Биология моря, 2022, T. 48, № 1, стр. 53-61

Микотоксины в макроводорослях из пролива Великая Салма Кандалакшского залива Белого моря

Г. П. Кононенко 1*, А. А. Буркин 1, А. А. Георгиев 2, М. Л. Георгиева 23

1 Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко
123022 Москва, Россия

2 Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
119234 Москва, Россия

3 Научно-исследовательский институт по изысканию новых антибиотиков им. Г.Ф. Гаузе
119021 Москва, Россия

* E-mail: kononenkogp@mail.ru

Поступила в редакцию 28.12.2020
После доработки 16.05.2021
Принята к публикации 03.06.2021

Полный текст (PDF)

Аннотация

В бурых, красных и зеленых водорослях, собранных в типичных местообитаниях в Кандалакшском заливе Белого моря, с помощью иммуноферментного анализа определено содержание группы токсичных метаболитов, свойственных микроскопическим грибам родов Fusarium, Alternaria, Penicillium, Aspergillus и др. В бурых водорослях семейства Fucaceae и в Dictyosiphon foeniculaceus обнаружены все 16 анализированных микотоксинов, в Chordaria flagelliformis − 10 микотоксинов, а в Chorda filum, Laminaria digitata и Saccharina latissima найдены только эргоалкалоиды и стеригматоцистин в фоновых концентрациях. Среди красных водорослей микотоксины не обнаружены лишь у Coccotylus truncatus, у остальных видов число компонентов снижалось от 6 до 1 в ряду: Odonthalia dentata > Palmaria palmata = Devaleraea ramentacea > Phycodrys rubens = Ahnfeltia plicata > Porphyra spp. В зеленых водорослях Ulva spp. детектированы альтернариол, циклопиазоновая кислота и эргоалкалоиды, а в Cladophora rupestris – зеараленон и следы эргоалкалоидов.

Ключевые слова: макроводоросли, Ochrophyta, Rhodophyta, Chlorophyta, микотоксины, иммуноферментный анализ

Кандалакшский залив Белого моря многие десятилетия является местом проведения разносторонних биологических исследований побережья и водной среды. Пополняются сведения о видовом разнообразии, морфофизиологических особенностях и об участии в экобиоценотических взаимодействиях макроводорослей, массово заселяющих прибрежную зону (Максимова, Мюге, 2007; Иевлева, 2014; Човган, Малавенда, 2017; Вишняков, 2021). Важное направление исследований – изучение роли ассоциированных с макроводорослями сообществ микромицетов, среди которых к настоящему времени идентифицировано около 80 видов (Коновалова и др., 2012; Suryanarayanan, Johnson, 2014). Известно, что водоросли рода Fucus L. (Phaeophyceae, Fucales) являются хозяевами 12 видов морских грибов, 5 из них разлагают отмершие талломы, один вид – эндофит, а остальные виды − паразиты или пертофиты, обитающие в мертвых тканях (Zuccaro et al., 2004). Подробно изучен видовой комплекс грибов у F. serratus из Северного моря (Zuccaro et al., 2003, 2008); недавно в F. spiralis и Fucus sp., обитающих в эстуарии Риа-де-Авейру в Португалии, найдены представители новых таксонов Emericellopsis phycophila, Parasaroladium aestuarinum и P. fusiforme (Gonçalves et al., 2020). Нередко в составе микобиоты данных организмов присутствуют гифомицеты родов Penicillium Link, Aspergillus P. Micheli ex Haller, Alternaria Nees, Fusarium Link, Cladosporium Link и некоторых других, широко распространенных в разных средах обитания (Raghukumar, 2017).

В 2005–2007 гг. в структуре микобиоты бурых водорослей Fucus vesiculosus, Ascophyllum nodosum и Pelvetia canaliculata, относящихся к эдификаторам сообществ приливно-отливной зоны Кандалакшского залива (Возжинская, 1967), установлено видовое многообразие представителей родов Penicillium и Aspergillus, идентифицированы вид Alternaria alternata (Fr.) Keissler и изоляты Fusarium sp. (Бубнова, Киреев, 2009; Коновалова, Бубнова, 2011). Известно, что в растениях микроскопические грибы, вовлеченные в многообразие отношений от патогенеза и паразитизма до симбиоза (Schulz, Boyle, 2005), способны продуцировать широкий спектр токсичных для человека и животных низкомолекулярных вторичных метаболитов, в том числе полициклические соединения с О-гетероатомом – трихотецены (Т-2 токсин, диацетоксисцирпенол, дезоксиниваленол, роридин А), зеараленон, альтернариол, охратоксин А, цитринин, микофеноловую кислоту, афлатоксины, стеригматоцистин, а также N-содержащие гетероциклы – циклопиазоновую кислоту, эргоалкалоиды, вещества карбоциклического (эмодин, PR-токсин) и алициклического (фумонизины) рядов (Weidenbörner, 2001). Недавно при направленном обследовании комплекс этих микотоксинов обнаружен в талломах F. vesiculosus, A. nodosum и P. canaliculata (Буркин и др., 2021). Цель настоящей работы – изучение встречаемости и содержания микотоксинов в бурых, красных и зеленых водорослях, типичных для прибрежной зоны прол. Великая Салма Кандалакшского залива Белого моря.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА

