байесовского филогенетического анализа на основе полных последовательностей мтДНК. Приведены апостериорные вероятности выше 0.7, черные кружки в узлах означают апостериорную вероятность больше или равную 0.98. Последовательности C. clupeaformis использованы в качестве внешней группы. Прочие обозначения: I – Европейская юго-западная клада, II – Европейская северо-восточная клада (по [30]), D – Дания, B – Балтийское море, С – Чехия.

Таблица 1.

Оптимальные схемы разделения выравнивания и модели нуклеотидных замен, использованные в филогенетическом анализе

Анализ Модель Разделы
BI HKY + I tRNA-Ser, tRNA-His, tRNA-Tyr, tRNA-Ala, tRNA-Pro, tRNA-Glu, tRNA-Met, L-strand rep. origin, ATP8, tRNA-Leu, COX2, COX3, COX1, tRNA-Phe, control region, tRNA-Gln
HKY tRNA-Lys, tRNA-Asp, tRNA-Val, tRNA-Trp, 12S, 16S, tRNA-Ser, tRNA-Thr, tRNA-Arg, tRNA-Cys
GTR tRNA-Gly, tRNA-Asn, ND4l, ND1, ND3, CYTB, ATP6, ND2, ND4, ND5, tRNA-Ile, tRNA-Leu
HKY ND6
ML TN + F tRNA-Phe, 12S, tRNA-Val, 16S, tRNA-Trp, L-strand rep. origin, ND6, tRNA-Thr
TN + F + I tRNA-Leu, ND1, tRNA-Ile, tRNA-Gln, tRNA-Met, ND2, tRNA-Ala, tRNA-Asn, tRNA-Cys, tRNA-Tyr, COX1, tRNA-Ser2, tRNA-Asp, COX2, tRNA-Lys, ATP8, ATP6, COX3, tRNA-Gly, ND3, tRNA-Arg, ND4l, ND4, tRNA-His, tRNA-Ser, tRNA-Leu2, ND5, tRNA-Glu, CYTB, tRNA-Pro, control region

Полученные митогеномы различаются по 46 позициям (0.27%). Филогенетические деревья, реконструированные двумя методами, имеют одинаковую топологию и помещают обоих исследованных сигов в “европейскую северо-восточную” кладу C. lavaretus (согласно [30]) со 100%-ной поддержкой (на рис. 1 приведены только результаты BI). Среднее нескорректированное генетическое расстояние (p-distance) между членами клады составляет 0.14 ± 0.01% (min–max: 0.006–0.29%), в то время как среднее расстояние до членов сестринской “Европейской юго-западной” клады (по [30]) составляет 0.48 ± 0.05%. Таким образом, совместный анализ митогеномов C. lavaretus из водоемов Европы и Телецкого озера подтверждает общее происхождение популяций сига восточной части Балтийского моря и водоемов Сибири. Кроме того, анализ полных митогеномов не подтверждает их отдельный таксономический статус (как “C. smitti” и “C. l. pravdinellus”), по крайней мере на основе мтДНК.

Филогенетический анализ показал базальное положение сигов Телецкого озера в пределах их клады, то есть как наиболее раннюю ветвь, отделившуюся от самого недавнего общего предка “европейской северо-восточной” клады. В предыдущих работах с сибирскими популяциями сигов показано, что сиги Телецкого озера имеют общие гаплотипы мтДНК по фрагменту ND1 (975 пн) и 16S-ND1 (1929 пн) с сигами из притоков нижнего течения р. Обь (Западная Сибирь), бассейнов рек Большой Енисей и Анабар, водоемов п-ова Таймыр (Восточная Сибирь) и водоемов Фенноскандии [13, 26]. Что свидетельствует о широком распространении и расселении этой гаплогруппы сигов в водоемах Евразии.

