Биоорганическая химия, 2019, T. 45, № 4, стр. 412-418

Синтез и in vitro-антибактериальная активность новых модифицированных по С3-положению карбапенемов

З. Р. Валиуллина 1, А. М. Галеева 1, Ф. А. Гималова 1, Н. К. Селезнева 1, Л. С. Хасанова 1, А. Р. Мавзютов 2, М. С. Мифтахов 1*

1 Уфимский институт химии Уфимского федерального исследовательского центра Российской академии наук
450054 Уфа, просп. Октября, 69, Россия

2 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение Башкирский государственный медицинский университет МЗ РФ
Уфа, ул. Ленина, 3, Россия

* E-mail: bioreg@anrb.ru

Поступила в редакцию 01.11.2018
После доработки 25.01.2019
Принята к публикации 15.02.2019

Полный текст (PDF)

Аннотация

Новые С3-модифицированные карбапенемы синтезированы AdNE-замещением 3-енолфосфатной группы 4-нитробензил-(4R,5S,6S)-3-[(дифенилфосфорил)окси]-6-[(1R)-1-гидроксиэтил]-4-метил-7-оксо-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоксилата соответствующими тиолами в среде ацетонитрила при содействии диизопропилэтиламина (DIPEA). В качестве тиолов использованы метиловый эфир меркаптоуксусной кислоты, фурил-2-метилтиол, 2-(4-метилпиперазин-1-ил)-2-оксоэтантиол и метил-N-(меркаптоацетил)метионинат. В результате получены ожидаемые 4-нитробензиловые эфиры: 3-[(2-метокси-2-оксоэтил)тио]-, 3-[(2-фурилметил)тио]-, 3-{[2-(4-метилпиперазин-1-ил)-2-оксоэтил]тио}-, 3-[(2-((S)-1-метоксикарбонил-3-тиометил-1-пропил)амино)-2-оксоэтилтио]производных (4R,5S,6S)-6-[(1R)-1-гидроксиэтил-4-метил-7-оксо-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоновой кислоты, выходы которых после очистки колоночной хроматографией составили 67–87%. Полученные п-нитробензиловые (pNb) эфиры карбапенемов гидрогенолизом над 10% Pd/C в метаноле превращены в соответствующие кислоты. Изучена антибактериальная активность полученных карбапенемов и предшествующих им pNb-эфиров по отношению к микроорганизмам Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Candida albicans, Streptococcus oralis. Найдены соединения, превосходящие по активности известные препараты Меропенем и Цилапенем.

Ключевые слова: карбапенеменолфосфат, меркаптоуксусная кислота, амиды, синтез, карбапенемы, антибактериальная активность

ВВЕДЕНИЕ

Одна из глобальных проблем в лечении инфекционных заболеваний антибиотиками заключается в выработке микроорганизмами резистентных линий штаммов, что ведет к тяжелым последствиям для больных. Признанный и действенный подход к решению проблем резистентности – создание и внедрение новых или структурно измененных аналогов известных антибиотиков [1, 2].

Несмотря на давнюю историю и разработанность бета-лактамных антибиотиков этот класс антибиотиков и сегодня представляет особый интерес для лечения бактериальных инфекций [3] и поиска новых хемотерапевтических агентов. Механизм действия бета-лактамов связан с их способностью к ковалентному связыванию с ферментами, участвующими в построении клеточной стенки бактерий, и образованию нежизнеспособных дефектных клеток, что, в итоге, приводит к их гибели.

В ряду антибиотиков бета-лактамного ряда карбепенемы являются наиболее эффективными низкотоксичными представителями широкого спектра действия. Ключевой структурой этих соединений является 7-оксо-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоновая кислота, которая и обусловливает их высокую устойчивость к бета-лактамазам [4]. Наличие 1R-гидроксиэтильной группы в положении С6 карбапенемов приводит к значительному усилению антибактериальной активности, а также защищает бета-лактамное кольцо, обеспечивая стабильность антибиотиков в отношении действия бета-лактамаз. Структуры некоторых из используемых на практике карбепенемовых антибиотиков (рис. 1) с химической точки зрения различаются только заместителем SR при С3, остальная часть молекул практически одинакова.

Таблица 1.