Объектами исследования послужили 330 образцов талломов бурых (10 видов), красных (6 видов и Porphyra spp.) и зеленых (Cladophora rupestris, Ulva spp.) водорослей, отобранных в четырех географических точках побережья и островов прол. Великая Салма Кандалакшского залива Белого моря с координатами 66°30′ N, 33°08′ E; 66°31′ N, 33°11′ E; 66°32′ N, 33°11′ E и 66°30′ N, 33°22′ E в период c 12 по 20 августа в 2019 и 2020 гг. (табл. 1). Сборы спорофитов, различающихся по размерам, степени отмирания, обрастания и развития спороносных пятен, проводили без учета их возраста и дифференциации по структурным элементам. Целые талломы, взятые с субстрата в естественной среде обитания, сушили в токе воздуха при температуре 40–60°С и транспортировали, сохраняя в суховоздушном состоянии; затем измельчали в лабораторной мельнице. Для экстракции применяли смесь ацетонитрила и воды в соотношении 84 : 16 по объему при расходе 10 мл на 1 г навески. Экстракты после 10-кратного разбавления буферным раствором использовали для непрямого конкурентного иммуноферментного анализа (ИФА). Микотоксины – Т-2 токсин (Т-2), диацетоксисцирпенол (ДАС), дезоксиниваленол (ДОН), зеараленон (ЗЕН), фумонизины (ФУМ), альтернариол (АОЛ), охратоксин А (ОА), цитринин (ЦИТ), афлатоксин В1 (АВ1), стеригматоцистин (СТЕ), циклопиазоновую кислоту (ЦПК), микофеноловую кислоту (МФК), PR-токсин (PR), эмодин (ЭМО), роридин А (РОА) и эргоалкалоиды (ЭА) анализировали с помощью коммерческих и исследовательских аттестованных иммуноферментных тест-систем (ГОСТ 31653–2012). Нижние пределы количественных измерений соответствовали 85% уровню связывания антител и составляли 1 (АВ1, ЭА), 2 (Т-2, ОА, СТЕ), 5 (РОА), 10 (АОЛ, МФК, ЗЕН, ЭМО, ЦИТ, ЦПК), 40 (ДОН, ФУМ) и 100 (ДАС, PR) нг/г. Данные по выборкам, включающим от 5 до 33 образцов, обсчитаны в программе Microsoft Office Excel 2018 и представлены в виде минимального, максимального и среднего арифметического значений.

Таблица 1.  

Характеристика образцов бурых, красных и зеленых водорослей, отобранных в Кандалакшском заливе Белого моря

Семейство, вид, местообитание Количество образцов n (n1)
общее точка 1 точка 2 точка 3 точка 4
Отдел Ochrophyta
Chordaceae
Chorda filum (Linnaeus) Stackhouse, сублитораль 20 12 8
Chordariaceae
Chordaria flagelliformis (O.F. Müller) C. Agardh, сублитораль 8 8
Dictyosiphon foeniculaceus (Hudson) Greville, сублитораль 8 8
Fucaceae
Ascophyllum nodosum (Linnaeus) Le Jolis, средняя/нижняя литораль 18 (8) 7 11 (8)
Fucus distichus Linnaeus, нижняя литораль/сублитораль 19 (6) 9 (6) 10
Fucus serratus Linnaeus, сублитораль 20 (7) 8 12 (7)
Fucus vesiculosus Linnaeus, средняя/нижняя литораль 22 (12) 10 (3) 12 (9)
Pelvetia canaliculata (Linnaeus) Decaisne & Thuret, cупралитораль 33 (16) 16 (10) 12 (6) 5
Laminariaceae
Laminaria digitata (Hudson) J.V. Lamouroux, сублитораль 17 (9) 5 12 (9)
Saccharina latissima (Linnaeus) C.E. Lane, C. Mayes, Druehl & G.W. Saunders, cублитораль (5–7 м) 25 (5) 5 17 (5) 3
Отдел Rhodophyta
Porphyra spp., нижняя литораль/сублитораль 5 5
Ahnfeltia plicata (Hudson) Fries, сублитораль, 1–4 м 9 7 2
Phycodrys rubens (Linnaeus) Batters, сублитораль, 10–12 м 3 3
Odonthalia dentata (Linnaeus) Lyngbye, сублитораль, 8–10 м 11 3 8
Palmaria palmata (Linnaeus) F. Weber & D. Mohr, нижняя литораль/сублитораль 21 12 9
Devaleraea ramentacea (Linnaeus) Guiry, сублитораль 5 5
Coccotylus truncatus (Pallas) M.J. Wynne & J.N. Heine, сублитораль, 1–2 м, 8–10 м 8 8
Отдел Chlorophyta
Ulva spp., нижняя литораль/сублитораль 11 11
Cladophora rupestris (Linnaeus) Kützing, сублитораль 5 5

