Агрохимия, 2019, № 1, стр. 71-77
РОЛЬ СИЛИКАТНЫХ РИЗОБАКТЕРИЙ В БИОСОРБЦИИ КРЕМНИЯ В СИСТЕМЕ ПОЧВА–РАСТЕНИЕ ПРИ ПОЛИЭЛЕМЕНТНОМ ЗАГРЯЗНЕНИИ ПОЧВ
М. Г. Соколова 1, *, Г. А. Белоголова 2, **, Г. П. Акимова 1, О. Б. Вайшля 3, ***
1 Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН
Иркутск, ул. Лермонтова, 132, Россия
2 Институт геохимии им. А.П. Виноградова СО РАН
664033 Иркутск, ул. Фаворского, 1а, Россия
3 Национальный исследовательский Томский государственный университет
634050 Томск, просп. Ленина, 36, Россия
* E-mail: SokolovaMG@sifibr.irk.ru
** E-mail: gabel@igc.irk.ru
*** E-mail: planta@mail.tomsknet.ru
Поступила в редакцию 30.01.2018
После доработки 12.10.2018
Принята к публикации 24.04.2018
Аннотация
Установлено, что морфогенез исследованных злаковых растений и миграция биофильного элемента кремния зависели от уровня техногенной нагрузки почвы и воздействия ризосферных бактерий. На загрязненных тяжелыми металлами почвах обнаружено значительное торможение ростовых процессов растений по сравнению с выращенными на окультуренных почвах. Инокуляция силикатными бактериями Bacillus mucilaginosus способствовала повышению роста злаковых культур и увеличению содержания кремния в растениях во всех вариантах опыта. Предположили, что бактериальная обработка способствовала существенному укреплению стебля и листьев злаков за счет накопления в них кремния, что могло повысить устойчивость растений к полеганию и различным вредным внешним воздействиям.
ВВЕДЕНИЕ
Долгое время в научном мире считалось, что кремний не играет заметной роли в жизнедеятельности живых организмов в виду распространенных представлений о его биологической инертности. С 1960-х гг. стали появляться сведения о важной роли кремния в биологических системах. Существенный вклад в понимание биологической и физиологической активности соединений кремния в живой природе внес М.Г. Воронков – создатель новой отрасти науки – биокремнийорганической химии [1–3].
В настоящее время известно, что кремний непременно входит в химический состав всех растений [2, 4, 5]. Наибольшее количество его находится в растениях степных, полупустынных, пустынных и горных регионов с наименее благоприятными условиями существования, что характеризует кремний как элемент-адаптер для растений [3, 6]. Особенно высоким содержанием кремнезема (>50%) отличаются хвощи, папоротники и злаки. Представители богатых кремнием растений встречаются и среди многих других семейств, в основном тропической флоры, за счет большого содержания кремния в тканях тропических деревьев они практически не повреждаются насекомыми.
К настоящему времени собрано огромное количество экспериментальных данных, свидетельствующих о необходимости кремния растениям [5]. Добавление в почву или к водной культуре кремнекислоты стимулирует фотосинтетическую активность растений риса, его рост, колошение, созревание [1]. Ростстимулирующее действие кремния на растения используют на практике: кремневые удобрения применяют для повышения урожайности культурных растений [7–9]. Кроме того, при совместном применении некоторых элементов питания с кремнекислотой их эффективность значительно повышается, например, эффективность бора, так необходимого для развития бобовых растений [1].
Кремнийорганические соединения проявляют биологическую активность. Они стимулируют биосинтез белка и нуклеиновых кислот, регулируют активность ферментов и гормонов, оказывают защитное действие при гипер- и гипотермии, кислородном голодании и радиационном загрязнении [3]. Особое значение этот элемент имеет для кремнийконцентрирующих растений, к которым принадлежат важнейшие сельскохозяйственные культуры – зерновые. Кремний также укрепляет стебли растений. Существенную роль кремний играет в защите растений от грибных и других заболеваний, а также от вредителей [3]. Внесение в почву кремниевых удобрений обеспечивает поглощение растениями фосфора из обычно трудноусвояемых фосфатов, что связывают с деятельностью силикатных бактерий [2, 3, 7].
