Вестник Военного инновационного технополиса «ЭРА», 2022, T. 3, № 1, стр. 8-14

РАЗРАБОТКА И ВАЛИДАЦИЯ МЕТОДИКИ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ДОЦЕТАКСЕЛА В СОСТАВЕ ПОЛИМЕРНОЙ КОМПОЗИЦИИ МЕТОДОМ ВЫСОКОЭФФЕКТИВНОЙ ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

С. В. Алешин 1*, В. В. Заварзина 1, С. Л. Кузнецов 1, И. А. Тубашева 1, Н. В. Гукасова 1, Ю. И. Полтавец 1

1 Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”
Москва, Россия

* E-mail: neos.1991@gmail.com

Поступила в редакцию 15.12.2021
После доработки 17.01.2022
Принята к публикации 24.01.2022

Полный текст (PDF)

Аннотация

Представлены результаты разработки и валидации методики количественного определения доцетаксела в полимерной композиции для молекулярно-прицельной терапии на основе сополимера молочной и гликолевой кислот методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с УФ-детектированием. Подтвержденный аналитический диапазон методики составил от 4.25 до 425.06 мкг/мл доцетаксела в растворе.

ВВЕДЕНИЕ

В ряду лекарственных веществ (ЛВ) противоопухолевого действия важное место занимает доцетаксел (DTX) – полусинтетический алкалоид из группы таксанов (рис. 1) [1]. Оригинальным препаратом на основе DTX является Таксотер (Sanofi-Aventis) [2].

Рис. 1.

Структурная формула доцетаксела.

Препараты доцетаксела применяются при монотерапии различных видов злокачественных новообразований – рака молочной железы, яичников, легких, простаты и др. В некоторых схемах лечения используются комбинации DTX с другими противоопухолевыми ЛВ (фторурацил, цисплатин, гемцитабин и пр.). Лечение DTX может вызывать различные побочные токсические эффекты: анемию, нейтропению, лейкопению, тошноту, рвоту, стоматит и пр. [35].

Для повышения эффективности и уменьшения токсического действия препаратов DTX разрабатываются различные системы доставки, в том числе адресного (таргетного) действия [6]. Избирательность доставки ЛВ в подобных системах увеличивается за счет наличия в них векторных молекул (векторов), обладающих специфическим сродством к поверхностным рецепторам опухолевых клеток. Одним из таких векторов является фолиевая кислота, а также ее производные [7, 8].

В ряду систем доставки ЛВ заметную роль играют полимерные частицы на основе полилактидгликолидов – сополимеров молочной и гликолевой кислот (PLGA) [9, 10]. Они характеризуются биосовместимостью, биоразлагаемостью, отсутствием токсичности, обеспечивают пролонгированное действие ЛВ [1113].

Ранее была разработана полимерная композиция (комплекс) для молекулярно-прицельной терапии, содержащая DTX, на основе частиц P-LGA, модифицированных производным фолиевой кислоты (ПКМПТ-Д) [14, 15]. Показаны высокая цитотоксическая активность данной полимерной композиции в отношении опухолевых клеток в исследованиях in vitro [16] и хорошая переносимость в токсикологических исследованиях на животных [17] по сравнению с DTX (субстанцией). В [18] изучались устойчивость композиции к гамма-облучению и стабильность в процессе хранения.

Цель настоящего исследования – разработка и валидация методики количественного определения доцетаксела с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии с ультрафиолетовым детектированием (ВЭЖХ-УФ) в полимерной композиции на основе частиц PLGA.

МЕТОДЫ

Объектом исследования являлись образцы экспериментальной полимерной композиции DTX, представляющей собой лиофилизат для приготовления суспензии, состав которой представлен в табл. 1. В работе также использовались “холостые” образцы, содержащие те же вспомогательные компоненты полимерной композиции, но без действующего вещества DTX.

Таблица 1.

Состав полимерной композиции доцетаксела

Наименование компонента Содержание,
мас. %
Доцетаксел 2.4–2.8
Полимер PDLG 5004 47.9–57.8
Поливиниловый спирт 20.0–26.0
Производное фолиевой кислоты* 0.04–0.06
Натрия хлорид 18.0–25.0

* Смесь α- и γ-додециламидов фолиевой кислоты.