In vitro-антибактериальная активность соединений (IIIа, б)–(VIа, б)

Микро-организмы МПК (мкг/мл)
(IIIа) (IIIб) (IVа) (IVб) () () (VIа) (VIб) Меропенем Цилапенем
E. coli >0.5 0.5 0.015 2.0 0.015 >32.0 0.031 0.5 1.0 0.5
Ps. aeruginosa 0.031 0.5 0.031 0.5 0.031 2.0 0.031 4.0 2.0 >4
Str. oralis 0.015 0.125 0.031 1.0 0.031 0.125 0.015 0.125 1.0 4.0
C. albicans 0.5 0.5 0.015 0.5 0.015 0.25 0.031 0.125 1.0 4.0

Показанные на рис. 1 1-метилкарбапенемы получены путем химического синтеза. К настоящему времени предложен ряд синтетических подходов, получено значительное количество производных карбапенемов и изучены их фармакологические свойства [58]. Тем не менее, из-за проблем резистентности исследования по поиску новых антибиотиков этого ряда и модифицированию известных актуальны по сей день. Структурно-ориентированный анализ имеющегося массива известных препаратов карбепенемовых антибиотиков позволяет оценить наиболее перспективные направления их модифицирования. Прежде всего, следует отметить то, что ответственные за биоактивность бета-лактамный цикл и бициклическая часть с боковым 6-(1-гидроксиэтильным) заместителем в структурно-ориентированных синтезах остаются без изменений.

Рис. 1.

Структуры некоторых используемых на практике 1-метилкарбапенемов.

При получении клинически сбалансированных соединений (см. например, рис. 1) основные структурные изменения проведены в SR-фрагменте с включением в структуру карбапенемов (кроме орапенема) пирролидинового цикла с N‑содержащим заместителем в положениях 2 или 3 кольца пирролидина. Модификации по карбоксильной группе карбапенемов редки [9, 10] и связаны они с получением сложных эфиров (пролекарства), что важно в плане увеличения липофильности препарата для орального применения (см., напр., структуру Орапенема).

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

В данной работе в модифицировании SR-части карбапенемов мы запланировали использовать некоторые производные меркаптоуксусной кислоты и фурил-2-метилтиола. Этот выбор обусловлен желанием заменить применяемые в синтезе карбапенемов из фосфоната (I) тиолы общей формулы HSR, включающие пирролидиновый цикл и получаемые в большинстве методик из дорогостоящего транс-4-гидрокси-L-пролина [11], на легкодоступные аналоги, в частности, на амиды меркаптоуксусной кислоты.

В синтезе производных карбапенемов наиболее практичны подходы, исходящие из ключевого (4‑нитробензил)-(4R)-3-[(дифенилфосфорил)окси]-6-[(1R)-1-гидроксиэтил]-4-метил-7-оксо-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоксилата (I) [1213], в котором дифенилфосфатная группа в мягких условиях замещается на RS-остаток тиолов RSH с образованием карбапенемов общей формулы (IIа), которые последующим гидрогенолизом превращают в целевые карбапенемы (IIb) [1416]. По этой схеме, вводя в реакцию с фосфонатом (I) соответствующие, не содержащие пирролидиновый цикл тиолы (VII)–(X), мы синтезировали ряд защищенных по карбоксильной группе карбапенемов (IIIа)–(VIа) и после снятия pNb-эфирных групп – целевые карбапенемы (IIIб)–(VIб) (схема 1).

После очистки колоночной хроматографией на SiO2 pNb-эфиры (IIIа)–(VIа) были выделены с чистотой ~98%. При выделении кислот (IIIб)–(VIб) рекомендуемая обращено-фазовая хроматография на Diaion HP-20 [9] с последующей липофилизацией не применялась из-за неоправданно высоких потерь целевых соединений в ходе очистки. Применяемая нами методика проста и включает фильтрацию гидрогенолизата от катализатора, упаривание раствора и вакуумирование остатка для удаления побочного нитротолуола. В этом случае чистота полученных образцов (IIIб)–(VIб) согласно данным 1H- и 13С-ЯМР была на уровне ~95%.

На антибактериальную активность in vitro наряду с кислотами (IIIб)–(VIб) мы тестировали также pNb-эфиры (IIIа)–(VIа) и известные препараты Меропенем и Цилапенем (табл. 1). Как видно из данных табл. 1, в ряду pNb-эфиров (IIIа)–(VIа) в отношении четырех испытанных микроорганизмов (Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Streptococcus oralis и Candida albicans) наиболее активны соединения (IVа) и (), содержащие в заместителе SR соответственно фрагменты фурана и пиперазина, соответственно. Кислоты (IIIб)–(VIб) по активности в целом уступают pNb-эфирам, но более активны в сравнении с Меропенемом и Цилапенемом.

Таким образом, в работе представлены новые карбапенемы и их pNb-эфиры (IIIа, б)–(VIа, б), содержащие при С3 заместители SR, где R – сложноэфирная, сульфидная и амидная группы, и показавшие антибактериальную активность в отношении E. coli, Ps. aeruginosa, Str. oralis и C. albicans. Результаты биотестирования будут учтены в выборе перспективных для последующих исследований соединений.

