1. На главную
  2. Электронные версии
  3. Вопросы ихтиологии
  4. T. 63, № 3, 2023

Вопросы ихтиологии, 2023, T. 63, № 3, стр. 353-364

Аномалии позвоночника и позвонковые фенотипы сеголеток плотвы Rutilus rutilus (Cyprinidae) после раздельного и совместного воздействия магнитного поля и хлорофоса на эмбрионы

Ю. В. Чеботарева 1, *, В. В. Крылов 1, 2, М. Г. Таликина 1, Ю. Г. Изюмов 1

1 Институт биологии внутренних вод РАН – ИБВВ РАН
пос. Борок, Ярославская область, Россия

2 Научно-технологический центр уникального приборостроения РАН
Москва, Россия

* E-mail: pisces68@mail.ru

Поступила в редакцию 03.06.2022
После доработки 20.07.2022
Принята к публикации 15.09.2022

Аннотация

Исследованы аномалии строения позвоночника и позвонковые фенотипы у 4-месячных сеголеток плотвы Rutilus rutilus (Linnaeus, 1758) после совместного или раздельного воздействия магнитного поля (частота 500 Гц, величина индукции 150 мкТл) и хлорофоса (концентрация 0.01 мг/л) на эмбрионы в течение 48 ч от оплодотворения до начала органогенеза в сравнении с контрольными сеголетками. Самые распространённые нарушения развития позвоночника во всех группах – незамкнутые невральные или гемальные дуги, а также деформации и сращения тел позвонков. У рыб со сращениями позвонков отмечали увеличение общего количества позвонков, а также их числа в туловищном отделе позвоночника. Экспериментальная молодь отличалась от контрольной бóльшим количеством аномалий позвоночника, а также изменением частоты встречаемости отдельных позвонковых фенотипов. Наибольший эффект оказало воздействие магнитного поля.

Ключевые слова: плотва Rutilus rutilus, позвонковые фенотипы, аномалии позвоночника, магнитное поле, хлорофос.

Список литературы

  1. Ванюшина О.Г. 1990. Развитие осевого скелета у леща (Abramis brama L.) и плотвы (Rutilus rutilus L.) // Тр. ИБВВ АН СССР. Вып. 58 (61). С. 4–9.

  2. Владимиров В.И., Семенов К.И. 1959. Критический период в развитии личинок рыб // Докл. АН СССР. Т. 126. № 3. С. 663–666.

  3. Голованова И.Л., Изюмов Ю.Г., Чеботарева Ю.В., Таликина М.Г. 2006. Отдалённые последствия раздельного и сочетанного влияния хлорофоса и переменного электромагнитного поля в период эмбриогенеза на эффективность гидролиза углеводов у сеголетков плотвы // Токсикол. вестн. № 5 (80). С. 34–38.

  4. Есин Е.В. 2015. Нарушения развития у лососевых рыб (Salmonidae) в условиях масштабного вулканического загрязнения мест воспроизводства (на примере камчатской мальмы Salvelinus malma) // Онтогенез. Т. 46. № 2. С. 114–125. https://doi.org/10.7868/S0475145015020044

  5. Животовский Л.А. 1991. Популяционная биометрия. М.: Наука, 271 с.

  6. Касьянов А.Н. 1990. Популяционная структура и некоторые вопросы микрофилогенеза плотвы (Rutilus rutilus L.) // Тр. ИБВВ АН СССР. Вып. 58 (61). С. 64–86.

  7. Касьянов А.Н., Таликина М.Г., Изюмов Ю.Г. и др. 2001. Изменчивость признаков осевого скелета у сеголеток плотвы Rutilus rutilus после воздействия токсических веществ в период раннего индивидуального развития // Вопр. ихтиологии. Т. 41. № 4. С. 495–503.

  8. Крылов В.В., Чеботарева Ю.В., Изюмов Ю.Г., Осипова Е.А. 2010. Влияние магнитного поля и ионов Cu2+ на раннее развитие плотвы Rutilus rutilus (L.) (Cyprinidae, Cypriniformes) // Журн. СибГУ. Сер. биол. Т. 3. № 2. С. 199–210.

  9. Михайленко В.Г. 2002. Неоднозначность резистентности организмов // Успехи соврем. биологии. Т. 122. № 4. С. 334–341.

  10. Павлов Д.А. 2007. Морфологическая изменчивость в раннем онтогенезе костистых рыб. М.: ГЕОС, 246 с.

  11. Татарко К.И. 1977. Аномалии карпа и роль температурного фактора в их развитии // Тр. Всесоюз. гидробиол. о-ва. Т. XXI. Биологический режим водоёмов-охладителей ТЭЦ и влияние температуры на гидробионтов. С. 157–196.

  12. Чеботарева Ю.В. 2009. Аномалии в строении позвоночника у сеголеток плотвы Rutilus rutilus (L.) (Cyprinidae, Cypriniformes) после воздействия токсикантов на ранние стадии развития// Вопр. ихтиологии. Т. 49. № 1. С. 102–110.

  13. Чеботарева Ю.В., Изюмов Ю.Г. 2021. Межгодовая изменчивость морфологических признаков сеголеток плотвы Rutilus rutilus (Cyprinidae) из прибрежья Рыбинского водохранилища у посёлка Борок (Ярославская область) // Там же. Т. 61. № 6. С. 635–641. https://doi.org/10.31857/S0042875221060059

  14. Чеботарева Ю.В., Изюмов Ю.Г., Крылов В.В. 2009. Влияние переменного электромагнитного поля на раннее развитие плотвы Rutilus rutilus (Cyprinidae, Cypriniformes) // Там же. Т. 49. № 3. С. 422–428.