Хроматографическое разделение проводили при помощи системы Agilent 1200 Series, оснащенной диодно-матричным детектором G1315C, бинарным двуканальным насосом G1312B, аутосемплером G1367C, дегазатором, термостатом колонок (Agilent Technologies, США). Обработку данных выполняли, используя программное обеспечение Agilent ChemStation, ver. B 04.03 SP 1 (Agilent Technologies, США). Применяли хроматографические колонки с обращенной фазой: Kromasil® 100-5-C18 4.6 × 250 мм (Nouryon, Швеция) и Agilent Eclipse XDB-C18 5 мкм 4.6 × 250 мм (Agilent Technologies, США). Образцы взвешивали на весах GR-202, дискретность – 0.01 мг, максимальная нагрузка – 210 г (A&D, Япония). Отмеривание жидкостей (растворителей, растворов) проводили пипеточным одноканальным дозатором переменного объема 100–1000 мкл Ленпипет Техно, Thermo Scientific (Россия). Вспомогательное оборудование: шейкер вибрационного типа Vortex (ELMI, Латвия); центрифуга Eppendorf 5424 R (Eppendorf, ФРГ); лабораторная система водоподготовки Milli-Q Integral S. Kit (Millipore, Франция); колбы мерные 1 класса точности вместимостью 10 и 200 мл, соответствующие ГОСТ 1770-74 (Shott Duran, ФРГ).

Стандартный образец: доцетаксел безводный (Docetaxel Anhydrous), чистота 99.72% (Xi’an Terra Biochem Co. Ltd., Китай). Растворители: ацетонитрил, класс HPLC-gradient (Panreac Quimica S.L.U, Испания); диметилсульфоксид (ДМСО), х.ч. (Компонент-реактив, РФ); метанол, класс HPLC (Macron, Польша); кислота уксусная ледяная, х.ч. (Компонент-Реактив, РФ); вода очищенная (Milli-Q).

Метод ВЭЖХ

Приготовление растворителя. В мерную колбу объемом 200 мл помещали 100 мл воды Milli-Q, прибавляли 0.1 мл кислоты уксусной ледяной, доводили объем до метки ацетонитрилом, тщательно перемешивали.

Приготовление подвижной фазы. В качестве компонента A использовали воду Milli-Q, компонента Б – ацетонитрил. Компоненты А и Б подвижной фазы дегазировали и фильтровали через мембранный фильтр с диаметром пор 0.45 мкм.

Приготовление стандартного раствора DTX. Около 20 мг стандартного образца DTX (точная навеска) помещали в мерную колбу объемом 10 мл, растворяли в 1 мл метанола, доводили до метки метанолом, тщательно перемешивали. Полученный раствор в количестве 1 мл помещали в мерную колбу объемом 10 мл, прибавляли 1 мл ДМСО, доводили объем до метки растворителем (приготовление растворителя дано выше), тщательно перемешивали.

Приготовление испытуемого раствора. Около 20 мг испытуемого образца (точная навеска) помещали в мерную колбу объемом 10 мл, растворяли в 1 мл ДМСО, затем доводили до метки растворителем, тщательно перемешивали. Полученный раствор в количестве 2 мл центрифугировали в течение 10 мин при 14 000 об./мин, после этого 1.5 мл осветленного раствора переносили в виалу для хроматографирования.

Приготовление бланк-раствора. В мерную колбу объемом 10 мл загружали 1 мл ДМСО, доводили объем до метки растворителем, тщательно перемешивали.

Выполнялись следующие хроматографические условия:

– колонка Kromasil® 100-5-C18, 100 А, 5 мкм, 4.6 × 250 мм;

– температура колонки 35 ± 1°C;

– детекторУФ-спектрофотометрический, длина волны – 232 нм;

– скорость потока 1.2 мл/мин;

– подвижная фаза: компонент А – вода MilliQ, компонент Б – ацетонитрил;

– режим элюирования градиентный (схема градиентного элюирования представлена в табл. 2);

Таблица 2.