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ХИМИЧЕСКАЯ ЧАСТЬ

ИК-спектры (ν, см–1) получены на спектрофотометре “IR Prestige-21 Shimadzu” для образцов в тонком слое. Спектры 1Н- и 13С-ЯМР записаны на спектрометрах “Bruker AM-300” с рабочими частотами 300.13 и 75.47 МГц и “Bruker AVANCE-500” с рабочими частотами 500.13 и 125.77 МГц соответственно, значения химических сдвигов (δ, м.д.) приведены с использованием в качестве внутренних стандартов остаточные протоны растворителей CDCl3 (δ 7.270), ацетон-d6 (δ 2.09) (для соединения VIa) или метанол-d4 (δ 3.34) (для карбоновых кислот (IIIб)–(VIб)), константы спин-спинового взаимодействия (J) измерены в герцах. Масс-спектры получены на масс-спектрометре LCMS-2010EV (Shimadzu) (шприцевой ввод, раствор образца в хлороформе/ацетонитриле при расходе 0.1 мл/мин, элюент – ацетонитрил/вода (95/5) в режиме регистрации положительных ионов при потенциале игольчатого ионизирующего электрода 4.5 кВ; температура капилляра интерфейса 250°С, напряжение на капилляре интерфейса 5 В). Данные элементного анализа синтезированных соединений получены на CHNS-анализаторе EURO EA-2000. Углы оптического вращения измерены на приборе Perkin-Elmer-341. Ход реакции контролировали методом ТСХ на пластинках “Сорбфил” (Россия) с обнаружением веществ смачиванием пластинок раствором анисового альдегида и серной кислоты в этаноле с последующим нагреванием при 120–150°С. Продукты синтеза выделяли методом колоночной хроматографии на силикагеле (30–60 г адсорбента на 1 г вещества) с использованием в качестве элюента систему петролейный эфир–этилацетат в соотношении от 3 : 1 до 1 : 1 или хлороформ–метанол, 10 : 1. Для хроматографирования использовали свежеперегнанные растворители.

Для получения карбапенемов использовали 4-нитробензил-(4R)-3-[(дифенилфосфорил)окси]-6-[(1R)-1-гидроксиэтил]-4-метил-7-оксо-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоксилат (I) фирмы ABCR GMBH (Германия).

Тиолы (IX) и (X) синтезированы нами взаимодействием 2-этокси-1,3-оксатиолан-5-она с N‑метилпиперазином и метиловым эфиром метионина; их полные методы синтеза будут описаны в отдельной публикации.

Общая методика получения соединений (IIIa)–(VIa). К перемешиваемому раствору 0.50 ммоль фосфоната (I) в 10 мл безводного CH3CN при 0°C добавляли по каплям раствор 0.60 ммоль соответствующего тиола в 3–5 мл ацетонитрила и затем добавляли 0.60 ммоль диизопропилэтиламина (DIPEA), реакционную массу перемешивали 0.5–12 ч при комнатной температуре (контроль методом ТСХ), упаривали. Продукты реакции выделяли колоночной хроматографией на SiO2.

(4-Нитробензил)-(4R,5S,6S)-6-[(1R)-1-гидроксиэтил]-3-[(2-метокси-2-оксоэтил)тио]-4-метил-7-оксо-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоксилат (IIIа). Получали по общей методике из 0.29 г (0.50 ммоль) фосфоната (I), 0.06 мл (0.60 ммоль) метилового эфира 2-меркаптоуксусной кислоты (VII) и 0.1 мл (0.60 ммоль) DIPEA (2 ч, 0→20°C). Продукт очищали колоночной хроматографией на SiO2 (элюент – петролейный эфир–этилацетат, 1 : 1). Выход 0.30 г (67%). Белые кристаллы, т. пл. 160–161°C. $[\alpha ]_{D}^{{20}}$ +60.1° (с 1.05, CH2Cl2). ИК-спектр: 3370, 1732, 1665, 1439, 1202, 1092. Спектр 1Н-ЯМР: 1.10 (д, 3H, J 7.3, CН3), 1.13 (д, 3H, J 6.3, CН3), 3.20 (дд, 1H, J 2.4, 6.6, Н6), 3.38 (д, 1H, J 15.1, SCН2), 3.38 (д, 1H, J 15.1, SCН2), 3.53 (дк, 1H, J 8.8, 7.3, H4), 3.68 (с, 3H, OCH3), 4.19 (дк, 1H, J 6.6, 6.3, СH–OН), 4.21 (дд, 1H, J 2.4, 8.8, Н5), 5.16 (д, 1H, J 14.2, OCН2Ph), 5.43 (д, 1H, J 14.2, OCН2Ph), 7.65 (д, 2H, J 8.6, HAr), 8.10 (д, 2H, J 8.6, HAr). Спектр 13С-ЯМР: 16.57 (СH3), 21.82 (СH3), 33.07 (SСH2), 43.19 (C4), 52.89 (OСH3), 56.12 (С6), 59.60 (C5), 65.34 (OCH2Ph), 65.87 (CH-OH), 123.71 (СHAr), 124.93 (C2), 128.14 (СHAr), 142.83 (${\mathbf{C}}_{{{\text{Ar}}}}^{i}$), 147.59 (С3), 149.87 (${\mathbf{C}}_{{{\text{Ar}}}}^{i}$), 160.23 (СON), 169.28 (СO2), 172.56 (СO2). Масс-спектр, m/z (Iотн, %): 451 (100) [М + H]+, 365 (17).