Заселение сигами постледниковых водоемов Европы из водоемов Сибири скорее всего происходило двумя путями. В настоящее время известно, что сиги из рефугиумов Алтае-Саянской горной страны расселялись вниз по течению основной магистрали р. Обь, и мигрировали как на восток (в бассейны рек Оленек, Анабар, Пра-Енисей), так и в западном направлении, до бассейна Балтийского моря [13, 43]. Кроме того, морфологически и генетически дистантные ледниково-равнинные сиги (С. l. pidschian n. glacialis), вероятно арктического происхождения, мигрировали вдоль побережья в западном направлении [1]. Таким образом, разнообразие сигов с нижним и полунижним ртом в европейских водоемах обеспечивалось гибридизацией, по крайней мере четырех генетических линий сигов: сформировавшимся в европейских рефугиумах Альпийской и Североморской, и пришедшими с Востока Южно-Сибирской и Сибирской Арктической [1, 2].

Исследование поддержано грантом РНФ 17-74-10071.

Все применимые международные, национальные и/или институциональные принципы ухода и использования животных были соблюдены.

Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.

Вклад авторов: М.М.С. и Е.П.С. внесли равный вклад в работу и подготовку рукописи.

Список литературы

  1. Østbye K., Bernatchez L., Næsje T.F. et al. Evolutionary history of the European whitefish Coregonus lavaretus (L.) species complex as inferred from mtDNA phylogeography and gill-raker numbers // Mol. Ecol. 2005. V. 14. P. 4371–4387. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2005.02737.x

  2. Østbye K., Amundsen P., Bernatchez L. et al. Parallel evolution of ecomorphological traits in the European whitefish Coregonus lavaretus (L.) species complex during postglacial times // Mol. Ecol. 2006. V. 15. № 13. P. 3983–4001. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2006.03062.x

  3. Rogers S.M., Bernatchez L. The genetic architecture of ecological speciation and the association with signatures of selection in natural lake whitefish (Coregonus sp. Salmonidae) species pairs // Mol. Biol. Evol. 2007. V. 24. № 6. P. 1423–1438. https://doi.org/10.1093/molbev/msm066

  4. Lundsgaard-Hansen B., Matthews B., Vonlanthen P. et al. Adaptive plasticity and genetic divergence in feeding efficiency during parallel adaptive radiation of whitefish (Coregonus spp.) // J. Evol. Biol. 2013. V. 26. № 3. P. 483–498. https://doi.org/10.1111/jeb.12063

  5. Sevellec M., Derome N., Bernatchez L. Holobionts and ecological speciation: the intestinal microbiota of lake whitefish species pairs // Microbiome. 2018. V. 6. № 47. https://doi.org/10.1186/s40168-018-0427-2

  6. Solovyev M.M., Kashinskaya E.N., Bochkarev N.A. et al. The effect of diet on the structure of gut bacterial community of sympatric pair of whitefishes (Coregonus lavaretus): One story more // PeerJ. 2019. V. 7. P. e8005. https://doi.org/10.7717/peerj.8005

  7. Bychenko O.S., Sukhanova L.V., Azhikina T.L. et al. Differences in brain transcriptomes of closely related Baikal Coregonid species // Bio. Med. Res. Int. 2014. V. 2014. P. 1–11. https://doi.org/10.1155/2014/857329

  8. Teterina V., Sukhanova L., Smirnov V. et al. Complete mitochondrial genomes of Baikal endemic coregonids: Omul and lacustrine whitefish (Salmonidae: Coregonus sp.) // Mitochondrial DNA Part B-Resources. 2020. V. 5. P. 414–416. https://doi.org/0.1080/23802359.2019.1703565

  9. Правдин И.Ф. Сиги водоемов Карело-Финской ССР. М., Л.: Изд-во АН СССР, 1954. 324 с.

  10. Решетников Ю.С. Экология и систематика сиговых рыб. М.: Наука, 1980. 300 с.

  11. Скрябин А.Г. Сиговые рыбы юга Сибири. Новосибирск: Наука, 1979. 229 с.