  15. Чеботарева Ю.В., Изюмов Ю.Г., Крылов В.В. 2016. Особенности строения позвоночника сеголеток плотвы Rutilus rutilus (Cyprinidae) после раздельного и совместного воздействия магнитного поля и повышенной температуры на эмбрионы и их связь с размерными показателями рыб // Там же. Т. 56. № 3. С. 345–355. https://doi.org/10.7868/S0042875216030036

  16. Щербаков Н.А. 1983. Морфологические изменения, развивающиеся в органах рыб при привыкании к токсическим веществам // Реакции гидробионтов на загрязнение. М.: Наука. С. 113–116.

  17. Яблоков Н.О. 2018. Морфологические аномалии скелета у молоди рыб р. Качи (бассейн Среднего Енисея) в градиенте техногенной нагрузки // Вестн. ТГУ. Биология. № 41. С. 156–173. https://doi.org/10.17223/19988591/41/9

  18. Яковлев В.Н., Изюмов Ю.Г., Касьянов А.Н. 1981. Фенетический метод исследований популяций карповых рыб // Биол. науки. № 2. С. 98–101.

  19. Boglione C., Gagliardi F., Scardi M., Cataudella S. 2001. Skeletal descriptors and quality assessment in larvae and post-larvae of wild-caught and hatchery reared gilthead sea bream (Sparus aurata L. 1758) // Aquaculture. V. 192. № 1. P. 1–22. https://doi.org/10.1016/S0044-8486%2800%2900446-4

  20. Boglione C., Costa C., Giganti M. et al. 2006. Biological monitoring of wild thicklip grey mullet (Chelon labrosus), golden grey mullet (Liza aurata), thinlip mullet (Liza ramada) and flathead mullet (Mugil cephalus) (Pisces: Mugilidae) from different Adriatic sites: meristic counts and skeletal anomalies // Ecol. Indic. V. 6. № 4. P. 712–732. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2005.08.032

  21. Boglione C., Gisbert E., Gavaia P. et al. 2013. Skeletal anomalies in reared European fish larvae and juveniles. Part 2: main typologies, occurrences and causative factors // Rev. Aquac. V. 5. Suppl. 1. P. S121–S167. https://doi.org/10.1111/raq.12016

  22. Bogutskaya N.G., Zuykov M.A., Naseka A.M., Anderson E.B. 2011. Normal axial skeleton structure in common roach Rutilus rutilus (Actinopterygii: Cyprinidae) and malformations due to radiation contamination in the area of the Mayak (Chelyabinsk Province, Russia) nuclear plant // J. Fish Biol. V. 79. № 4. P. 991–1016. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2011.03078.x

  23. Cavrois-Rogacki T., Drabikova L., Migaud H., Davie A. 2021. Deformities prevalence in farmed ballan wrasse (Labrus bergylta) in relation to hatchery origin and life stage // Aquaculture. V. 533. Article 736212. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.736212

  24. Fang H., Xu D. 2022. Development and malformations of the vertebra in the early stages of starry flounder Platichthys stellatus // Aquac. Res. V. 53. № 3. P. 884–892. https://doi.org/10.1111/are.15630

  25. Havas M. 2004. Biological effects of low frequency electromagnetic fields // Electromagnetic environments and health in buildings. London: Spon Press. P. 207–232.

  26. Kessabi K., Said K., Messaoudi I. 2013. Comparative study of longevity, growth, and biomarkers of metal detoxication and oxidative stress between normal and deformed Aphanius fasciatus (Pisces, Cyprinodontidae) // J. Toxicol. Environ. Health A. V. 76. № 23. P. 1269–1281. https://doi.org/10.1080/15287394.2013.850136

  27. Koumoundouros G. 2010. Morpho-anatomical abnormalities in Mediterranean marine aquaculture // Recent advances in aquaculture research. Kerala: Transworld Res. Network. P. 125–148.

  28. Krylov V.V., Chebotareva Yu.V., Izyumov Yu.G. 2016. Delayed consequences of extremely low-frequency magnetic fields and the influence of adverse environmental conditions on roach Rutilus rutilus embryos // J. Fish Biol. V. 88. № 4. P. 1283–1300. https://doi.org/10.1111/jfb.12869

  29. Lewis-McCrea L.M., Lall S.P. 2010. Effects of phosphorus and vitamin C deficiency, vitamin A toxicity and lipid peroxidation on skeletal abnormalities in Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus) // J. Appl. Ichthyol. V. 26. № 2. P. 334–343. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2010.01431.x

  30. Lindsey C.C. 1988. Factors controlling meristic variation // Fish Physiol. V. 11. Pt. B. P. 197–274. https://doi.org/10.1016/S1546-5098(08)60215-0

  31. Von Westernhagen H. 1988. Sublethal effects of pollutant on fish eggs and larvae // Fish Physiol. V. 11. Pt. A. P. 253–346. https://doi.org/10.1016/S1546-5098(08)60201-0

  32. Yershov P.N. 2008. The vertebral abnormalities in eelpout Zoarces viviparus (Linnaeus, 1758) (Pisces, Zoarcidae) // Proc. Zool. Inst. RAS. V. 312. № 1/2. P. 74–82. https://doi.org/10.31610/trudyzin/2008.312.1-2.74

Дополнительные материалы отсутствуют.

Инструменты

следующая статья выпуска предыдущая статья выпуска содержание выпуска

Вопросы ихтиологии

Архивы выпусков Информация о журнале Отправить рукопись в журнал