(4-Нитробензил)-(4R,5S,6S)-6-[(1R)-1-гидроксиэтил]-4-метил-7-оксо-3-[(2-фурилметил)тио]-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоксилат (IVа). Получали по общей методике из 0.29 г (0.50 ммоль) фосфоната (I), 0.06 мл (0.60 ммоль) фурил-2-метилтиола (VIII) и 0.1 мл (0.60 ммоль) DIPEA (12 ч, 0→20°C). Очищали колоночной хроматографией на SiO2 (элюент – петролейный эфир–этилацетат, 3 : 1→1 : 1). Выход 0.16 г (78%). Белые кристаллы, т. пл. 134–135°C. $[\alpha ]_{{D.}}^{{20}}$ +40° (с 1.02, CHCl3). ИК-спектр: 3360, 1759, 1670, 1274, 1092, 985. Спектр 1Н-ЯМР: 1.25 (д, 3H, J 7.3, CН3), 1.47 (д, 3H, J 6.3, CН3), 3.28 (д.д, 1H, J 2.4 и 6.7, Н6), 3.55 (1H, дк, J 9.2, 7.3, Н4), 3.98 (д, 1H, J 14.9, SCН2), 4.16 (д, 1H, J 14.9, SCН2), 4.20 (дд, 1H, J 2.4, 9.2, Н5), 4.27 (дк, 1H, J 6.7, J 6.3, СH–OН), 5.23 (д, 1H, J 13.8, CН2Ph), 5.00 (д, 1H, J 13.8, CН2Ph), 6.21 (д, 1H, J 3.2, Н3fur), 6.33 (дд, 1H, J 1.6, 3.2, Н4 fur), 7.35 (д, 1H, J 1.6, Н5fur), 7.65 (д, 2H, J 8.6, HAr), 8.20 (д, 2H, J 8.6, HAr). Спектр 13С-ЯМР: 16.17 (СH3), 21.94 (СH3), 28.59 (SСH2), 43.28 (C4), 56.10 (С6), 59.61 (С5), 65.30 (OCH2Ph), 66.02 (CH-OH), 108.36, 110.79 (С3fur и С4fur), 123.75 (СHAr), 124.34 (С2), 128.17 (СHAr), 142.62 (С5fur), 142.99 (С2fur), 147.58 (С3), 150.04 (${\mathbf{C}}_{{{\text{Ar}}}}^{i}$), 151.40 (${\mathbf{C}}_{{{\text{Ar}}}}^{i}$), 160.30 (СON), 172.0 (СO2). Масс-спектр, m/z (Iотн, %): 459 (100) [М + H]+, 373 (28). Найдено, %: С, 57.54; Н, 4.91; N, 6.01; S, 7.06. С20H22N2O8S. Вычислено, %: С, 57.63; Н, 4.84; N, 6.11; S, 6.99.

(4-Нитробензил)-(4R,5S,6S)-6-[(1R)-1-гидроксиэтил]-4-метил-3-{[2-(4-метилпиперазин-1-ил)-2-оксоэтил]тио}-7-оксо-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоксилат (Vа). Получали по общей методике из 0.29 г (0.50 ммоль) фосфоната (I), 0.11 г (0.60 ммоль) 2-(4-метилпиперазин-1-ил)-2-оксоэтантиола (IX) и 0.10 мл (0.57 ммоль) DIPEA (3 ч, 0°C). Очищали колоночной хроматографией на SiO2 (хлороформ–метанол, 10 : 1). Выход 0.187 г (78%). Желтое вязкое масло. $[\alpha ]_{{D.}}^{{20}}$ +39.0° (с 1.00, CH2Cl2). ИК-спектр, ν, см–1: 3358, 1767, 17015, 1635, 1521, 1459, 1345, 1210, 1139, 1048. Спектр 1Н-ЯМР (ацетон-d6, 300 МГц): 1.22 (д, 3H, J 7.3, CН3), 1.30 (д, 3H, J 6.2, CН3), 2.20 (с, 3H, CН3), 2.28–2.40 (м, 4H, 2NCН2), 2.80 (уш. с, 1H, ОН), 3.30 (д.д, 1H, J 2.5, 6.5, Н6), 3.40–3.60 (м, 4H, 2NCН2), 3.78 (д.к, 1H, J 9.3, 7.3, Н4), 3.83 (д, 1H, J 14.6, SСН2) и 3.95 (д, 1H, J 14.6, SСН2), 4.15 (д.к, 1H, J 6.5, 6.2, СH–OH), 4.25 (д.д, 1H, J 2.5, 9.3, Н5), 5.30 (д, 1H, J 14.1, СН2Ph) и 5.55 (д, 1H, J 14.1, СН2Ph), 7.80 (д, 2H, J 8.5, НAr) и 8.25 (д, 2H, J 8.6, НAr). Спектр 13С-ЯМР: 16.28 (СH3), 21.82 (СH3), 32.87 (SСH2), 41.74, 46.12, 54.35, 54.66 (NСH2), 43.22 (С4), 45.69 (NCH3), 56.06 (С6), 59.72 (С5), 65.35 (СН2Ph), 65.69 (СH–OH), 123.77 (СHAr), 125.17 (С2), 128.17 (СHAr), 142.89 (${\mathbf{C}}_{{{\text{Ar}}}}^{i}$), 147.59 (С3), 150.13 (${\mathbf{C}}_{{{\text{Ar}}}}^{i}$), 160.28 (СON), 166.43 (СON), 172.94 (СO2). Масс-спектр, m/z (Iотн, %): 519 (100) [М + H]+, 269 (35). Найдено, %: С, 55.41; Н, 5.69; N, 10.93; S, 6.27. С20H22N2O8S. Вычислено, %: С, 55.59; Н, 5.83; N, 10.80; S, 6.18.