Примечание: n – число образцов, отобранных в 2019 и 2020 гг., n1 – число образцов, отобранных в 2020 г.; координаты точек: 1 – о-в Кривой (66°30′ N, 33°08′ E), 2 – о-в Крестовый (66°31′ N, 33°11′ E), 3 – п-ов Киндо (66°32′ N, 33°11′ E), 4– о-в Молочница (66°30′ N, 33°22′ E); “–” – образцы в данной точке не отбирали.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Талломы водорослей рода Fucus содержали полный набор анализированных микотоксинов (табл. 2). Уровни ДОН, ДАС, ФУМ, АОЛ, ЦПК, МФК, ЭА и PR достигали десятков тысяч нг/г, минимальные значения находились вблизи пределов определения методов; на немногих образцах F. vesiculosus и F. distichus провести измерения не удалось. Лишь содержание Т-2 и ОА составляло около 1000 нг/г и ниже. По усредненным показателям F. serratus характеризовался наибольшим содержанием большинства микотоксинов; F. distichus уступал по накоплению Т-2, ДОН, а также ЦПК, ЭМО, РОА и ЭА. Диапазоны варьирования концентрации составляли 1–2 порядка у F. serratus и F. distichus, а также 2–4 порядка у F. vesiculosus. У Ascophyllum nodosum анализируемые вещества обнаружены во всех образцах, при этом со сверхвысоким содержанием только ДАС и PR (более 10  000 нг/г), с наименьшим Т-2, ОА, АВ1 (ниже 1000 нг/г) и диапазоном варьирования содержания 1–2 порядка. У Pelvetia canaliculata концентрация токсинов была определена не во всех образцах, поскольку содержание анализируемых веществ в некоторых образцах было ниже предела определения. Тем не менее, концентрация ДАС и PR составляла 10 000 нг/г и более; измеренные значения, как правило, колебались в пределах двух порядков, а для ЭА и ФУМ – трех (табл. 2).

Таблица 2.  

Содержание (минимальное/среднее/максимальное, нг/г) и встречаемость (n+) микотоксинов в талломах бурых водорослей семейства Fucaceae

Микотоксин Fucus vesiculosus,
n = 22
Fucus serratus,
n = 20
Fucus distichus,
n = 19
Ascophyllum nodosum,
n = 18
Pelvetia canaliculata,
n = 33
Т-2 2/250/630 (19) 49/460/1020 (20) 8/110/400 (19) 12/83/245 (18) 3/16/38 (19)
ДОН 89/12280/50120
(18)
3090/31250/89120
(20)
230/3680/10000
(18)
630/2310/6440
(18)
52/490/1530 (24)
ДАС 410/19240/44670
(22)
15850/26740/39810
(20)
3980/17300/31680
(18)
740/10520/31620
(18)
230/5910/17780 (26)
ЗЕН 33/880/2755
(22)
795/2500/6310
(20)
155/890/3980
(18)
89/445/1480
(18)
13/180/1000
(27)
ФУМ 240/4430/11220
(19)
4170/13760/32730
(20)
525/6225/25120
(19)
685/1660/4070
(18)
66/2210/10000
(21)
АОЛ 35/7540/23990
(20)
3090/13410/53700
(20)
300/7130/31620
(19)
260/1260/4270
(18)
15/605/4320
(28)
ОА 5/180/455
(22)
325/605/960
(20)
33/265/1000
(19)
31/120/300
(18)
6/130/1000
(28)
ЦИТ 40/2065–6310
(22)
625/1960/3390
(20)
92/2660/7940
(19)
270/990/2630
(18)
26/200/1000
(28)
СТЕ 30/1310/4730
(22)
265/2370/4680
(20)
150/1045/4470
(19)
105/435/1820
(18)
12/92/475
(24)
АВ1 7/295/830
(22)
195/835/3160
(20)
26/215/500
(19)
16/90/380
(18)
1/24/190
(30)
ЦПК 120/3745/11480
(18)
2000/5260/12880
(20)
100/1480/10000
(19)
83/1010/3910
(18)
12/325/585
(18)
МФК 18/4335/19280
(22)
3760/9010/1620
(20)
675/3520/22390
(19)
260/1760/8910
(18)
10/360/1950
(22)
ЭА 6/6740/31620
(22)
3020/1490/28840
(20)
200/2300/10000
(19)
150/790/2880
(18)
1/140/2190
(25)
ЭМО 19/1820/5010
(18)
760/2630/5620
(20)
48/585/ 680
(19)
21/680/4360
(18)
12/115/795
(18)
PR 500/18760/28180
(18)
15070/27280/37150
(20)
1260/11370/26610
(19)
2510/12710/30200
(18)
300/4380/18620
(23)
PОA 16/1280/4170
(18)
250/1570/6460
(20)
68/360/1620
(19)
52/250/1150
(18)
18/77/230
(17)