Есть сведения, что кремний снижает токсичность ряда элементов. Сравнительно невысокие концентрации марганца токсичны для растений и вызывают появление на листьях коричневых пятен. Соединения кремния подавляют поглощение марганца растениями, при этом устраняя его токсический эффект и увеличивая урожай растений. Аналогичным образом кремнезем способствует снижению токсичности соединений железа, подавляя их ассимиляцию растениями в результате увеличения окисляющей способности корней [10]. Участие кремнезема в питании растений устраняет токсическое действие фенола и фтористоводородной кислоты на сельскохозяйственные культуры, мышьяка – на рис и магния – на табак. Применение силикатов подавляет поглощение таких токсичных для растений, животных и человека металлов, как алюминий, кадмий, медь, стронций-90, устраняет вредное влияние засоленности [11, 12].
Восстановить содержание доступных для растений форм кремния в почве могут микроорганизмы, в частности, “силикатные бактерии” [4]. Ранее было показано, что исследованный штамм бактерий Bacillus mucilaginosus способен мобилизовать кремний и фосфор из такого объекта литосферы, как фосфоритная руда [13]. Способность микроорганизмов извлекать биогенные элементы из минералов и почвы позволяет использовать бациллы как бактериальные удобрения в системе биологического земледелия, повышающие микробиологическую активность почвы и урожайность растений [13–15].
Тяжелые металлы (ТМ) нарушают комплекс процессов в растении и индуцируют множество специфических и неспецифических реакций. Тогда как микроорганизмы, обладающие полезными для растений свойствами, могут оказывать в стрессовой ситуации позитивный аддитивный или синергический эффект, стимулировать рост и регулировать поступление ТМ в растения из загрязненных почв [16–18].
Цель работы – изучение влияния силикатных ризобактерий Bacillus mucilaginosus var. siliceus на ростовые характеристики растений пшеницы и овса, а также биосорбцию и биодоступность кремния на техногенно-загрязненных почвах.
МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ
Проведены эксперименты по влиянию ризосферных силикатных бактерий Bacillus megaterium var. siliceus, входящих в состав биопрепарата кремнебактерин, на изменения морфологических параметров роста злаковых культур пшеницы (Triticum aestivum L.) и овса (Avena sativa L.), выращенных в условиях техногенных почв разного уровня загрязнения ТМ.
Исследованный штамм ризосферных бактерий Bacillus mucilaginosus var. siliceus (№ ВКМ В-1574) находится в коллекции НИЦ “Планта” Томского госуниверситета и сдан на хранение в криохранилище “LICONIC” НИИ сельскохозяйственной микробиологии [13].
Биопрепарат кремнебактерин – это жидкий концентрат чистой культуры почвенных силикатных бактерий Bacillus megaterium, которые выделяют фермент силиказу и поставляют кремний и другие макро- и микроэлементы из природных силикатов в ризосферу растений. Он является нетоксичным, безопасным для человека и животных стимулятором роста растений и оказывает ряд других позитивных влияний на растения [13].
Биопрепарат разработан в Томском госуниверситете и предложен для апробации в агроклиматических условиях Южного Прибайкалья на базе Сибирского института физиологии и биохимии растений СО РАН [13].
Вегетационные эксперименты проводили в условиях фитотрона СИФИБР СО РАН (Центр коллективного пользования “Фитотрон” г. Иркутск). Растения пшеницы и овса выращивали на почвах, отобранных из техногенной зоны г. Свирска Иркутской обл., расположенного на берегу р. Ангары (Южное Прибайкалье) на различном удалении от основного источника загрязнения – бывшего Ангарского металлургического завода (АМЗ) по производству мышьяка, расположенного в черте города.
По результатам эколого-геохимических исследований, проведенных ранее в этом городе, были выявлены участки интенсивного загрязнения мышьяком и ТМ различных природных объектов (почвы, растений, животных) в концентрациях, превышающих санитарные нормы [19, 20]. Основными загрязнителями исследованных почв на территории бывшего АМЗ были мышьяк, свинец и кадмий, а также ряд других ТМ, значительно превышающих ПДК [17].
Для эксперимента почва была отобрана на участке 1, расположенном в 500 м от источника загрязнения (окультуренная почва) и на участке 2, максимально загрязненном ТМ, в 10 м от отвалов бывшего АМЗ. Более детальная характеристика почв дана в работе [17].