(4-Нитробензил)-(4R,5S,6S)-6-((1R)-1-гидроксиэтил)-3-[(2-((S)-1-метоксикарбонил-3-метилтио-1-пропил)амино)-2-оксоэтил]тио-4-метил-7-оксо-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоксилат (VIа). Получали по общей методике из 0.29 г (0.50 ммоль) фосфоната (I), 0.14 г (0.60 ммоль) метил-N-(меркаптоацетил)метионината (X) и 0.10 мл (0.60 ммоль) DIPEA (0.5 ч, 0°C). Очищали колоночной хроматографией на SiO2 (элюент – хлороформ–метанол, 60 : 1). Выход 0.25 г (87%). Светло-желтое маслообразное вещество. $[\alpha ]_{{D.}}^{{20}}$ +87.5° (с 1.00, CH2Cl2). ИК-спектр: 3353, 3324, 1757, 1739, 1676, 1518, 1437, 1347, 1203, 1134. Спектр 1Н-ЯМР: 1.23 (д, 3H, J 7.3, CН3,), 1.35 (д, 3H, J 6.3, CН3), 1.70 (уш.с, 1H, ОН), 1.95–2.40 (м, 1H, CН2 Met), 2.08 (с, 3H, SCН3), 2.10–2.18 (м, 1H, CН2 Met), 2.45–2.55 (м, 2H, CН2 Met), 3.28 (дд, 1H, J 2.7, 6.5, Н6), 3.42 (д, 1H, J 16.9, SСН2), 3.44 (дк, 1H, J 9.2, 7.3, Н4), 3.68 (д, 1H, J 16.9, SСH2), 3.72 (с, 3H, ОСН3), 4.25 (дк, 1H, J 6.5, 6.3, CH–OН), 4.32 (дд, 1H, J 2.7, 9.3, Н5), 4.68 (ддд, 1H, J 4.8, 8.0, 12.5, CН–NH), 5.23 (д, 1H, J 13.8, CН2Ph) и 5.52 (д, 1H, J 13.8, CН2Ph), 7.20 (д, 1H, J 8.0, NН), 7.67 (д, 2H, J 8.8, НAr), 8.22 (д, 2H, J 8.8, НAr). Спектр 13С-ЯМР: 15.39 (СH3), 16.60 (СH3), 21.73 (СH3), 29.96 (СH2), 30.50 (СH2), 34.76 (СH2), 42.76 (C4), 51.96 (OСH3), 52.66 (СHNH), 56.05 (С6), 59.70 (С5), 65.42 (СH2Ph), 65.71 (СH–OH), 123.75 (СHAr), 125.86 (С2), 128.11 (СHAr), 142.76 (${\mathbf{C}}_{{{\text{Ar}}}}^{i}$), 147.58 (С3), 148.70 (${\mathbf{C}}_{{{\text{Ar}}}}^{i}$), 160.40 (СON), 167.48 (СON), 171.65 (СO2), 172.69 (СO2). Масс-спектр, m/z (Iотн, %): 582 (100) [М + H]+, 496 (80) [МH‒CO2Me]+, 238 (50). Найдено, %: С, 51.52; Н, 5.49; N, 7.38; S, 10.94. С25H31N3O9S2. Вычислено, %: С, 51.73; Н, 5.37; N, 7.22; S, 11.03.

