Успехи современной биологии, 2021, T. 141, № 3, стр. 265-270

Протекторное влияние коротких пептидов на нервную систему насекомых

Н. И. Чалисова 12*, Г. А. Рыжак 1, О. М. Ивко 1

1 Санкт-Петербургский институт биорегуляции и геронтологии
Санкт-Петербург, Россия

2 Институт физиологии им. И.П. Павлова РАН
Санкт-Петербург, Россия

* E-mail: ni_chalisova@mail.ru

Поступила в редакцию 07.01.2021
После доработки 08.01.2021
Принята к публикации 08.01.2021

Полный текст (PDF)

Аннотация

Актуальной задачей современной биологии и медицины является поиск биологически активных веществ, позволяющих направленно корректировать функциональную активность клеток, снижающуюся при различных патологических процессах. В обзоре анализируются нейропротекторные свойства коротких пептидов при исследовании условно-рефлекторной деятельности медоносной пчелы Apis mellifera L. Показано стимулирующее действие пептидов EDR, AEDG на кратковременную и долговременную память пчел. В экспериментах на мухах Drosophila melanogaster установлено, что пептид EDR нормализует локомоторную активность в модели болезни Паркинсона через уменьшение уровня экспрессии гена limk1, а также восстанавливает краткосрочную память у мутанта Agnst3. Выявление стимулирующего влияния пептидов EDR и AEDG на функцию высших отделов центральной нервной системы насекомых создает базу тестирования препаратов для лечения патологических процессов в центральной нервной системе. Параллелизм нейропротекторного действия коротких пептидов у двух групп организмов – млекопитающих и насекомых – свидетельствует о существовании общего, возможно, древнейшего в эволюции механизма пептидной регуляции жизнедеятельности организма.

Ключевые слова: нейропротекция, короткие пептиды, насекомые, условный рефлекс

Одно из наиболее приоритетных направлений в современной биологии и медицине – изучение механизмов регулирования многоклеточных систем и сложного равновесного состояния между двумя основными физиологическими процессами – пролиферацией и апоптозом. В Санкт-Петербургском институте биорегуляции и геронтологии разработана технология выделения ряда полипептидных комплексов из различных органов и тканей телят. Эти полипептиды оказывают тканеспецифическое действие, стимулируя клеточную пролиферацию в органотипической культуре соответствующей ткани (Чалисова и др., 2004; Закуцкий и др., 2006; Милютина и др., 2007; Рыжак и др., 2015).

Полипептидный препарат кортексин широко применяется в лечении нарушений функций головного мозга у людей разного возраста (Хавинсон и др., 2012). В основе молекулярного механизма действия кортексина лежит его способность активировать экспрессию генов, отвечающих за синтез нейротрофических факторов – мозговой нейротрофический фактор BDNF (brain-derived neurotrophic factor) и фактор роста нервов NGF (nerve growth factor) (Хавинсон, Кветной, 2000; Рыжак и др., 2001; Умнов и др., 2014). На основе анализа аминокислотного состава полипептидного комплекса кортексина, выделенного из коры головного мозга, методом УЭЖХ-МС (ультраэффективная жидкостная хроматография-масс-спектрометрия) был выявлен и синтезирован трипептид EDR (Glu-Asp-Arg) (Хавинсон и др., 2012; Рыжак и др., 2015; Чернова и др., 2017; Kraskovskaya et al., 2017).

При анализе аминокислотного состава полипептидного комплекса эпифиза было установлено, что с наибольшей частотой в нем встречаются глутаминовая кислота (Glu), аспарагиновая кислота (Asp), аланин (Ala) и глицин (Gly). Из этих аминокислот был сконструирован и синтезирован тетрапептид AEDG (Ala-Glu-Asp-Gly), который впоследствии был выявлен в полипептидном комплексе эпифиза (Khavinson et al., 2017a). Установлено, что пептид AEDG обладает теми же биологическими эффектами, что и полипептидный комплекс эпифиза, но в меньших концентрациях (Хавинсон и др., 2012; Журкович и др., 2020). Эти пептиды оказывали стимулирующее влияние на пролиферацию в органотипической культуре тканей головного мозга крыс (Рыжак и др., 2001; Закуцкий и др., 2006; Милютина и др., 2007; Хавинсон и др., 2015а).