  12. Романов В.И., Зуйкова Е.И., Бочкарев Н.А. Морфологическая и экологическая дифференциация симпатрических сигов рода Сoregonus из оз. Таймыр // Сиб. экологич. журн. 2016. № 9. С. 290–296.

  13. Бочкарёв Н.А. Пестрякова Л.А., Захаров Е.С. и др. Сиг-пыжьян (Сoregonus lavaretus pidschian, Coregonidae) реки Aнабар: морфогенетическая структура популяции // Генетика. 2018. Т. 54. № 9. С. 1057–1067. https://doi.org/10.1134/S1022795418090041

  14. Гуляев С.И. О сельдях в Телецком озере // Томские губернские ведомости (часть неофициальная). 1865. № 43. С. 1–4.

  15. Варпаховский Н.А. Рыбы Телецкого озера // Ежегодник зоол. музея АН. 1900. Т. 5. С. 241–271.

  16. Берг Л.С. Рыбы пресных вод Российской Империи. М.: Типография Т-ва Рябушинских, 1916. 563 с.

  17. Радченко Е.П. О рыбном хозяйстве Телецкого озера (промыслово-биологический очерк) // Тр. ВНИРО. 1935. Т. 2. С. 64–100.

  18. Дулькейт Г.Д. Ихтиофауна озера Телецкого и реки Бия // Заметки по фауне и флоре Сибири. Томск: Томский гос. ун-тет, 1949. № 8. С. 9–12.

  19. Гундризер А.Н. К биологии сига Правдина из Телецкого озера и реки Бия // Изв. Сиб. отд. АН СССР. 1962. № 3. С. 111–119.

  20. Гундризер А.Н., Иоганзен Б.Г., Кафанова В.В., Кривощеков Г.М. Рыбы Телецкого озера. Новосибирск: Наука, 1981. 189 с.

  21. Бочкарёв Н.А., Гафина Т.Э. Сравнительная характеристика телецкого сига и сига Правдина Телецкого озера. (Алтайский край) // Сиб. биол. журн. 1993. № 2. С. 64–69.

  22. Бочкарёв Н.А., Зуйкова Е.И. Морфобиологическая и экологическая дифференциация симпатрических сигов рода Coregonus из Телецкого озера // Зоол. журн. 2006. Т. 85. № 8. С. 950–958.

  23. Голубцов А.С., Малков Н.П. Очерк ихтиофауны Республики Алтай: систематическое разнообразие, распространение и охрана. М.: Тов-во науч. изд. КМК, 2007. 164 с.

  24. Балдина С.Н., Гордон Н.Ю., Политов Д.В. Генетическая дифференциация некоторых видов сиговых рыб Сибири // Биология, биотехника разведения и состояние запасов сиговых рыб. Матер. VII Международного научно-произв. совещ. / Под ред. Литвиненко А.И., Решетникова Ю.С. Тюмень: Госрыбцентр, 2010. С. 5–9.

  25. Политов Д.В., Гордон Н.Ю., Балдина С.Н. Филогенетика и филогеография сиговых – сравнение морфологического и генетического подходов // Биология, биотехника разведения и состояние запасов сиговых рыб. Матер. VII Международного научно-произв. совещ. / Под ред. Литвиненко А.И., Решетникова Ю.С. Тюмень: Госрыбцентр, 2010. С. 37–41.

  26. Bochkarev N.A., Zuykova E.I., Katokhin A.V. Morphology and mitochondrial DNA variation of the Siberian whitefish Coregonus lavaretus pidschian (Gmelin) in the upstream water bodies of the Ob and Yenisei rivers // Evol. Ecol. 2011. V. 25. P. 557–572. https://doi.org/10.1007/s10682-010-9437-7

  27. Sukhanova L.V., Smirnov V.V., Smirnova-Zalumi N.S. et al. Molecular phylogeography of Lake Baikal coregonid fishes // Advanc. Limnol. 2012. V. 63. P. 261–283. https://doi.org/10.1127/advlim/63/2012/261

  28. Бочкарёв Н.А. Межгодовая изменчивость биологических признаков у симпатрических сигов Телецкого озера // Вест. СВНЦ ДВО РАН. 2009. № 3. С. 40–45.