Общая методика гидрирования соединений (IIIа)–(VIа). К перемешиваемому раствору ~0.1 г соединения (IIIа)–(VIа) в 10 мл метанола добавляли 30 мг 10% Pd/C, реакционную массу перемешивали 2 ч в атмосфере водорода (контроль методом ТСХ). Затем катализатор отфильтровали, фильтрат упаривали и остаток вакуумировали.

(4R,5S,6S)-6-[(1R)-1-Гидроксиэтил]-3-[(2-метокси-2-оксоэтил)тио]-4-метил-7-оксо-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоновая кислота (IIIб). Получали по общей методике из 0.10 г (0.22 ммоль) соединения (IIIа) и 30 мг 10% Pd/C. Выход 56 мг (82%). ИК-спектр: 3430, 1728, 1713, 1609, 1520, 1455, 1436, 1408, 1347, 1300, 1278, 1136. Спектр 1Н-ЯМР: 1.20 (д, 3H, J 7.3, CН3), 1.28 (д, 3H, J 6.2, CН3), 3.25 (д.д, 1H, J 2.3, 7.1, Н6), 3.55 (д, 1H, J 15.3, SCН2), 3.73 (с, 3H, OCH3), 3.76 (д, 1H, J 15.3, SCН2), 4.08–4.13 (м, 2H, H4, СH–OН), 4.16 (д.д, 1H, J 2.3, 9.1, Н5). Спектр 13С-ЯМР: 15.59 (СH3), 20.45 (СH3), 32.51 (SСH2), 42.97 (C4), 51.75 (OСH3), 56.33 (С6), 59.30 (C5), 65.53 (CH-OH), 126.50 (C2), 151.50 (С3), 163.00 (СON), 170.15 (СO2), 173.66 (СO2). Масс-спектр, m/z (Iотн, %): 324 (70) [М – H], 299 (31), 270 (75), 238 (50), 226 (18). Найдено, %: С, 49.40; Н, 5.58; N, 4.60; S, 10.05. С13H17NO6S. Вычислено, %: С, 49.51; Н, 5.43; N, 4.44; S, 10.17.

(4R,5S,6S)-6-[(1R)-1-Гидроксиэтил]-4-метил-7-оксо-3-[(2-фурилметил)тио]-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен-2-карбоновая кислота (IVб). Получали по общей методике из 0.09 г (0.19 ммоль) соединения (IVа) и 30 мг 10% Pd/C. Выход 63 мг (71%). Спектр 1Н-ЯМР: 1.20 (д, 3H, J 7.3, CН3), 1.29 (д, 3H, J 6.3, CН3), 3.23 (д.д, 1H, J 7.2, 2.4, Н6), 3.58 (д.к, 1H, J 9.1, 7.3, Н4), 4.03 (д, 1H, J 14.7, SCН2), 4.09 (д.к, 1H, J 7.2, 6.3, СH-OH), 4.12 (дд, 1H, J 9.1, J 2.4, Н5), 4.22 (д, 1H, J 14.7, SCН2), 6.29 (д, 1H, J 3.2, Н3fur), 6.34 (д.д, 1H, J 1.9, 3.2, Н4fur), 7.43 (д, 1H, J 1.9, Н5fur). Спектр 13С-ЯМР: 15.68 (СH3), 20.46 (СH3), 27.82 (SСH2), 43.03 (С4), 56.27 (С6), 59.33 (С5), 65.57 (СH-OH), 107.63, 110.28 (С3fur и С4fur), 142.32 (С5fur, 150.93 (С2fur), 125.87 (С2), 149.34 (С3), 162.92 (СON), 173.70 (СO2). Масс-спектр, m/z (Iотн., %): 324 (60) [М + H]+, 315 (76), 279 (50), 238 (56). Найдено, %: С, 55.60; Н, 5.44; N, 4.49; S, 9.84. С15H17NO5S. Вычислено, %: С, 55.71; Н, 5.30; N, 4.33; S, 9.92.