Пероральное применение пептида EDR было эффективным для коррекции психоэмоционального состояния у мужчин пожилого возраста, что проявлялось в улучшении нейрофизиологических функций ЦНС и памяти (Балашова и др., 2008).

Выявлена эффективность перорального применения пептида EDR в сочетании с другими короткими пептидами у спортсменов. В проведенном исследовании по изучению влияния пептида EDR в комплексе с короткими пептидами на резервные возможности борцов, гребцов и спортсменок, занимающихся художественной гимнастикой, было установлено, что на фоне применения пептидных биорегуляторов, в том числе EDR, происходит оптимизация функций иммунной системы, показателей сердечно-сосудистой и антиоксидантной систем, увеличение длины теломер (Ивко, Трофимова, 2008). Кроме того, важным результатом применения EDR является повышение экспрессии стресс-протекторного гена белка теплового шока HSPA1A (Хавинсон и др., 2010).

Установлено, что короткие пептиды играют такую же важную роль в передаче биологической информации, как, например, аутокринные гормоны и нейропептиды. Применение достижений фундаментальной науки в медицине привело к пониманию того, что прогресс клинической медицины во многом зависит от медицины молекулярной, то есть от исследований, проводимых на уровне генов и биологически активных молекул (Хавинсон и др., 2004, 2014; Козина и др., 2008; Федореева и др., 2011, 2013). Один высокомолекулярный белок может быть гидролизован различными путями, что приводит к возникновению нескольких коротких пептидов. Этот механизм может производить пептиды с биологическими свойствами, отличными от исходной макромолекулы (Хавинсон, Анисимов, 2003). Короткие пептиды – сигнальные молекулы, способные взаимодействовать с ДНК и гистонами, эпигенетически регулировать экспрессию генов и синтез белков, обеспечивая поддержание гомеостаза клеток, тканей и органов (Петрова, 2011; Fedoreeva et al., 2011; Russo et al., 2012; Khavinson et al., 2016). Установлено, что в диссоциированных культурах клеток коры головного мозга короткий пептид EDR снижал уровень апоптоза, оцениваемого по экспрессии белка р53 (Умнов и др., 2014). Короткие пептиды также стимулируют экспрессию серотонина в клетках коры головного мозга (Хавинсон и др., 2014).

Обнаружено нарушение морфологии дендритов, включая изменение количества шипиков, при развитии нейродегенеративных и психических заболеваний. Эти нарушения наблюдаются в головном мозге людей при болезни Альцгеймера (БА) и болезни Хантингтона (БХ) и при моделировании БА и БХ на животных (Ostrovskaya et al., 2007; Zhang et al., 2008; Popugaeva, Bezprozvanny, 2013). Изучено влияние пептида EDR на формирование шипиков в нейронах стриатума в смешанной кортико-стриатной культуре, полученной от мышей линии YAC128 (модель БХ), и в нейронах гиппокампа в культуре, полученной от мышей линии C57BL/6 и линии PS1-M146V-KI (модель БА) (Khavinson et al., 2016; Vanyushin, Khavinson, 2016; Kraskovskaya et al., 2017). Установлено, что пептид EDR оказывал нейропротекторное действие в моделях БХ и БА. При исследовании влияния пептида EDR на количество шипиков в нейронах кортико-стриатной культуры мышей линии YAC128 было установлено, что пептид в концентрации 200 нг/мл достоверно увеличивал количество шипиков на 35%, по сравнению с этим же показателем у мышей с геном мутантного хантингтина человека на 21-е сутки культивирования без добавления пептида.