Растения пшеницы и овса выращивали в сосудах, которые вмещали 5 кг почвы. Каждая проба почв была разделена на исходную (контроль) и обработанную силикатными бактериями B. mucilaginosus (опыт), на которых выращивали растения в одинаковых условиях. Рабочий раствор бактерий вносили в почву поливом во время посадки в количестве 30 мл/кг почвы. Титр бактерий в рабочем растворе КОЕ = 106 кл./мл. Сосуды поливали водой по весу, в равной степени контрольный и опытный варианты. Растения не достигли зрелого состояния, т.к. на максимально загрязненных техногенных почвах после 25 сут роста они начали высыхать и гибнуть.
Распределение Si изучено в растениях, выращенных на почвах участков 1 и 2, контрастно отличавшихся по содержанию ТМ и мышьяка. Рассчитаны коэффициенты биологического накопления (Кб) кремния в растениях по формуле СSi растения : СSi почвы (отношение содержания элемента в растении к его содержанию в почве в вытяжках ЭДТА). Хелатные формы микроэлементов играют большую роль в метаболических процессах растений. Эти формы инициируют поступление элементов питания в корни растений и определяют их взаимодействие с ризосферными бактериями [21]. Поэтому в данной работе взяли за основу содержание кремния в почве в вытяжке ЭДТА в виде хелатных соединений. Расчет коэффициентов биологического накопления кремния в растениях произведен относительно его концентрации в почвенных вытяжках ЭДТА.
Анализ почв и растений производили в центре коллективного пользования “Изотопно-геохимических исследований” Института геохимии СО РАН. Из почв, на которых выросли растения, проведена экстракция Si с помощью ЭДТА. Для определения массовой доли Si в пробах сухой почвы и в вытяжках ЭДТА использовали метод атомной абсорбции. Предварительно почву высушивали, просеивали через сито 1 мм и растирали до состояния пудры. Измерения проводили на атомно-абсорбционных спектрометрах модели 403 и 503 фирмы “Perkin-Elmer” (США). Ошибка определения не превышала 5–20%.
Растения высушивали до воздушно-сухого состояния, корни предварительно промывали в проточной воде. Определение химического состава растений выполняли методом масс-спектрометрии с индуктивно-связанной плазмой ICP-MS. Использован чувствительный ICP-MS прибор с магнитным сектором ELEMENT 2 (“Finnigan MAT”, Germany), обладающий двойной фокусировкой и возможностью регистрации сигнала в различных разрешениях. Ошибка определения не превышала 5–10%. Для контроля правильности результатов анализа использовали стандартные образцы состава (лист березы ЛБ-1, ГСО 8923-2007, элодея канадская ЭК-1, ГСО 8921-2007, травосмесь Тр-1, ГСО 8922-2007), для контроля почв – образцы ССК-1 (серозем карбонатный), СДПС-2 (техногенная почва). Для статистической обработки стабильности результатов анализа использовали расчет стандартного отклонения SD 3-х аналитических измерений на основе программного обеспечения спектрометра “Thermo SPEC” (версия 4.1).
Эксперименты по наблюдению за ростом растений выполнены в 3-х биологических повторностях. В таблицах приведены средние и их стандартные ошибки.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
Показано, что на техногенной почве в первые сутки ростовые параметры растений не отличались от контрольных. Через 10–15 сут роста они снижались у пшеницы и у овса в среднем на 10%. К концу экспозиции рост пшеницы на загрязненной почве тормозился на 20, овса – на 30% (табл. 1). Кроме этого, к концу экспозиции наблюдали пожелтение и усыхание нижних листьев во всех вариантах (5–10%), но более существенно – на почве техногенного участка без инокуляции (до 80%).
Таблица 1.