Схема градиентного элюирования

Время, мин Содержание компонента А в подвижной фазе, об. %
0 72
9 72
39 28
50 72

– объем пробы 25 мкл;

– время удерживания DTX ~ 28 мин, ДМСО ~ ~ 3 мин;

– время хроматографирования 50 мин.

Хроматографическая система считается пригодной, если выполняются следующие условия: относительное стандартное отклонение (RSD, %) площади пика DTX, рассчитанное по пяти хроматограммам стандартного раствора, не должно превышать 2%; эффективность колонки (N), рассчитанная по пику DTX, должна быть не менее 10 000 теоретических тарелок, фактор симметрии пика DTX должен составлять не менее 0.7.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

При разработке методики количественного определения DTX в составе полимерной композиции за основу были взяты условия хроматографирования методом ВЭЖХ-УФ из Европейской Фармакопеи (Docetaxel Trihydrate, monograph 2449) [19]. Использованный метод пробоподготовки с применением ДМСО обеспечил полное растворение и возможность последующего количественного переноса пробы в процессе получения аналитической концентрации DTX в растворе исследуемого образца, а низкое значение рН анализируемого раствора положительно сказывалось на эффективности разделения и показателе симметрии пика DTX на хроматограмме.

Валидация осуществлялась в соответствии с требованиями ОФС.1.1.0012.15 “Валидация аналитических методик” Государственной фармакопеи Российской Федерации XIV издания (ГФ XIV) [20]. Полученные результаты показали пригодность разработанной методики для решения поставленных задач.

Специфичность аналитической методики характеризует ее способность однозначно оценивать определяемое вещество в присутствии сопутствующих компонентов [20]. Для установления специфичности анализировали стандартный образец DTX, образцы полимерной композиции, содержащие DTX, “холостые” образцы полимерной композиции, не содержащие действующего вещества. Анализировали также образцы полимерной композиции DTX, подвергшиеся гамма-облучению, полученные в [18] при проведении исследований на стабильность, с целью получения характеристик хроматографического разделения DTX и примесей (продуктов распада). На хроматограммах стандартного и испытуемого растворов время удерживания DTX совпадало и составляло ~27.5 мин (рис. 2, 3). На хроматограммах растворов “холостых” образцов пики со временем удерживания DTX отсутствовали (рис. 4). На хроматограммах растворов испытуемых образцов, содержащих пики DTX, а также примеси, наблюдалось их полное разделение (рис. 5).

Рис. 2.

Хроматограмма раствора стандартного образца доцетаксела.

Рис. 3.

Хроматограмма раствора полимерной композиции, содержащей доцетаксел.

Рис. 4.

Хроматограмма раствора “холостого” образца полимерной композиции (содержание доцетаксела 0%).

Рис. 5.

Хроматограмма раствора полимерной композиции доцетаксела, содержащей примесь (продукт разложения).

Линейность методики характеризуется наличием линейной зависимости величины площади пика на хроматограмме от концентрации определяемого вещества в анализируемом образце в пределах аналитической области. Аналитическая область (аналитический диапазон) методики, для которой была подтверждена линейность, составила от 4.25 до 425.06 мкг/мл DTX в растворе, что соответствует его содержанию в исследуемом образце от ∼0.2 до 20 мас. % (табл. 3). Полученный график линейной зависимости описывается уравнением y = 16.564 х + 13.843, параметр r2 равен 0.9999 (рис. 6). Отклонение рассчитанной концентрации калибровочного раствора DTX от фактического значения укладывалось в норму (модуль значений отклонения для пяти точек не превышал 2%). Ожидаемое содержание DTX в образцах полимерной композиции находилось в диапазоне от 2 до 6%, в испытуемых образцах оно составляло от 2.4 до 2.8% (табл. 1). Таким образом, найденный аналитический диапазон соответствует требованиям, предъявляемым к разработанной методике.

Таблица 3.

Оценка линейности методики определения доцетаксела

Концентрация стандарт- ного раствора, мкг/мл Концентрация стандартного раствора (рассчитанная), мкг/мл Отклонение, %
425.06 425.93 0.20
212.53 209.86 –1.27
106.27 107.89 1.50
42.51 43.01 1.16
21.25 21.16 –0.43
4.25 3.99 –6.52
Рис. 6.