Механизм действия коротких пептидов показывает возможность взаимодействия пептида EDR с ДНК в растворе (Федореева и др., 2011). При этом пептид EDR оказывает дестабилизирующий эффект на вторичную структуру макромолекулы ДНК и компактизующее влияние на объем ее молекулярного клубка. Таким образом, в случае контакта пептида EDR с молекулой ДНК в клетке возможно его влияние на функциональные и структурные свойства этой важнейшей биологической макромолекулы. Установлено, что сайт-специфическое взаимодействие пептидов с ДНК приводит к изменению характера экспрессии генов (Федореева и др., 2011; Умнов и др., 2014). Методом молекулярного моделирования были подобраны два предполагаемых сайта связывания для пептида EDR: d(CCTGCC)2 и d(CCAGC)2. С обоими сайтами пептид образует стабильные комплексы (Хавинсон и др., 2012; Khavinson et al., 2013). Дальнейшие исследования показали, что короткие пептиды могут не только сайт-специфично связываться с ДНК, но и распознавать их по статусу метилирования (Guryanov et al., 2006; Vanyushin, Khavinson, 2016). Такое специфическое связывание пептидов с ДНК, вероятно, может конкурировать со связыванием ДНК с разными ферментами, например с ДНК-метилтрансферазой. Один из наиболее вероятных механизмов активации генов пептидами – селективное связывание пептидов с промоторными сайтами генов. Таким образом, специфические пептид–ДНК взаимодействия могут эпигенетически контролировать генетические функции клетки.

Однако, чтобы ускорить процесс тестирования препаратов для лечения заболеваний нервной системы человека, в том числе нейродегенеративных заболеваний, целесообразно использовать простые модельные организмы с кратким жизненным циклом, не подпадающие под законодательные ограничения по защите позвоночных животных (Bonini, Fortini, 2003; Doronkin, Reiter, 2008; Pfleger, Reiter, 2008). В частности, насекомые могут использоваться в качестве модельного объекта изучения влияния пептидов на условно-рефлекторную деятельность вследствие того, что имеется биохимическая и физиологическая общность механизмов формирования памятного следа в нервной системе у позвоночных и беспозвоночных организмов.

Модельным объектом может служить медоносная пчела Apis mellifera L. Эти насекомые способны осуществлять высшие формы нервной деятельности: ассоциативное обучение, долговременное хранение в памяти приобретаемого в процессе пищедобывательной деятельности индивидуального опыта. При этом они используют те же рецепторные, сигнальные, трансдукционные механизмы, которые выявляются и у млекопитающих (Лопатина и др., 1997; Bitterman et al., 1983; Menzel, 2014; Asok et al., 2019). У пчелы в головном отделе располагаются парные грибовидные тела, представляющие у этих насекомых высшие отделы ЦНС, которые обеспечивают обонятельное обучение и память при пищевом подкреплении. В экспериментах на пчелах (Хавинсон и др., 2015б) исследовано образование пищевого условного рефлекса вытягивания хоботка на обонятельный раздражитель (методика PER – proboscis extension response conditioning). Был выработан условный рефлекс вытягивания хоботка при однократном сочетании запаха гвоздики с пищевым подкреплением 50%-ным раствором сахарозы. По окончании процедуры обучения исследованы: через 1 мин – кратковременная память и через 180 мин – долговременная память. За 30 мин до обучения пчелам экспериментальной группы дорзально в торакс вводили 2 мкл раствора EDR в ряду концентраций 10–11–10–4 М, а пчелам контрольной группы – 2 мкл физиологического раствора. Введение EDR в эффективной концентрации 10–7 М при исходном низком условно-рефлекторном уровне оказывало стимулирующее воздействие на сохранение в памяти выработанного условного рефлекса. Количество пчел, сохраняющих в кратковременной памяти условную реакцию, увеличивалось на 36% по сравнению с контрольной группой. На сохранение в долговременной памяти выработанного рефлекса у пчел с исходно низким условно-рефлекторным уровнем EDR не оказывал влияния. Однако при исходном высоком условно-рефлекторном уровне количество пчел, сохраняющих как в кратковременной, так и в долговременной памяти условно-рефлекторную реакцию, снижалось на 17–35%.

EDR, обладая выраженной модулирующей способностью, зависящей от исходного условно-рефлекторного фона, оказывается способным поддерживать функциональный баланс в нервной ткани высших отделов ЦНС пчел. Данные о влиянии EDR на когнитивную функцию у насекомых аналогичны данным о стимулирующем влиянии EDR на культуру ткани головного мозга млекопитающих (Рыжак и др., 2015). Таким образом, выявлен параллелизм действия EDR у двух групп организмов – влияние на пролиферативную активность клеток в культуре нервной ткани головного мозга крыс и на когнитивную деятельность медоносной пчелы.