Время, сут | Контроль, Н2О | Опыт, B. mucilaginosus | ||
---|---|---|---|---|
окультуренная почва 500 м | техногенная почва 10 м | окультуренная почва 500 м | техногенная почва 10 м | |
Пшеница | ||||
5 | 4.5 ± 0.3 | 7.5 ± 0.4 | 6.0 ± 0.3 | 7.5 ± 0.3 |
10 | 12.0 ± 1.0 | 12.0 ± 1.0 | 13.0 ± 1.1 | 13.5 ± 1.1 |
14 | 17.0 ± 1.3 | 16.0 ± 1.3 | 19.0 ± 1.5 | 18.0 ± 1.4 |
17 | 19.5 ± 1.5 | 18.5 ± 1.4 | 21.5 ± 1.8 | 19.0 ± 1.6 |
20 | 20.5 ± 1.8 | 18.5 ± 1.3 | 22.5 ± 1.7 | 20.0 ± 1.5 |
25 | 22.0 ± 1.8 | 18.5 ± 1.3 | 24.0 ± 1.9 | 20.0 ± 1.3 |
Овес | ||||
5 | 10.5 ± 0.8 | 10.0 ± 0.8 | 11.5 ± 0.8 | 9.0 ± 0.7 |
10 | 18.5 ± 1.3 | 19.0 ± 1.4 | 22.5 ± 1.8 | 17.5 ± 1.4 |
14 | 19.5 ± 1.4 | 19.0 ± 1.4 | 23.0 ± 2.0 | 18.0 ± 1.4 |
17 | 21.0 ± 1.8 | 19.0 ± 1.4 | 23.5 ± 2.0 | 18.5 ± 1.5 |
20 | 22.0 ± 1.9 | 19.5 ± 1.5 | 24.0 ± 2.0 | 18.5 ± 1.5 |
25 | 24.0 ± 1.9 | 20.0 ± 1.8 | 26.0 ± 2.3 | 20.0 ± 1.7 |
Инокуляция почвы бактериями давала увеличение роста растений пшеницы и овса на 8–16% во все периоды экспозиции в вариантах с окультуренной почвой и до 10% – растений пшеницы в вариантах с техногенной почвой. Ростовые параметры растений овса на загрязненной почве при инокуляции практически не менялись, рост растений несколько тормозился.
Обнаружено, что в техногенной почве Si накапливалось больше, чем в окультуренной: в 9 раз – в ризосфере пшеницы и в 6 раз – овса (табл. 2). Инокуляция повлияла по-разному на содержание кремния в ризосфере злаков: в окультуренной почве содержание Si увеличилось в обоих вариантах, в загрязненной почве под пшеницей его содержание снизилось в 2.6 раза, в ризосфере овса – возросло в 1.7 раза.
Таблица 2.
Культура | Варианты | |||
---|---|---|---|---|
контроль, Н2О | опыт, B. mucilaginosus | |||
окультуренная почва, 500 м от источника загрязнения | техногенная почва, 10 м от источника загрязнения | окультуренная почва, 500 м от источника загрязнения | техногенная почва, 10 м от источника загрязнения | |
Пшеница | 57.8 ± 6.3 | 542 ± 57 | 68.1 ± 7.5 | 209 ± 22 |
Овес | 67.6 ± 7.4 | 423 ± 48 | 172 ± 19 | 722 ± 76 |
Содержание Si в растениях было существенно меньше при выращивании их на техногенной почве (у пшеницы в 3.7–4.6 раза; у овса в 2.0–2.3 раза) по сравнению с окультуренной (табл. 3). Вероятно, происходило связывание элемента в почве в условиях высокой его концентрации, в частности, в виде хелатов, и ограничение его поступления в растения. Это могло быть также обусловлено межэлементным взаимодействием Si с ТМ, присутствовавшим в высоком количестве в почве [21].
Таблица 3.