(4R,5S,6S)-6-[(1R)-1-Гидроксиэтил-4-метил-3-{[2-(4-метилпиперазин-1-ил)-2-оксоэтил]тио}-7-оксо-1-азабицикло[3.2.0]гепт-2-ен]-2-карбоновая кислота (Vб). Получали из 0.088 г (0.17 ммоль) соединения () и 30 мг 10% Pd/C. Выход 50 мг (75%). В спектре 1Н-ЯМР соединения () цвиттер-ионной природы ряд сигналов пиперидинового кольца и С4-Н не приведены из-за плохого разрешения. Спектр 1Н-ЯМР: 1.18 (д, 3H, J 7.3, CН3), 1.25 (д, 3H, J 6.3, CН3), 2.79 (с, 3H, CН3), 3.20 (дд, 1H, J 2.6, 6.3, H6), 3.22 (уш.с, 2H, NCН2), 3.60 (м, 1H, Н4), 3.61 (д, 1H, J 14.2, SCН2), 3.75 (д, 1H, J 14.2, SCН2), 4.10 (к, 1H, J 6.3, СH–OH), 4.15 (дд, 1H, J 2.6, 9.6, Н5). Спектр 13С-ЯМР: 15.22 (СH3), 20.34 (СH3), 32.36 (SСH2), 39.24, 45.57, 52.87, 52.97 (NСH2), 41.64 (NCH3), 42.65 (С4), 55.77 (С6), 59.73 (С5), 64.96 (СH–OH), 125.18 (С2), 147.07 (С3), 166.18 (СON), 168.02 (СON), 174.78 (СO2). Масс-спектр, m/z (Iотн., %): 384 (100) [М + + H]+, 340 (33), 289 (26), 269 (66), 216 (26), 143 (28). Найдено, %: С, 53.39; Н, 6.41; N, 11.08; S, 8.22. С17H25N3O5S. Вычислено, %: С, 53.25; Н, 6.57; N, 10.96; S, 8.36.

(4R,5S,6S)-6-[((1R)-1-Гидроксиэтил)-3-[(2-((S)-1-метоксикарбонил-3-тиометил-1-пропил)амино)-2-оксоэтил)тио]-4-метил-7-оксо-1-азабицикло-[3.2.0]гепт-2-ен]-2-карбоновая кислота (VIб). Получали из 0.102 г (0.18 ммоль) эфира (VIа) и 30 мг 10% Pd/C. Выход 68 мг (85%). Спектр 1Н-ЯМР: 1.20 (д, 3H, J 7.3, CН3), 1.28 (д, 3H, J 6.2, CН3), 1.93–2.30 (м, 1H, CН2Met), 2.08 (с, 3H, SCН3), 2.08–2.16 (м, 1H, CН2 Met ), 2.47–2.62 (м, 2H, CН2 Met), 3.25 (дд, 1H, J 2.4, 7.1, Н6), 3.53 (д, 1H, J 15.1, SCН2), 3.56 (дк, 1H, J 9.2, 7.3, Н4), 3.67 (д, 1H, J 15.1, SCН2), 3.71 (с, 3H, ОCН3), 4.09 (дк, 1H, J 7.1, 6.2, СH–OH), 4.18 (дд, 1H, J 2.4, 9.2, Н5), 4.53–4.6 (м, 1H, СНN). Спектр 13С-ЯМР: 13.83 (СH3), 15.64 (СH3), 20.47 (СH3), 29.70 (SСH2), 30.22 (СH2), 34.12 (СH2), 42.93 (С4), 48.46 (СHN), 51.66 (OСH3), 56.29 (С6), 59.31 (С5), 65.48 (СH-OH), 126.54 (С2), 148.18 (С3), 164.04 (СON), 169.85 (СON), 172.03 (СO2), 173.77 (СO2). Масс-спектр, m/z (Iотн., %): 447 (18) [М + H]+, 435 (70), 289 (26), 421 (75), 403 (25), 206 (50). Найдено, %: С, 48.58; Н, 5.96; N, 6.14; S, 14.47. С18H26N2O7S2. Вычислено, %: С, 48.42; Н, 5.87; N, 6.27; S, 14.36.

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ БИОЛОГИЧЕСКАЯ ЧАСТЬ

Для исследования антибактериальной активности синтезированных карбапенемов в качестве тестовых микроорганизмов использовали музейные штаммы: Escherichia coli № 25922, Pseudomonas aeruginosa (штамм SS14 KC 866140), Candida albicans № 24433 (все из коллекции Клиники БГМУ), Streptococcus oralis № 27417 (из коллекции кафедры фундаментальной и прикладной микробиологии БГМУ).

Для приготовления рабочих растворов из основных растворов тестируемых соединений в диметилсульфоксиде (DMSO) использовали бульон Мюллера-Хинтона (“HiMedia”, Индия). В качестве препаратов сравнения использовали известные антибиотики Меропенем (Meropenum (род. Meropeni) (Джепак Интернейшенл, Индия) и Цилапенем (Imipenemum + Cilastatinum (род. Imipenemi + + Cilastatini)) (РУП Белмедпрепараты, Республика Беларусь).

Минимальные подавляющие концентрации (МПК) химических соединений (IIIa)–(VIa), (IIIб)–(VIб) оценивали референтным методом микроразведений в бульоне. Для этого готовили основные растворы из имевшихся навесок тестируемых веществ в стерильных флаконах, которые растворяли в 1 мл DMSO с вычислением процентной концентрации (C, %). Затем готовили рабочие растворы путем двукратных последовательных разведений основных растворов (выше и ниже концентрации 1 мкг/мл) в бульоне Мюллера-Хинтона. Готовые разведения использовали в день их приготовления.