Изучено также влияние тетрапетида AEDG на функциональные характеристики нервной ткани медоносной пчелы Apis mellifera L. (Чалисова и др., 2020). У пчел вырабатывался условный рефлекс на обонятельный раздражитель по стандартной методике. Воздействие AEDG в концентрации 10–5 М увеличивало сохранение условного рефлекса в кратковременной памяти на 20% и в долговременной памяти – на 27%, по сравнению с контролем (рис. 1).

Рис. 1.

Влияние инъекций пептида AEDG (10–5 М) на сохранение в кратковременной (КП) и долговременной (ДП) памяти выработанного пищевого обонятельного условного рефлекса у пчел. * – р < 0.01, по сравнению с контролем.

Полученные данные свидетельствуют о том, что тетрапетид AEDG влияет стимулирующим образом как на клеточную пролиферацию в подкорковых структурах головного мозга млекопитающих, так и на функцию высших отделов ЦНС, ответственных за когнитивную деятельность.

Нейропротекторное действие EDR было также исследовано у другого вида насекомых – мух Drosophila melanogaster. После завершения программы “геном человека” было выяснено, что 75% генов человека и дрозофилы обладают высокой степенью гомологии.

Для создания экспериментальной модели нейродегенеративных заболеваний важно наличие следующих диагностических признаков: 1) дефекты памяти и обучения, проявляющиеся в виде прогрессивной потери памяти; 2) локомоторные дефекты, которые выражены при болезни Паркинсона (БП) и БХ; 3) амилоидоподобные включения в нейронах, локализованные в цитоплазме при БА и БП и в ядре – при БХ. При экспериментах на дрозофилах имеется возможность уже на 5 сутки провести анализ локомоторных нарушений.

В качестве модели БП использовались дрозофилы с деменцией и тельцами Леви – мутант Agnst3 локуса agnostic, несущего дефектный ген для LIM-киназы 1 (LIMK-1) – ключевого фермента ремоделирования актина. Для регистрации локомоторного поведения личинок дрозофил использовали автоматизированную установку, позволяющую одновременно регистрировать показатели у 20 мух. Для исследования активности движения осуществляли запись видеосигнала с камеры. В пищевую изюмно-дрожжевую среду экспериментальной группы мух добавляли EDR в наномолярных концентрациях. При действии EDR в 2 раза возрастала общая локомоторная активность личинок мух. При этом способность личинок ориентироваться в пространстве также повышалась в 1.9 раза. Таким образом, EDR модулирует локомоторную активность у дрозофилы Agnst3 с выраженными симптомами БП. По результатам RealTime PCR-анализа выявлено, что у Agnst3 изначально повышенные уровни экспрессии limk1 и rok под действием EDR снижаются, причем уровень limk1 почти возвращается к показателю нормы дикого типа. Полученные данные позволяют предположить, что пептид EDR оказывает свое влияние на локомоторное поведение и память через уменьшение уровня экспрессии limk1, а также восстанавливает краткосрочную память у мутанта Agnst3 (Savvateeva-Popova et al., 2017; Khavinson et al., 2017b).

Необходимо отметить, что в последние десятилетия появился ряд работ о чувствительности человека и животных к ультрамалым концентрациям биологически активных веществ. Эффективность сверхмалых доз биологически активных веществ продемонстрирована в опытах на всевозможных биологических моделях (Бурлакова, 1999; Чалисова и др., 2002). Эти эффекты проявляются при концентрациях в диапазоне от 10–11 до 10–17 моль/л, то есть они на 4–6 порядков ниже минимальных наблюдаемых констант диссоциации лиганд-рецепторных комплексов, лежащих в диапазоне 10–11–10–10 М (Чалисова и др., 2004). Все эти данные свидетельствуют о том, что для развития эффекта важно не абсолютное количество действующего биологически активного вещества, а необходим сдвиг концентрации, способствующий развитию эффекта. При усложнении степени организации ткани требуются все меньшие концентрации биологически активных веществ. Поскольку активирующее память действие пептидов EDR и AEDG у пчел выявлено в диапазоне 10–10–10–7 М, а в коре головного мозга крыс – в диапазоне меньших концентраций 10–12–10–11 М, можно также полагать, что по мере усложнения строения и функций нервной ткани, она становится все более чувствительна к малым концентрациям эффективно действующих EDR и AEDG. Таким образом, выявлено, что короткие пептиды эффективны в наномолярных дозах при действии на нервную ткань как млекопитающих, так и насекомых. Создается база для разработки на их основе лекарственных ноотропных препаратов, причем с отсутствием побочных эффектов за счет эффективного действия ультрамалых концентраций.