Почва | Вариант | Органы растений пшеницы | Si | Влияния инокуляции (% к контролю) |
---|---|---|---|---|
Пшеница | ||||
500 м от источника загрязнения, окультуренная | Контроль, Н2О | Стебель, лист | 9700 ± 960 | 100 |
Корень | 12 400 ± 1200 | 100 | ||
Опыт, B. mucilaginosus | Стебель, лист | 10 300 ± 1000 | 106 | |
Корень | 18 200 ± 1800 | 147 | ||
10 м от источника загрязнения, техногенно- загрязненная | Контроль, Н2О | Стебель, лист | 2650 ± 270 | 100 |
Корень | 3520 ± 360 | 100 | ||
Опыт, B. mucilaginosus | Стебель, лист | 4760 ± 480 | 180 | |
Корень | 7060 ± 700 | 200 |
При воздействии ризобактерий содержание кремния в обеих культурах возросло во всех вариантах и, особенно, на техногенной почве. Соотношение содержания Si в растениях на окультуренной : техногенной почве при инокуляции снизилось до 2.5 у пшеницы и до 1.5 у овса. При этом обнаружено, что накопление Si в органах растений было больше в корнях, чем в надземной части обоих видов растений. Ранее было показано, что ризобактерии способствовали адсорбции токсикантов, связывая ТМ в ризосфере техногенно-загрязненной почвы и снижая их поступление в растение, но при этом не препятствовали поступлению основных элементов питания, в частности, P, К, S в растения [17, 18], что согласовалось с полученными результатами.
Таким образом, показано, что инокуляция почвы силикатными бактериями приводила к накоплению в растениях кремния, что, очевидно, способствовало укреплению стебля и листьев, и, как отмечено в литературе, обусловливало повышение устойчивости растения к полеганию и различным внешним воздействиям [3, 16].
При сопоставлении коэффициентов бионакопления кремния между растениями пшеницы и овса выяснилось, что величины Кб этих злаков были практически равными при выращивании растений на окультуренной почве (табл. 4). Однако на техногенной почве Кб пшеницы был меньше, чем у овса в 1.8 раза для надземных органов и в 3 раза – для корней.
Таблица 4.
Почва | Вариант | Органы растения | Кб пшеницы | Кб овса | Кб пшеницы : Кб овса |
---|---|---|---|---|---|
500 м от источника загрязнения | Контроль, Н2О | Стебель, лист | 168 | 125 | 1.3 |
Корень | 214 | 262 | 0.8 | ||
Опыт, B. mucilaginosus | Стебель, лист | 151 | 72.4 | 2.1 | |
Корень | 268 | 106 | 2.5 | ||
10 м от источника загрязнения | Контроль, Н2О | Стебель, лист | 4.9 | 8.7 | 0.6 |
Корень | 6.5 | 19.5 | 0.3 | ||
Опыт, B. mucilaginosus | Стебель, лист | 22.7 | 8.9 | 2.6 | |
Корень | 33.8 | 18.8 | 1.8 |
При инокуляции ризобактериями особенно на техногенной почве Кб пшеницы существенно вырос: в 4.6 раза для стеблей и в 5.2 раза – для корней, а также был в 2 и более раза больше, чем у овса для вариантов почв. Возможно, пшеница более восприимчива к влиянию бактерий, и при бактеризации в растениях пшеницы аккумуляция кремния происходила гораздо интенсивнее, особенно на загрязненной почве.
При сопоставлении коэффициентов бионакопления кремния в исследованных злаковых растениях, выращенных на почвах разной степени загрязненности ТМ показано, что величины Кб были существенно меньше в условиях техногенно-загрязненной почвы: более чем в 30 раз – пшеницы и более чем в 10 раз – овса (табл. 5). Инокуляция кремнебактериями уменьшала этот разрыв до 6–8 раз, т.е. бактеризация способствовала биосорбции кремния в растениях, повышая бионакопление Si особенно в растениях пшеницы, что может способствовать увеличению устойчивости растений в условиях техногенного загрязнения ТМ [3, 16].
Таблица 5.
Вариант | Органы растения | Кб 500 м : Кб10 м, пшеница | Кб 500 м : Кб10 м, овес |
---|---|---|---|
Контроль, Н2О | Стебель, лист | 34.2 | 14.4 |
Корень | 32.9 | 13.4 | |
Опыт, B. mucilaginosus | Стебель, лист | 6.7 | 8.1 |
Корень | 7.9 | 5.6 |
Биохимические аспекты метаболизма кремния до сих пор не изучены. Полагают, что в силикатных бактериях есть ферменты силиказы, ответственные за разрушение связей Si-O в кристаллических решетках глинистых минералов, а также связей Si-C в кремнийорганических соединениях. Однако в чистом виде эти ферменты не выделены. В клетках бактерий кремний конкурирует с фосфором. Фосфор может постепенно замещаться кремнием. В растительных тканях Si входит в состав полиуронидов – пектинов, в которых он выполняет роль “сшивающего” элемента [4], что делает его важным элементом в процессах питания и роста растений.
