Биоорганическая химия, 2023, T. 49, № 5, стр. 543-547
Видовая идентификация коронавируса SARS-CoV-2 по консервативному участку Е-гена
С. А. Лапа 1, *, А. А. Шингарева 1, Е. Б. Файзулоев 2, Ю. И. Аммур 2, В. Е. Шершов 1, А. В. Чудинов 1
1 Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН
119991 Москва, ул. Вавилова, 32, Россия
2 НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова
115088 Москва, ул. 1-я Дубровская, 15, Россия
* E-mail: lapa@biochip.ru
Поступила в редакцию 01.11.2022
После доработки 13.12.2022
Принята к публикации 16.12.2022
- EDN: ODHDFF
- DOI: 10.31857/S0132342323040358
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Аннотация
Появление мутаций в генах, кодирующих поверхностные белки коронавируса нового типа SARS-CoV-2, при его циркуляции в популяции хозяина затрудняет применение моноклональных антител для видовой идентификации данного вируса. В таких случаях выбор консервативных генетических мишеней позволяет осуществлять идентификацию молекулярно-биологическими методами. В настоящей работе проведено тестирование разработанных ранее праймеров, специфичных к фрагменту Е-гена, для выявления коронавируса нового типа на шести изолятах, принадлежащих различным генетическим вариантам SARS-CoV-2 (исходный уханьский геновариант, дельта и омикрон). Выбор консервативного участка Е-гена (E gene, кодирующий малый трансмембранный белок Е) в качестве мишени для обратной транскрипции с последующей амплификацией (ОТ-ПЦР) позволил детектировать коронавирус SARS-CoV-2 вне зависимости от его генетических вариантов, характеризующихся антигенной разнородностью по N- и S-белкам. Показана возможность видового определения различных вариантов возбудителя COVID-19, циркулирующих в России, как в общем реакционном объеме (в пробирке), так и на биологических микрочипах (гелевых и щеточных).
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Список литературы
Randhawa G.S., Soltysiak M.P.M., El Roz H., de Souza C.P.E., Hill K.A., Kari L. // PLoS One. 2020. V. 15. P. e0232391. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0232391
Gorbalenya A.E., Baker S.C., Baric R.S., de Groot R.J., Drosten C., Gulyaeva A.A., Haagmans B.L., Lauber C., Leontovich A.M., Neuman B.W., Penzar D., Perlman S., Poon L.L.M., Samborskiy D.V., Sidorov I.A., Sola I., Ziebuhr J. // Nat. Microbiol. 2020. V. 5. P. 536–544. https://doi.org/10.1038/s41564-020-0695-z
Лапа С.А., Мифтахов Р.А., Клочихина Е.С., Аммур Ю.И., Благодатских С.А., Шершов В.Е., Заседателев А.С., Чудинов А.В. // Мол. биол. 2021. Т. 55. С. 944–955. [Lapa S.A., Miftakhov R.A., Klochikhina E.S., Ammur Y.I., Blagodatskikh S.A., Shershov V.E., Zasedatelev A.S., Chudinov A.V. // Mol. Biol. 2021. V. 55. P. 828–838.] https://doi.org/10.1134/S0026893321040063
Lopez L.A., Riffle A.J., Pike S.L., Gardner D., Hogue B.G. // J. Virol. 2008. V. 82. P. 3000–3010. https://doi.org/10.1128/JVI.01914-07
Грачёва А.В., Корчевая Е.Р., Кудряшова А.М., Борисова О.В., Петруша О.А., Смирнова Д.И., Чернышова И.Н., Свитич О.А., Зверев В.В., Файзулоев Е.Б. // Журн. микробиол. эпидемиол. иммунобиол. 2021. Т. 98. С. 253–265. https://doi.org/10.36233/0372-9311-136
Sorokin N.V., Chechetkin V.R., Livshits M.A., Pankov S.V., Donnikov M.Y., Gryadunov D.A., Lapa S.A., Zasedatelev A.S. // J. Biomol. Struct. Dyn. 2005. V. 22. P. 725–734. https://doi.org/10.1080/07391102.2005.10507039
Artesi M., Bontems S., Göbbels P., Franckh M., Maes P., Boreux R., Meex C., Melin P., Hayette M.P., Bours V., Durkin K. // J. Clin. Microbiol. 2020. V. 58. P. e01598-20. https://doi.org/10.1128/JCM.01598-20
Rubina A.Yu., Pan’kov S.V., Dementieva E.I., Pen’kov D.N., Butygin A.V., Vasiliskov V.A., Chudinov A.V., Mikheikin A.L., Mikhailovich V.M., Mirzabekov A.D. // Anal. Biochem. 2004. V. 325. P. 92–106. https://doi.org/10.1016/j.ab.2003.10.010
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Биоорганическая химия