Выявление стимулирующего влияния пептидов EDR и AEDG на функцию высших отделов ЦНС пчел создает базу тестирования препаратов для лечения патологических процессов в ЦНС. Проведенные исследования влияния пептидов на кратковременную и долговременную память у пчел и мух подчеркивают модулирующие свойства этих коротких пептидов. Так как EDR повышает локомоторную активность у дрозофилы Agnst3 с выраженными симптомами болезни Паркинсона, это позволяет тестировать препараты для лечения данной патологии, используя модель на мухах.

Параллелизм действия пептидов у двух видов организмов, а также данные об эпигенетических возможностях действия пептидов в ультрамалых концентрациях свидетельствуют о том, что существует единый механизм пептидергической регуляции экспрессии генов и синтеза белков в живой природе (Хавинсон, 2020). Сходство действия пептида EDR на нервную систему млекопитающих и насекомых позволяет предположить существование общего, возможно, древнейшего в эволюции механизма пептидной регуляции жизнедеятельности организмов.

Список литературы

  1. Балашова С.Н., Жернаков Г.Л., Дудков А.В. Применение пептидных биорегуляторов у лиц пожилого возраста с нарушениями психоэмоционального состояния // Успехи геронтол. 2008. Т. 21. № 3. С. 448–452.

  2. Бурлакова Е.Е. Особенности действия сверхмалых доз биологически активных веществ и физических факторов низкой интенсивности // Рос. хим. журн. 1999. Т. XLIII. № 5. С. 3–11.

  3. Журкович И.К., Ковров Н.Г., Рыжак Г.А. и др. Идентификация коротких пептидов в составе полипептидных комплексов, выделенных из органов животных // Успехи соврем. биол. 2020. Т. 140. № 2. С. 140–148.

  4. Закуцкий А.Н., Чалисова Н.И., Рыжак Г.А. и др. Тканеспецифическое влияние биорегуляторных пептидов в органотипической культуре тканей молодых и старых крыс // Успехи геронтол. 2006. № 19. С. 93–96.

  5. Ивко О.М., Трофимова С.В. Спорт и долголетие. СПб.: Falcon Crest, 2008. 113 с.

  6. Козина Л.С., Арутюнян А.В., Стволинский С.Л. и др. Оценка биологической активности регуляторных пептидов в модельных экспериментах in vitro // Успехи геронтол. 2008. Т. 219. № 1. С. 68–73.

  7. Лопатина Н.Г., Рыжова И.В., Чеснокова Е.Г. и др. Рецепторы L-глутамата в центральной нервной системе медоносной пчелы Apis mellifera и их роль в процессе формирования условного рефлекса и следов памяти // Журн. эвол. биохим. физиол. 1997. Т. 33. № 6. С. 506–512.

  8. Милютина Ю.П., Козина Л.С., Арутюнян А.А. и др. Влияние пептидных препаратов эпифиза на пролиферативные процессы в органотипической культуре преоптической области гипоталамуса // Успехи геронтол. 2007. Т. 20. № 4. С. 61–63.

  9. Петрова Е.С. Виментин и глиальный фибриллярный кислый белок в клетках эктопических нейротрансплантатов неокортекса крыс // Морфология. 2011. Т. 139. № 2. С. 22–26.

  10. Рыжак Г.А., Малинин В.В., Платонова Т.Н. Кортексин и регуляция функций головного мозга. СПб.: Фолиант, 2001. 158 с.

  11. Рыжак А.П., Чалисова Н.И., Линькова Н.С. и др. Пептидная регуляция клеточного обновления в культурах тканей почек молодых и старых животных // Клет. технол. биол. мед. 2015. № 1. С. 10–14.

  12. Умнов Р.С., Линькова Н.С., Хавинсон В.Х. Пептиды стимулируют экспрессию сигнальных молекул в культурах клеток нейронов животных разного возраста // Клет. технол. биол. мед. 2014. № 2. С. 123–126.