  29. Bernatchez L. Ecological theory of adaptive radiation: an empirical assessment from coregonine fishes (Salmoniformes) // Evolution Illuminated: Salmon and Their Relatives. N.Y.: Oxford Univ. Press, 2004. P. 175–207.

  30. Jacobsen M.M., Hansen M.M., Orlando L. et al. Mito-genome sequencing reveals shallow evolutionary histories and recent divergence time between morphologically and ecologically distinct European whitefish (Coregonus spp.) // Mol. Ecol. 2012. V. 21. P. 2727–2742. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2012.05561.x

  31. Andrews S. FastQC: A quality control tool for high throughput sequence data. [accessed 2019 March 10]. 2010. http://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/ projects/fastqc

  32. Martin M. Cutadapt removes adapter sequences from high-throughput sequencing reads // EMBnet.journal. 2011. V. 17. № 1. P. 10–12. https://doi.org/10.14806/ej.17.1.200

  33. Langmead B., Salzberg S.L. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2 // Nat. Methods. 2012. V. 185. № 9. P. 357–354. https://doi.org/10.1038/nmeth.1923

  34. Gouy M., Guindon S., Gascuel O. SeaView version 4: A multiplatform graphical user interface for sequence alignment and phylogenetic tree building // Mol. Biol. Evol. 2010. V. 27. P. 221–224. https://doi.org/10.1093/molbev/msp259

  35. Iwasaki W., Fukunaga T., Isagozawa R. et al. MitoFish and MitoAnnotator: A mitochondrial genome database of fish with an accurate and automatic annotation pipeline // Mol. Biol. Evol. 2013. V. 30. № 11. P. 2531–2540. https://doi.org/10.1093/molbev/mst141

  36. Edgar R.C. MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput // Nucl. Ac. Res. 2004. V. 32. P. 1792–1797. https://doi.org/10.1093/nar/gkh340

  37. Lanfear R., Frandsen P.B., Wright A.M. et al. PartitionFinder 2: New methods for selecting partitioned models of evolution for molecular and morphological phylogenetic analyses // Mol. Biol. Evol. 2016. V. 34. № 3. P. 772–773. https://doi.org/10.1093/molbev/msw260

  38. Minh B.Q., Schmidt H.A., Chernomor O. et al. IQ-TREE 2: New models and efficient methods for phylogenetic inference in the genomic era // Mol. Biol. Evol. 2020. V. 37. P. 1530–1534. https://doi.org/10.1093/molbev/msaa015

  39. Kalyaanamoorthy S., Minh B.Q., Wong T.K.F. et al. ModelFinder: Fast model selection for accurate phylogenetic estimates // Nat. Methods. 2017. V. 14. P. 587–589. https://doi.org/10.1038/nmeth.4285

  40. Ronquist F., Huelsenbeck J.P. MRBAYES 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models // Bioinformatics. 2003. V. 19. P. 1572–1574. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btg180

  41. Hoang D.T., Chernomor O., von Haeseler A. et al. UFBoot2: Improving the ultrafast bootstrap approximation // Mol. Biol. Evol. 2018. V. 35. P. 518–522. https://doi.org/10.1093/molbev/msx281

  42. Kumar S., Stecher G., Tamura K. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 7.0 for Bigger Datasets // Mol. Biol. Evol. 2016. V. 33. P. 1870–1874. https://doi.org/10.1093/molbev/msw054

  43. Бочкарёв Н.А., Сендек Д.С., Зуйкова Е.И. и др. Популяционная структура и происхождение некоторых экологических форм Сoregonus lavaretus pidschian из р. Оленек // Генетика. 2021. Т. 57. № 7. С. 797–809. https://doi.org/10.31857/S0016675821070043

Дополнительные материалы отсутствуют.