Примечание. Расшифровка сокращенных названий метаболитов приведена в разделе “Материал и методика”; здесь и в табл. 3 и 4: n − общее число образцов, в скобках (n+) – число образцов, содержавших микотоксин.

В ламинариевых водорослях очень редко и в небольшом количестве регистрировали только ЭА: в двух образцах из 17 образцов Laminaria digitata на уровне 1 нг/г и в 12 образцах из 25 Saccharina latissima в концентрации от 1 до 5 нг/г; остальные микотоксины не были обнаружены (табл. 3). У Dictyosiphon foeniculaceus из семейства Chordariaceae выявлены все анализируемые метаболиты, однако их содержание в целом было ниже, чем в других бурых водорослях, за исключением ДАС и PR (табл. 3). У другого представителя этого семейства Chordaria flagelliformis микотоксины Т-2, ЗЕН, АВ1, ЭМО, PR и POA отсутствовали; АОЛ и ЭА определены во всех образцах в количестве 52 и 12 нг/г соответственно, а остальные вещества выявлены лишь у части образцов в концентрациях, близких к пределам определения. Образцы данной водоросли были представлены равным числом “чистых” и “обросших” талломов, на которых визуально были отмечены многочисленные эпибионты – водоросли и другие организмы. Редкие случаи выявления ДОН (75 нг/г), ЦИТ (49 нг/г), СТЕ (12 нг/г) и МФК (19 нг/г) приходились исключительно на “чистые” образцы, а образец с обрастаниями содержал ФУМ (280 нг/г). У Chorda filum семейства Chordaceae в единичных образцах найдены лишь СТЕ и ЭА в низких концентрациях (табл. 3).

Таблица 3.  

Содержание (минимальное/среднее/максимальное, нг/г) и встречаемость (n+) микотоксинов в талломах бурых водорослей семейств Laminariaceae, Chordariaceae и Chordaceae

Микотоксин Laminaria digitata,
n
= 17
Saccharina latissima,
n = 25
Dictyosiphon foeniculaceus,
n = 8
Chordaria flagelliformis,
n = 8
Chorda filum,
n
= 20
Т-2 12/16/23 (8)
ДОН 410/875/1350 (8) 76 (1)
ДАС 4120/6520/10230 (8) 150/190/250 (3)
ЗЕН 125/190/315 (8)
ФУМ 2000/2750/3430 (8) 280 (1)
АОЛ 320/635/1175 (8) 15/52/115 (8)
ОА 115/170/255 (8) 3/8/20 (7)
ЦИТ 94/285/560 (8) 31/49/98 (4)
СТЕ 64/140/270 (8) 11; 13 (2) 8; 10 (2)
АВ1 18/48/110 (8)
ЦПК 245/330/410 (8) 32/68/195 (5)
МФК 370/945/1995 (8) 16/19/25 (3)
ЭА 1; 1 (2) 1–2–5 (12) 105/385/1120 (8) 3/12/26 (8) 1/2/4 (5)
ЭМО 94/170/265 (8)
PR 3980/6660/12590 (8)
PОA 76/135/365 (8)

Примечание. Здесь и в табл. 4: “–“ – микотоксин не обнаружен.

Среди красных водорослей у Odonthalia dentata с частотой 64–100% определены СТЕ, ЦПК, МФК и ЭМО, реже выявляли ФУМ (36%) и еще реже − АОЛ (9%) (табл. 4). В Palmaria palmata, Devaleraea ramentacea и Phycodrys rubens редко содержались АОЛ, ЦПК и ЭА, в Ahnfeltia plicata – МФК и ЭМО, а в Porphyra spp. обнаружены ЭА в единичных образцах на фоновом уровне. В Coccotylus truncatus микотоксины не найдены.