  13. Федореева Л.И., Киреев И.И., Хавинсон В.Х. и др. Проникновение коротких флуоресцентно-меченых пептидов в ядро клеток HeLa и специфическое взаимодействие пептидов с дезоксирибонуклеотидами и ДНК in vitro // Биохимия. 2011. Т. 76. № 11. С. 1505–1516.

  14. Федореева Л.И., Смирнова Т.А., Коломийцева Г.Я. и др. Взаимодействие коротких пептидов с FITC-мечеными гистонами пшеницы и их комплексами с дезоксирибоолигонуклеатидами // Биохимия. 2013. Т. 78. № 2. С. 230–242.

  15. Хавинсон В.Х. Пептиды. Геном. Старение. М.: РАН, 2020. 58 с.

  16. Хавинсон В.X., Кветной И.М. Пептидные биорегуляторы ингибируют апоптоз // Бюл. эксп. биол. мед. 2000. Т. 130. № 12. С. 657–659.

  17. Хавинсон В.Х., Анисимов В.Н. Пептидные биорегуляторы и старение. СПб.: Наука, 2003. 232 с.

  18. Хавинсон В.Х., Лежава Т.А., Малинин В.В. Влияние коротких пептидов на хроматин в лимфоцитах лиц старческого возраста // Бюл. эксп. биол. мед. 2004. Т. 137. № 1. С. 89–93.

  19. Хавинсон В.Х., Винер-Усманова И.А., Трофимова С.В. и др. Методика повышения резервных возможностей организма спортсменок высокой квалификации с помощью пептидных биорегуляторов. СПб.: СПбИБГ, 2010. 22 с.

  20. Хавинсон В.Х., Соловьев А.Ю., Жилинский Д.В. и др. Эпигенетические аспекты пептидной регуляции старения // Успехи геронтол. 2012. Т. 25. № 1. С. 11–16.

  21. Хавинсон В.Х., Линькова Н.С., Тарновская С.И. и др. Короткие пептиды стимулируют экспрессию серотонина в клетках коры головного мозга // Бюл. эксп. биол. мед. 2014. Т. 157. № 1. С. 89–93.

  22. Хавинсон В.Х., Лопатина Н.Г., Чалисова Н.И. и др. Влияние трипептида пинеалона на формирование условно-рефлекторной деятельности у медоносной пчелы // Фунд. иссл. 2015а. Т. 2. № 2. С. 491–496.

  23. Хавинсон В.Х., Чалисова Н.И., Линькова Н.С. и др. Зависимость тканеспецифического действия пептидов от их количественного аминокислотного состава // Фунд. иссл. 2015б. № 2. С. 497–503.

  24. Чалисова Н.И., Пеннияйнен В.А., Ноздрачев А.Д. Стимулирующее действие малых доз ингибирующих веществ в органотипической культуре нервной и лимфоидной ткани // ДАН. 2002. Т. 383. № 2. С. 282–285.

  25. Чалисова Н.И., Пеннияйнен В.А., Комашня А.В. и др. Действие малых доз БАВ на нервную и лимфоидную ткани, исследование методом органотипической культуры // Клин. патофизиол. 2004. № 1. С. 25–29.

  26. Чалисова Н.И., Лопатина Н.Г., Камышев Н.Г. и др. Стимулирующее влияние тетрапептида AEDG на морфологические и функциональные характеристики нервной ткани // Мол. мед. 2020. Т. 18. № 4. С. 47–54.

  27. Чернова И.А., Жилинский Д.В., Чалисова Н.И. и др. Выделение пептидов из ткани головного мозга // Хим.-фарм. журнал. 2017. Т. 51. № 6. С. 8–12.

  28. Asok A., Leroy F., Rayman J.B. et al. Molecular mechanisms of the memory trace // Tr. Neurosci. 2019. V. 42. № 1. P. 14–22.

  29. Bitterman M.E., Menzel R., Fietz A. et al. Classical conditioning of proboscis extension in honeybees (Apis mellifera) // J. Comp. Psychol. 1983. V. 97. № 2. P. 107–119.

  30. Bonini N.M., Fortini M.E. Human neurodegenerative disease modeling using Drosophila // Ann. Rev. Neurosci. 2003. V. 26. P. 627–656.