Инокулюм готовили путем суспендирования в физиологическом растворе 4–5 морфологически однородных колоний, выросших на чистой неселективной твердой питательной среде, инкубированной при 37°С в течение 18–24 ч, и доводили суспензию до мутности, эквивалентной 0.5 стандарта МакФарланд (1.5 × 108 КОЕ/мл). Далее приготовленный инокулюм разводили в бульоне Мюллера-Хинтона (разведение 1 : 100), чтобы получить требуемую плотность микробной культуры 5 × 106 КОЕ/мл. Планшеты инокулировались в течение не более 30 мин после приготовления инокулюма для сохранения необходимого числа жизнеспособных клеток.

Для проведения эксперимента по определению минимальных подавляющих концентраций использовали планшеты, в отдельные лунки которых последовательно добавляли по 50 мкл каждого из рабочих растворов тестируемых химических соединений. К каждой лунке, содержащей 50 мкл раствора химического соединения, разведенного в бульоне, добавляли 50 мкл бактериальной суспензии (5 × 106 КОЕ/мл).

Для контроля роста всех проверяемых штаммов микроорганизмов обязательно ставили положительный контрольный образец (ПКО) в лунке, содержащей 50 мкл бульона и инокулюма соответствующего микроорганизма без химического соединения. Аналогично, лунка, содержащая 50 мкл питательного бульона без химического соединения, была использована как неинокулированная лунка отрицательного контрольного образца (ОКО).

Планшеты для микроразведений перед инкубацией заклеивали прозрачной пленкой и запечатывали в полиэтиленовые пакеты для предотвращения высушивания. Планшеты инкубировали в термостате в течение 16–20 часов при 37°С. Для более равномерного нагревания планшеты были сложены в стопки не больше чем по пять штук.

Диапазоны микроразведений для определения МПК исследуемых соединений составили от 0.5 до 0.015625 мкг/мл.

Схема 1. Синтез новых модифицированных по С3-положению карбапенемов.

БЛАГОДАРНОСТИ

Анализы выполнены на оборудовании ЦКП “Химия” УфИХ УФИЦ РАН.

ФОНДОВАЯ ПОДДЕРЖКА

Работа выполнена при финансовой поддержке РНФ (проект № 15-13-00039-П).

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

Настоящая статья не содержит каких-либо исследований с использованием животных в качестве объектов и с участием людей в качестве объектов исследований.

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Список литературы

  1. Fossi F. // Clin. Infect. Dis. 2011. V. 52. P. 1138–1143.

  2. Worthington R.J., Melander C. // J. Org. Chem. 2013. V. 78. P. 4207–4213.

  3. Zhanel G.G., Wiebe R., Dilay L., Thomson K., Rubinstein E., Hoban D.J., Noreddin A.M., Karlowsky J.A. // Drugs. 2007. V. 67. P. 1027–1052.

  4. Papp-Wallace K.M., Endimiani A., Taracila M.A., Bonomo R.A. // Antimicrob. Agents Chemother. 2011. V. 55. P. 4943–4960.

  5. El-Gamal M.I., Kim S.J., Or Ch.-H. // J. Antibiot. 2011. V. 64. P. 687–688.

  6. Pieczykolan M., Furman B., Chimielewski M. // J. Antibiot. 2017. V. 70. P. 781–787.

  7. Tanaka Sh., Matsui H., Kasai M., Kunishiri K., Kakeya N., Shirahase H. // J. Antibiot. 2011. V. 64. P. 233–242.

  8. Bodner M.J., Phelan R.M., Towsend C.A. // Org. Lett. 2009. V. 11. P. 3606–3609.

  9. Soluch M., Grzeszczyk B., Staszewska-Krajewska O., Chimielewski M., Furman B. // J. Antibiot. 2016. V. 69. P. 164–168.

  10. Mori M., Oida S. // Chem. Pharm. Bull. 2000. V. 48. P. 126–130.

  11. Каталог фирмы Sigma–Aldrich (https://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/aldrich/h54409).

  12. Shih D.H., Baker F., Cama L., Christensen B.G. // Heterocycles. 1984. V. 21. P. 29–40.

  13. Berks A.H. // Tetrahedron. 1996. V. 52. P. 331–375.

  14. Sunagawa I., Matsumura H., Inoe T., Fukasawa M., Kato M. // J. Antibiot. 1990. V. 43. P. 519–532.

  15. Tewari N., Nizar H., Prakash B., Singh S.K., George V., Prasad M. // Org. Proc. Res. Dev. 2007. V. 11. P. 773–775.

  16. Nishino Y., Kobayashi M., Shinno T., Izumi K., Yonezawa H., Masui Y., Takahira M. // Org. Proc. Res. Dev. 2003. V. 7. P. 846–850.

Дополнительные материалы отсутствуют.