Таблица 4.  

Содержание (минимальное/среднее/максимальное, нг/г) и встречаемость (n+) микотоксинов в талломах красных и зеленых водорослей

Микотоксин Отдел Rhodophyta Отдел Chlorophyta
Odonthalia dentate,
n = 11
Palmaria palmata,
n = 21
Devaleraea ramentacea,
n = 5
Phycodrys rubens,
n = 3
Ahnfeltia plicata,
n = 9
Porphyra spp.,
n = 5
Coccotylus truncates,
n = 8
Ulva spp.,
n = 11
Cladophora rupestris,
n = 5
Т-2
ДОН
ДАС
ЗЕН 12/12/13 (3)
ФУМ 120/175/250 (4)
АОЛ 19 (1) 23/28/36 (3) 18; 26 (2) 19 (1) 21/45/125 (5)
ОА
ЦИТ
СТЕ 16/23/42 (7)
АВ1
ЦПК 33/42/60 (9) 32/42/56 (4) 33 (1) 50/62/79 (6)
МФК 22/32/50 (10) 20 (1)
ЭА 1/4/12 (6) 3; 18 (2) 1/2/2 (3) 2 (1) 7/20/40 (5) 1; 1 (2)
ЭМО 10/25/83 (11) 10 (1)
PR
PОA

В части образцов зеленых водорослей Ulva spp. детектированы малые концентрации АОЛ, ЦПК и ЭА, а в Cladophora rupestris – ЗЕН и ЭА (табл. 4).

ОБСУЖДЕНИЕ

Недавно установлено, что лишайники и высшие сосудистые растения разных систематических групп из одного экотопа (и даже растущие в непосредственной близости) сохраняют специфические черты профиля токсичных метаболитов, свойственных свободно живущим микроскопическим грибам (Буркин, Кононенко, 2013; Кононенко, Буркин, 2018, 2019). Как показали полученные данные, аналогичное свойство характерно и для морских макрофитов.

Среди бурых водорослей у представителей рода Fucus при общем сходстве по компонентному составу наблюдались различия по частоте обнаружения отдельных микотоксинов. Для относящихся к этому же семейству видов Ascophyllum nodosum и Pelvetia canaliculata были характерны меньшие концентрации анализированных веществ, особенно низкие у P. canaliculata. Ранее было показано, что состав микобиоты фукусовых водорослей также зависит главным образом от таксономической принадлежности макрофитов (Бубнова, Киреев, 2009; Коновалова, Бубнова, 2011). Оба вида семейства Laminariaceae − Laminaria digitata и Saccharina latissima не содержали микотоксинов, лишь спорадически у них выявляли фоновые концентрации ЭА. Среди представителей семейства Chordariaceae полный набор микотоксинов отмечен у Dictyosiphon foeniculaceus, хотя и в меньших количествах, чем у фукусов, а у Chordata flagelliformis регулярно выявляли лишь АОЛ и ЭА. У Chorda filum, единственного доступного для исследования вида из семейства Chordaceae, микотоксины практически отсутствовали.

Красные водоросли также явно различались по числу выявленных компонентов (от 6 до 1) в ряду Odonthalia dentata > Palmaria palmata = Devaleraea ramentacea > Phycodrys rubens = Ahnfeltia plicata > > Porphyra spp.; у Coccotylus truncatus микотоксины не обнаружены. Среди Chlorophyta Ulva spp. содержали АОЛ, ЦПК и ЭА, а у Cladophora rupestris обнаружены лишь ЗЕН и следы ЭА.

Таким образом, всем трем группам водорослей свойственны таксономические различия по встречаемости и содержанию микотоксинов. Как и в обитающих на суше лишайниках и травянистых растениях (Буркин, Кононенко, 2013; Кононенко, Буркин, 2018, 2019), в данных водных организмах формируются своеобразные комплексы микотоксинов – от крайне насыщенных до слабых и малочисленных. По-видимому, каждый организм по-своему реализует свои ресурсы в установлении отношений с токсинообразующими микромицетами − либо через доступность для заселения, либо через создание особых условий для их существования.