  31. Doronkin S., Reiter L.T. Drosophila orthologues to human disease genes: an update on progress // Prog. Nucl. Acid. Res. Mol. Biol. 2008. V. 82. P. 1–32.

  32. Fedoreeva L.I., Kireev I.I., Khavinson V.Kh. et al. Penetration of short fluorescence-labeled peptides into the nucleus in HeLa cells and in vitro specific interaction of the peptides with deoxyribooligonucleotides and DNA // Biochemistry. 2011. V. 76. № 11. P. 1210–1219.

  33. Guryanov S.A., Kirilina E.A., Khaidukov S.V. et al. Fluorescently labeled differentiating myelopeptide-4: specific binding to and penetration into target cells // Russ. J. Bioorganic. Chem. 2006. V. 32. P. 517–520.

  34. Khavinson V.Kh., Soloviev A.Yu., Tarnovskaya S.I. et al. Mechanism of biological activity of short peptides: cell penetration and epigenetic regulation of gene expression // Biol. Bull. Rev. 2013. V. 3. № 6. P. 451–455.

  35. Khavinson V.Kh., Lin’kova N.S., Tarnovskaya S.I. Short peptides regulate gene expression // Bull. Exp. Biol. Med. 2016. V. 162. № 2. P. 288–292.

  36. Khavinson V.K., Kopylov A.T., Vaskovsky B.V. et al. Identification of peptide AEDG in the polypeptide complex of the pineal gland // Bull. Exp. Biol. Med. 2017a. V. 164. № 1. P. 41–43.

  37. Khavinson V.Kh., Linkova N.S., Kukanova E.O. et al. Neuroprotective effect of EDR peptide in mouse model of Huntington disease // J. Neurol. Neurosci. 2017b. V. 8. № 1. P. 1–11.

  38. Kraskovskaya N.A., Kukanova E.O., Linkova N.S. et al. Tripeptides restore the number of neuronal spines under conditions of in vitro modeled Alzheimer’s disease // Bull. Exp. Biol. Med. 2017. V. 163. № 4. P. 550–553.

  39. Menzel R. The insect mushroom body, an experience-dependent recording device // J. Physiol. Apis. 2014. V. 108. № 2–3. P. 84–95.

  40. Ostrovskaya R.U., Gruden M.A., Bobkova N.A. The noo-tropic and neuroprotective proline-containing dipeptide noopept restores spatial memory and increases immunoreactivity to amyloid in an Alzheimer’s disease model // J. Psychopharmacol. 2007. V. 6. P. 611–619.

  41. Pfleger C.M., Reiter L.T. Recent efforts to model human diseases in vivo in Drosophila // Fly (Austin). 2008. V. 2. № 3. P. 129–132.

  42. Popugaeva E., Bezprozvanny I. Role of endoplasmic reticulum Ca2+ signaling in the pathogenesis of Alzheimer disease // Front. Mol. Neurosci. 2013. V. 6. P. 1–7.

  43. Russo L.C., Asega A.F., Castro L.M. et al. Natural intracellular peptides can modulate the interactions of mouse brain proteins and thimet oligopeptidase with 14-3-3ε and calmodulin // Proteomics. 2012. V. 12. № 17. P. 2641–2655.

  44. Savvateeva-Popova E.V., Zhuravlev A.V., Brázda V. et al. Drosophila model for the analysis of genesis of LIM-kinase 1-dependent Williams–Beuren syndrome cognitive phenotypes: INDELs, transposable elements of the Tc1/mariner superfamily and microRNAs // Front. Genet. 2017. V. 8. P. 1–13.

  45. Vanyushin B.F., Khavinson V.Kh. Short biologically active peptides as epigenetic modulators of gene activity // Epigenetics – a different way of looking at genetics / Eds W. Doerfler, P. Böhm. Switzerland: Springer Internat. Publishing, 2016. P. 69–90.

  46. Zhang H., Li Q., Graham R.K. et al. Full length mutant huntingtin is required for altered Ca2+ signaling and apoptosis of striatal neurons in the YAC mouse model of Huntington’s disease // Neurobiol. Dis. 2008. V. 31. P. 80–88.

Дополнительные материалы отсутствуют.