Калибровочный график зависимости величины площади хроматографического пика доцетаксела от концентрации в растворе.

Правильность методики характеризуется отклонением среднего результата определений, выполненных с ее использованием, от значения, принимаемого за истинное [20]. Для оценки правильности рассчитывалась относительная ошибка (Е, %) отдельного определения для трех различных концентраций стандартного раствора (низкой, средней, высокой), по пять анализов для каждой концентрации. Полученные значения модуля величины E не превышали 2%, что соответствует норме (табл. 4).

Таблица 4.

Оценка правильности и прецизионности методики определения доцетаксела

Содержание доцетаксела в образце SD* (n = 5) RSD**
(n = 5), %
E***, %
введено, % найдено, % найдено среднее значение (n = 5), %
10.63 10.51 10.460 0.0458 0.438 –1.63
10.43
10.51
10.42
10.43
2.13 2.16 2.148 0.0130 0.607 0.93
2.15
2.14
2.16
2.13
1.06 1.07 1.058 0.00837 0.791 –0.19
1.05
1.06
1.05
1.06

* SD – стандартное отклонение среднего результата.

** RSD – относительное стандартное отклонение среднего результата (коэффициент вариации).

*** E – относительная ошибка отдельного определения.

Прецизионность методики оценивали как повторяемость (сходимость). Для полученных значений трех различных концентраций стандартного раствора (по пять анализов для каждой концентрации) были рассчитаны величины RSD. Полученные значения составили не более 2%, что находится в пределах нормы. Результаты определения правильности и прецизионности методики представлены в табл. 4.

Предел количественного определения (ПКО) методики определяли на основании данных линейности и прецизионности. За ПКО методики принимали минимальную концентрацию DTX в растворе, для которой возможно определение DTX со значениями относительного стандартного отклонения не более 2% в диапазоне линейной зависимости. ПКО методики составил 4.25 мкг/мл (соответствует ∼0.2% действующего вещества в испытуемом образце). Хроматограмма стандартного раствора DTX в концентрации, соответствующей ПКО, приведена на рис. 7.

Рис. 7.

Хроматограмма стандартного раствора доцетаксела в концентрации, соответствующей пределу количественного определения.

Для оценки устойчивости (робастности) методики (степени ее чувствительности к влиянию небольших изменений в параметрах, способных возникнуть при практическом использовании) провели исследование стандартного раствора DTX с использованием двух обращенно-фазовых хроматографических колонок разных производителей (Kromasil® 100-5-C18 4.6 × 250 мм и Agilent Eclipse XDB-C18 5 мкм 4.6 × 250 мм). В результате исследования не было выявлено значительной разницы в величинах площадей пиков DTX (RSD суммарной выборки из равного количества измерений с использованием каждой колонки составило 0.72%), а также в критериях приемлемости хроматографической системы.

Особый интерес представляют результаты анализа полимерных композиций DTX, содержащих продукты его разложения. Основными посторонними примесями, образующимися в процессе воздействия гамма-радиации на композицию DTX, являются его изомеры, обладающие иной хроматографической подвижностью. Также было отмечено появление набора примесей, которых не было в исходной субстанции и в продукте (ПКМПТ-Д) [18]. Согласно полученным данным DTX в составе изучаемой полимерной композиции достаточно стабилен и не подвержен деструкции в процессе пробоподготовки.

Достигнутые значения параметров валидации хроматографической методики в полной мере удовлетворяли требованиям нормативных документов [20, 21]. Таким образом, подтверждены правильность подхода к выбору и разработке аналитической методики, а также ее эффективность.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Проведена разработка методики определения доцетаксела c помощью метода ВЭЖХ-УФ в композиции на основе сополимера молочной и гликолевой кислот, содержащей производное фолиевой кислоты. Хроматографическая методика была валидирована в соответствии с требованиями ГФ XIV (ОФС.1.1.0012.15). Подтвержденный аналитический диапазон методики составил от 4.25 до 425.06 мкг/мл DTX в растворе. По всем валидационным характеристикам методика соответствует критериям приемлемости и пригодна для контроля качества полученных образцов полимерной композиции DTX по показателю “количественное определение”.