Представители семейств Laminariaceae (L. digitata, S. latissima) и Chordaceae (C. filum) не содержали микотоксины, лишь иногда в макроводорослях выявляли фоновые концентрации ЭА или СТЕ. Возможно, рост токсигенных микромицетов в этих водорослях заторможен, блокирована их метаболическая активность или трансформированы биосинтетические пути, приводящие к метаболитам с измененной структурой. Проверка данных гипотез может стать интересным направлением научного поиска. Практически полное отсутствие микотоксинов подтверждено на трех сборах L. digitata и S. latissima в мае 2019 г. (Буркин и др., 2021), а также в августе 2019 и 2020 гг. В то же время подобное явление пока не обнаружено у высших растений и лишайников, что позволяет в будущем ориентировать исследования на большее разнообразие видов и другие ареалы обитания представителей семейств Laminariaceae и Chordaceae.

Микологи, изучающие макрофиты, отмечают, что слизь на поверхности водорослей может быть благоприятным субстратом для развития грибов, способствуя формированию специфических многокомпонентных микробных сообществ и изменению их видового состава (Бубнова, Киреев, 2009). В связи с этим интересен результат исследования образцов C. flagelliformis, когда более выраженная контаминация микотоксинами была отмечена в так называемых чистых талломах, а не в обросших.

Сведения, полученные нами для бурых водорослей F. vesiculosus, A. nodosum и P. canaliculata, и данные 2019 г. (Буркин и др., 2021) в целом совпадают. Однако объединение результатов за два года по нескольким точкам сбора привело к завышению показателей содержания микотоксинов, расширению диапазонов их концентраций и внесло ожидаемые коррективы в общую картину: меньшее, чем 100%, обнаружение метаболитов у F. vesiculosus и P. canaliculata. Варьирование количества микотоксинов у F. vesiculosus может быть обусловлено особенностями реакции вида на внешнее воздействие. Альтернативный путь адаптации на уровне мембранных липидов отмечен, в частности, при изучении устойчивости этого вида к химическому загрязнению и другим альтерирующим факторам – опреснению, отрицательной температуре и ультрафиолету (Немова, Шкляревич, 2009). В отличие от A. nodosum, произрастающего в относительно однородной среде, P. canaliculata обитает на камнях у приливной границы, с этим, предположительно, может быть связана изменчивость данного вида. Для более корректной оценки таких эффектов, вероятно, необходимы дальнейшие исследования с привлечением еще большей выборки анализируемых объектов.

Широкие диапазоны колебаний содержания микотоксинов, выявленные при обобщении данных по точкам сбора, могут быть свидетельством участия продуцентов этих метаболитов в реакциях водорослей на совокупность внешних факторов. Исследования, проведенные в Кандалакшском заливе в августе 2005–2007 гг., показали, что условия обитания фукусовых водорослей (гидродинамический режим, тип берега) оказывают влияние на состав микобиоты (Бубнова, Киреев, 2009; Коновалова, Бубнова, 2011). Более того, для микромицетов известен феномен смещения биосинтеза токсичных метаболитов при изменении температуры, кислотности и солености ростовых сред (Merhej et al., 2011; Geisen et al., 2018). Ранее при изучении трех видов фукусовых водорослей из одной точки коэффициент вариации значений для однотипных образцов, как правило, не превышал 20% (Буркин и др., 2021). Напротив, у P. canaliculata резкое колебание количества микотоксинов было отмечено и при точечном сборе (Буркин и др., 2021), что подтверждает связь данного вида с ее супралиторальным обитанием. С полной определенностью судить о причинах различий содержания метаболитов “грибного” происхождения у водорослей семейств Fucaceae, Chordaceae, Chordariaceae и Laminariaceae, как и о факторах, вызывающих у P. canaliculata и F. vesiculosus значительное варьирование их количеств в зависимости от точки сбора, пока не представляется возможным. Вероятно, полученные результаты отражают совместное влияние комплекса биогенных и антропогенных факторов.

Роль вторичных метаболитов грибов многообразна, во многих случаях не очевидна и только в последнее время становится предметом подробных исследований. Установлено, что в растениях они активно участвуют во внутренних метаболических процессах и причастны к механизмам формирования их отношений с сообществами других организмов, выполняя функции сигналов для конкуренции и поддержания ассоциативных связей (Brakhage, 2013; Knox, Keller, 2015; Macheleidt et al., 2016). Однако для выяснения вклада вторичных метаболитов грибов в реакции организма-хозяина на многообразие воздействий глобального и локального значения, несомненно, требуются дальнейшие исследования. Морские местообитания в этом отношении мало изучены (Suryanarayanan, Johnson, 2014; Zhang et al., 2016), и каждый новый научный факт расширяет возможности для понимания механизмов регуляции биоценотических взаимодействий.