Таким образом, как показано нами и отмечено в литературе, микроорганизмы могут способствовать связыванию элементов в почве, как токсикантов, так и биогенных элементов, образуя слабо подвижные органические соединения с металлами [22] или металлорганические комплексы в виде хелатов [23] и внутрикомплексных соединений, тем самым уменьшая или увеличивая подвижность элементов, что определяется свойствами и концентрацией металлов [21]. Причем в природных условиях (без экзогенного внесения микробного инокулянта в почву) немаловажную роль биосорбентов играют, вероятно, аборигенные виды почвенных бактерий, помогая растению регулировать процессы транслокации металлов в системе почва–растение–микроорганизмы. Инокуляция почвы специально отобранными штаммами микроорганизмов, используемых в бактериальных препаратах как биоудобрения, способствует улучшению этих процессов, восстанавливая природное равновесие в условиях техногенно-нарушенных почв.
Итак, изученное влияние бактерий B. mucilaginosus var. siliceus на показатели роста зерновых культур и транслокацию кремния на техногенно-загрязненных ТМ почвах позволяет предложить их для дальнейшего исследования и применения в агропроизводстве на урбаноземах, поскольку данный штамм не только продуцирует активные метаболиты, включая фитогормоны, благоприятно влияя на почвенную микрофлору и растения [24], но и обладает геохимической активностью в мобилизации резервов биогенных элементов неорганической природы [13, 17], в частности, кремния. Кремний, в свою очередь, может способствовать повышению устойчивости растений к различным негативным воздействиям, биотической и абиотической природы, в том числе, таким как техногенное загрязнение почв.
ВЫВОДЫ
1. Показано, что в техногенно загрязненной тяжелыми металлами (ТМ) почве кремния накапливалось значительно больше, чем в окультуренной почве, как в ризосфере пшеницы, так и овса.
2. Техногенное загрязнение негативно влияло на растения, замедляя их ростовые процессы и существенно снижая содержание биогенного элемента кремния как в надземных органах, так и в корнях растений, очевидно, за счет буферности почвы и связывания элемента при высокой концентрации его в почве.
3. Силикатные ризосферные бактерии B. mucilaginosus var. siliceous приводили к стабилизации ростовых процессов, повышая транслокацию кремния в ткани злаковых растений, что вероятно, усиливало их адаптогенные свойства, за счет укрепления клеточных стенок стеблей, листьев и корней. При этом эти бактерии защищали растение и от избытка ТМ в условиях загрязнения, связывая их в почве.
4. Коэффициенты бионакопления кремния исследованных злаковых культур были значительно снижены в условиях техногенно-загрязненной почвы и более существенно – пшеницы, чем овса.
5. Инокуляция кремнебактериями почв способствовала аккумуляции кремния в растениях пшеницы в 2 раза интенсивнее, чем овса. Это свидетельствовало о том, что пшеница более восприимчива как к негативному воздействию техногенного загрязнения, так и к позитивному влиянию силикатных ризобактерий.
Список литературы
Воронков М.Г., Зелчан Г.И., Лукевиц Э.Я. Кремний и жизнь: биохимия, фармакология и токсикология соединений кремния. Рига: Зинатне, 1978. 588 с.
Воронков М.Г., Кузнецов И.Г. Кремний в живой природе. Новосибирск: Наука, СО, 1984. 154 с.
Воронков М.Г., Барышок В.П. Силатраны в медицине и сельском хозяйстве / Под ред. Толстикова Г.А. Новосибирск: СО РАН, 2005. 257 с.
Колесников М.П. Формы кремния в растениях // Усп. биол. химии. 2001. Т. 41. С. 301–332.
Самсонова Н.Е. Кремний в почве и растениях // Агрохимия. 2005. № 6. С. 76–86.
Матыченков В.В., Кособрюхов А.А., Шабнова Н.И., Бочарникова Е.А. Кремниевые удобрения как фактор повышения засухоустойчивости растений // Агрохимия. 2007. № 5. С. 63–67.