Список литературы

  1. Cortes J.E., Pazdur R. // J. Clin. Oncol. 1995. V. 13. № 10. P. 2643. https://doi.org/10.1200/JCO.1995.13.10.2643

  2. Product Monograph Taxotere® (docetaxel for injection). Sanofi-Aventis Canada Inc. Laval (Québec), 2017. 62 p.

  3. Большой справочник лекарственных средств / Под ред. Зиганшиной Л.Е. и др. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011. C. 914.

  4. Montero A., Fossella F., Hortobagyi G., Valero V. // Lancet Oncol. 2005. V. 6. № 4. P. 229. https://doi.org/10.1016/S1470-2045(05)70094-2

  5. Elm'hadi C., Tanz R., Khmamouche M.R. et al. // SpringerPlus. 2016. V. 5. № 1. P. 732. https://doi.org/10.1186/s40064-016-2351-x

  6. Tan Q., Xiuju Liu X., Xinyu Fu X. et al. // Expert Opin. Drug Deliv. 2012. V. 9. № 8. P. 975. https://doi.org/10.1517/17425247.2012.696606

  7. Low P.S., Kularatne S.A. // Curr. Opin. Chem. Biol. 2009. V. 13. № 3. P. 256. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2009.03.022

  8. Elnakat H., Ratnam M. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2004. V. 56. № 8. P. 1067. https://doi.org/10.1016/j.addr.2004.01.001

  9. Esmaeili F., Ghahremani M.H., Ostad S.N. et al. // J. Drug Target. 2008. V. 16. № 5. P. 415. https://doi.org/10.1080/10611860802088630

  10. Murugesan S., Mishra P., Jain N.K. // Curr. Nanosci. 2008. V. 4. № 4. P. 402. https://doi.org/10.2174/157341308786306152

  11. Makadia H.K., Siegel S.J. // Polymers (Basel). 2011. V. 3. № 3. P. 1377. https://doi.org/10.3390/polym3031377

  12. Mirakabad F.S.T., Nejati-Koshki K., Akbarzadeh A. et al. // Asian Pac. J. Cancer Prev. 2014. V. 15. № 2. P. 517. https://doi.org/10.7314/apjcp.2014.15.2.517

  13. Kapoor D.N., Bhatia A., Kaur R. et al. // Ther. Deliv. 2015. V. 6. № 1. P. 41. https://doi.org/10.4155/tde.14.91

  14. Полтавец Ю.И., Воронцов Е.А., Заварзина В.В. и др. // Пат. РФ № 2675810. 19.12.2017.

  15. Poltavets Y.I., Zavarzina V.V., Kuznetsov S.L. et al. // J. Reports Pharm. Sci. 2019. V. 8. № 2. P. 253. https://doi.org/10.4103/jrptps.JRPTPS_64_19

  16. Poltavets Y.I., Zhirnik A.S., Zavarzina V.V. et al. // Cancer Nanotechnology. 2019. V. 10. P. 2. https://doi.org/10.1186/s12645-019-0048-x

  17. Крашенинникова А.А., Заварзина В.В., Панова Д.С. и др. // Российский биотерапевтический журнал. 2020. Т. 19. № 2. С. 55. https://doi.org/10.17650/1726-9784-2019-19-2-55-64

  18. Полтавец Ю.И., Алешин С.В., Заварзина В.В. и др. // Разработка и регистрация лекарственных средств. 2020. Т. 9. № 1. С. 66. https://doi.org/10.33380/2305-2066-2020-9-1-66-74

  19. 07/2012:2449 Docetaxel Trihydrate // European Pharmacopoeia. The 8th Edition. 2013. V. 2. P. 2092.

  20. ОФС.1.1.0012.15 “Валидация аналитических методик” // Государственная Фармакопея Российской Федерации XIV издания. Т. 1. М. 2018. С. 276.

  21. ICH Haromnised Tripartite Guideline. Validation of Analytical Procedures: Text and Methodology Q2(R1). ICH, 2005. 13 p.

Дополнительные материалы отсутствуют.