Из всего многообразия обследованных бурых, красных и зеленых водорослей виды Fucus имели наибольшую нагрузку микотоксинами. Данная информация, впервые полученная на столь обширном материале, безусловно, важна для дальнейшего изучения этой проблемы. С научной и практической точек зрения чрезвычайно важно располагать подобными сведениями и о других водорослях акватории Белого моря, а также о высших растениях, повсеместно встречающихся в приморской полосе. Недавно подробно изучены ассоциированные сообщества микроорганизмов Zostera marina (см.: Ettinger, Eisen, 2020), которая служит основным нерестовым субстратом для беломорской сельди. Следует признать, что исследования роли микотоксинов, санитарно-значимых для водных экосистем, пока крайне малочисленны и посвящены в основном экотоксикологическим рискам от “эстрогенного фактора” зеараленона, появление которого в водоемах европейских стран и США связывают с близостью сельскохозяйственных угодий (Gromadzka et al., 2009; Maragos, 2012; Laranjeiro et al., 2018), и негативному действию фузариотоксинов на непромысловых рыб (Кононенко и др., 2021).

Сочетанная множественная контаминация микотоксинами, которая установлена для ряда объектов растительного происхождения, пока не получила определенной интерпретации специалистов, занимающихся вопросами безопасности пищевой и кормовой продукции, однако рассматривается в числе первоочередных проблем, требующих разносторонней профессиональной оценки. Морские макроводоросли издавна служат объектом промысла и аквакультуры, используются в пищу, а также в качестве лекарственного и технического сырья. В связи с этим оценивается их потенциал как источников перспективных фармакологических субстанций и сорбентов (Bogolitsyn et al., 2017). В нашей стране водоросли прибрежных зон и отходы водорослей от экстракционной переработки служат сырьем при производстве кормовой водорослевой муки и крупки (ГОСТ 22455–77), а штормовые выбросы традиционно используются местным населением как удобрение, поэтому микотоксикологическая оценка этого биоресурса c побережий других морей по-прежнему актуальна.

Список литературы

  1. Бубнова Е.Н., Киреев Я.В. Сообщества грибов на талломах бурых водорослей рода Fucus в Кандалакшском заливе Белого моря // Микология и фитопатология. 2009. Т. 43. Вып. 5. С. 388–397.

  2. Буркин А.А., Кононенко Г.П. Особенности накопления микотоксинов в лишайниках // Прикл. биохим. и микробиол. 2013. Т. 49. № 5. С. 522–530.

  3. Буркин А.А., Кононенко Г.П., Георгиев А.А., Георгиева М.Л. Токсичные метаболиты микромицетов в бурых водорослях семейств Fucaceae и Laminariaceae из Белого моря // Биол. моря. 2021. Т. 47. № 1. С. 40–44.

  4. Вишняков В.С. Vaucheria coronata Nordstedt, 1879 (Ochrophyta: Xanthophyceae) – новый для России вид водорослей из Белого моря // Биол. моря. 2021. Т. 47. № 2. С. 141–144.

  5. Возжинская В.Б. Изучение экологии и распределения водорослей в Кандалакшском заливе Белого моря // Океанология. 1967. Вып. 6. С. 1108−1118.

  6. ГОСТ 22455–77. Мука и крупка кормовая водорослевая. Технические условия.

  7. ГОСТ 31653–2012. Корма. Метод иммуноферментного определения микотоксинов.

  8. Иевлева Н.А. Водоросли-макрофиты островов Белого моря – Большой Соловецкий и Жижгинский // Актуальные вопр. соврем. науки. 2014. № 34. С. 8–19.

  9. Коновалова О.П., Бубнова Е.Н. Грибы на бурых водорослях Ascophyllum nodosum и Pelvetia canaliculata в Кандалакшском заливе Белого моря // Микология и фитопатология. 2011. Т. 45. Вып. 3. С. 240–248.

  10. Коновалова О.П., Бубнова Е.Н., Сидорова И.И. Биология Stigmidium ascophylli – гриба-симбионта фукусовых водорослей в Кандалакшском заливе Белого моря // Микология и фитопатология. 2012. Т. 46. Вып. 6. С. 353–360.

  11. Кононенко Г.П., Буркин А.А. Вторичные метаболиты микромицетов в растениях семейства Fabaceae рода Trifolium // Изв. РАН. Сер. биол. 2018. № 2. С. 150–157.

  12. Кононенко Г.П., Буркин А.А. Вторичные метаболиты микромицетов в растениях семейства Fabaceae родов Lathyrus, Vicia // Изв. РАН. Сер. биол. 2019. № 3. С. 229–235.

  13. Кононенко Г.П., Онищенко Д.А., Устюжанина М.И. Риски возникновения микотоксикозов рыб в условиях аквакультуры // Сельскохоз. биол. 2021. Т. 56. № 2. С. 261–278.