Мишустин Е.Н., Смирнова Г.А., Лохмачева Р.А. Разрушение силикатов микроорганизмами и использование “силикатных” бактерий как бактериальных удобрительных препаратов // Изв. СССР. Сер. биол. 1981. № 5. С. 698–708.
Макарова Л.Е., Боровский Г.Б., Булатова А.М., Соколова М.Г., Воронков М.Г., Мирскова А.Н. Влияние кремнийорганических производных триэтаноламина на рост корней проростков однодольных и двудольных растений // Агрохимия. 2006. Т. № 10. С. 1–5.
Матыченков В.В. Роль подвижных соединений кремния в растениях и системе почва–растение: Автореф. дис. … д-ра биол. наук. Пущино, 2008. 34 с.
Ермолаев А.А. Кремний в сельском хозяйстве // Химия в сел. хоз-ве. 1987. № 6. С. 45–47.
Матыченков В.В., Кособрюхов А.А., Шабнова Н.И., Бочарникова Е.А. Реакция растений на кремниевые удобрения при засолении почвы // Агрохимия. 2005. № 10. С. 59–63.
Бочарникова Е.А., Матыченков В.В. Влияние активного кремния на подвижность кадмия в системе почва–растение // Тр. 2-й Международ. конф. “Современные проблемы загрязнения почв”. М., 2007. Т. 1. С. 62–65.
Вайшля О.Б., Ведерникова А.А., Бондаренко А.П. Микробиологические аспекты гипергенеза. Томск: ТМЛ-Пресс, 2007. 288 с.
Соколова М.Г., Акимова Г.П., Хуснидинов Ш.К. Эффективность применения ассоциативных бактерий биопрепаратов на различных овощных культурах // Агрохимия. 2009. №. 7. С. 54–59.
Sokolova M., Akimova G., Vaishlya O., Vedernikova A. Physiological research of efficiency of biologically safe bacterial fertilizers // J. Manufactur. Technol. Manag. 2010. V. 21. Iss. 8. P. 956–970.
Белимов А.А., Тихонович И.А. Микробиологические аспекты устойчивости и аккумуляции тяжелых металлов у растений (обзор) // Сел.-хоз. биол. 2011. № 3. С. 10–15.
Белоголова Г.А., Соколова М.Г., Гордеева О.Н. Миграция и биодоступность тяжелых металлов, мышьяка и фосфора под влиянием ризосферных бактерий в техногенных экосистемах // Агрохимия. 2013. № 6. С. 83–92.
Соколова М.Г., Белоголова Г.А., Акимова Г.П. Влияние ризосферных бактерий на рост растений и накопление ими тяжелых металлов на техногенно загрязненных почвах // Агрохимия. 2014. № 2. С. 73–80.
Белоголова Г.А., Гордеева О.Н., Коваль П.В., Джао К.Х., Гао Г.Л. Закономерности распределения и формы нахождения тяжелых металлов в техногенно-трансформированных черноземах Южного Приангарья и Северо-Восточного Китая // Почвоведение. 2009. № 4. С. 1–12.
Гордеева О.Н., Белоголова Г.А., Гребенщикова В.И. Распределение и миграция тяжелых металлов и мышьяка в системе “почва–растение” в условиях г. Свирска (Южное Прибайкалье) // Пробл. регион. экол. 2010. № 3. С. 108–113.
Кабата-Пендиас А., Пендиас Х. Микроэлементы в почвах и растениях. М.: Мир, 1989. 439 с.
Переломов Л.В., Переломова И.В., Пинский Д.Л. Молекулярные механизмы взаимодействия между микроэлементами и микроорганизмами в биокосных системах (биосорбция и биоаккумуляция) // Агрохимия. 2013. № 3. С. 80–94.
Belogolova G.A., Sokolova M.G., Gordeeva O.N., Vaishlya O.B. Speciation of arsenic and its accumulation by plants from rhizosphere soils under the influence of Azotobacter and Bacillus bacteria // J. Geochem. Explor. 2015. № 149. C. 52–58.
Соколова М.Г., Акимова Г.П., Вайшля О.Б. Влияние на растения фитогормонов, синтезируемых ризосферными бактериями // Прикл. биохим. и микробиол. 2011. Т. 47. № 3. С. 302–307.
Дополнительные материалы отсутствуют.