  14. Максимова О.В., Мюге Н.С. Новые для Белого моря формы фукоидов (Fucales, Phaeophyceae): морфология, экология, происхождение // Ботан. журн. 2007. Т. 92. № 7. С. 965–986.

  15. Немова Н.Н., Шкляревич Г.А. Экология водорослей-макрофитов карельской акватории Белого моря как объектов марикультуры // Уч. зап. Петрозавод. гос. ун-та. 2009. № 9. С. 17–27.

  16. Човган О.В., Малавенда С.С. Роль макрофитов как субстрата в формировании литоральных эпизооценозов Белого моря // Вестн. Мурман. гос. техн. ун-та. 2017. Т. 20. № 2. С. 390–400.

  17. Bogolitsyn K.G., Kaplitsin P.A., Parshina A.E. et al. Enterosorption properties of Arctic brown algae fiber // Russ. J. Appl. Chem. 2017. V. 90. № 11. P. 1819–1825.

  18. Brakhage A.A. Regulation of fungal secondary metabolism // Nature Reviews Microbiol. 2013. V. 11. № 1. P. 21–32.

  19. Ettinger C.L., Eisen J.A. Fungi, bacteria and oomycota opportunistically isolated from the seagrass, Zostera marina // PLoS One. 2020. V. 15(7): e0236135.

  20. Geisen R., Schmidt-Heydt M., Touhami N., Himmelsbach A. New aspects of ochratoxin A and citrinin biosynthesis in Penicillium // Curr. Opin. Food Sci. 2018. V. 23. P. 23–31.

  21. Gonçalves M.F.M., Vicente T.F.L., Esteves A.C., Alves A. Novel halotolerant species of Emericellopsis and Parasarocladium associated with macroalgae in an estuarine environment // Mycologia. 2020. V. 112. № 1. P. 154–171.

  22. Gromadzka K., Waśkiewicz A., Goliński P., Świetlik J. Occurrence of estrogenic mycotoxin – zearalenone in aqueous environmental samples with various NOM content // Water Res. 2009. V. 43. P. 1051–1059.

  23. Knox B.P., Keller N.P. Key players in the regulation of fungal secondary metabolism // Biosynthesis and Molecular genetics of Fungal Secondary Metabolites. 2015. V. 2. P. 13–28.

  24. Laranjeiro C.S.M., Da Silva L.J.G., Pereira A.M.P.T. et al. The mycoestrogen zearalenone in Portuguese flowing waters and its potential environmental impact // Mycotoxin Res. 2018. V. 34. P. 77–83.

  25. Macheleidt J., Mattern D.J., Fischer J. et al. Regulation and role of fungal secondary metabolites // Ann. Rev. Genet. 2016. V. 50. P. 371–392.

  26. Maragos C.M. Zearalenone occurrence in surface waters in central Illinois, USA // Food Addit. Contam.: Part B. 2012. V. 5. № 1. P. 55–64.

  27. Merhej J., Richard-Forget F., Barreau C. Regulation of trichothecene biosynthesis in Fusarium: recent advances and new insights // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2011. V. 91. P. 519–528.

  28. Raghukumar S. Fungi in Coastal and Oceanic Marine Ecosystems: Marine fungi. New York: Springer-Verlag. 2017. 383 p.

  29. Schulz B., Boyle C. The endophytic continuum // Mycological Research. 2005. V. 109. № 6. P. 661–686.

  30. Suryanarayanan T.S., Johnson J.A. Fungal endosymbionts of macroalgae: Need for enquiries into diversity and technological potential // Oceanography. 2014. V. 2. P. 119.

  31. Weidenbörner M. Encyclopedia of Food Mycotoxins. Berlin-Heidelberg: Springer-Verlag. 2001. 294 p.

  32. Zhang P., Li X., Wang B.G. Secondary metabolites from the marine algal-derived endophytic fungi: Chemical diversity and biological activity // Planta Medica. 2016. V. 82. № 09/10. P. 832–842.

  33. Zuccaro A., Schoch C.L., Shatafora J.W. et al. Detection and identification of fungi intimately associated with the brown seaweed Fucus serratus // Appl. Environ. Microbiol. 2008. V. 74. № 4. P. 931–941.

  34. Zuccaro A., Schulz B., Mitchell J.I. Molecular detection of ascomycetes associated with Fucus serratus // Mycol. Res. 2003. V. 107. P. 1451–1466.

  35. Zuccaro A., Summerbell R.C., Gams W. et al. A new Acremonium species associated with Fucus spp., and its affinity with a phylogenetically distinct marine Emericellopsis clade // Stud. Mycol. 2004. V. 50. P. 283–297.

Дополнительные материалы отсутствуют.