Биология внутренних вод, 2022, № 3, стр. 290-299
Влияние биогенных элементов на рост нитчатых цианобактерий – возбудителей “цветения” воды – и синтез ими метаболитов
Т. Б. Зайцева a, *, Н. Г. Медведева a, **
a Санкт-Петербургский научно-исследовательский центр экологической безопасности Российской академии наук
Санкт-Петербург, Россия
* E-mail: zaytseva.62@list.ru
** E-mail: ngmedvedeva@gmail.com
Поступила в редакцию 13.04.2021
После доработки 26.10.2021
Принята к публикации 02.11.2021
- EDN: UVZFXM
- DOI: 10.31857/S0320965222030196
Полные тексты статей выпуска доступны только авторизованным пользователям.
Аннотация
Повышение содержания в среде биогенных элементов приводило к интенсификации роста нитчатых цианобактерий Aphanizomenon flos-aquae и Planktothrix agardhii – возбудителей “цветения” воды – и снижению содержания в среде водорастворимых экзополисахаридов. При увеличении содержания азота и фосфора отмечено значительное повышение в среде содержания микроцистина dm-RR и одорирующего вещества бензотиазола, синтезируемых цианобактерией P. agardhii.
Полные тексты статей выпуска доступны только авторизованным пользователям.
Список литературы
Зайцева Т.Б., Медведева Н.Г. 2019. Молекулярные механизмы стрессового ответа цианобактерии Planktothrix agardhii на воздействие 4-трет-октилфенола // Микробиология. Т. 88. № 4. С. 417. https://doi.org/10.1134/S0026365619040141
Зайцева Т.Б., Мильман Б.Л., Луговкина Н.В. и др. 2015. Влияние октил- и нонилфенолов на рост, фотосинтетическую активность и токсинообразование цианобактерии Planktothrix agardhii // Гидробиол. журн. Т. 51. № 4. С. 40. https://doi.org/10.1615/HydrobJ.v51.i6.40
Корнева Л.Г., Глущенко Г.Ю. 2020. Состав и сезонная сукцессия фитопланктона Таганрогского залива Азовского моря и нижнего течения р. Дон в условиях изменяющегося климата // Биология внутр. вод. № 1. С. 18. https://doi.org/10.31857/S032096522001009X
Корнева Л.Г., Соловьева В.В., Жаковская З.А. и др. 2014. Фитопланктон и содержание цианотоксинов в Рыбинском, Горьковском и Чебоксарском водохранилищах в период аномально жаркого лета 2010 г. // Вода: химия и экология. № 8. С. 24.
Минеева Н.М. 2021. Оценка связи содержания хлорофилла и биогенных элементов в водохранилищах Верхней Волги // Вестник Томского государственного университета. Биология. № 53. С. 151. https://doi.org/10.17223/19988591/53/8).
Сиренко Л.А., Козицкая В.Н. 1988. Биологически активные вещества водорослей и качество воды. Киев: Наукова думка.
Bajpai R., Sharma N.K., Rai F.R. 2013. Physiological evidence indicates microcystin-LR to be a part of quantitative chemical defense system // J. Appl. Phycol. V. 25(5). P. 1575. https://doi.org/10.1007/s10811-013-9981-y
Chaffin J.D., Davis T.W., Smith D.J. et al. 2018. Interactions between nitrogen form, loading rate, and light intensity on Microcystis and Planktothrix growth and microcystin production // Harmful Algae. V. 73. P. 84. https://doi.org/10.1016/j.hal.2018.02.001
Churro C., Semedo-Aguiar A.P., Silva A.D. et al. 2020. A novel cyanobacterial geosmin producer, revising GeoA distribution and dispersion patterns in Bacteria // Sci. Rep. V. 10. P. 8679. https://doi.org/10.1038/s41598-020-64774-y
Facey J.A., Apte S.C., Simon M. et al. 2019. A Review of the Effect of Trace Metals on Freshwater Cyanobacterial Growth and Toxin Production // Toxins. V. 11. № 643. P. 1. https://doi.org/10.3390/toxins11110643
Fernández-Juárez V., Bennasar-Figueras A., Sureda-Gomila A. et al. 2020. Differential Effects of Varying Concentrations of Phosphorus, Iron, and Nitrogen in N2-Fixing Cyanobacteria // Front. Microbiol. V. 11. № 541 558. P. 19. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.541558
Gobler C.J. 2020. Climate Change and Harmful Algal Blooms: Insights and perspective // Harmful Algae. V. 91. № 101731. P. 4. https://doi.org/10.1016/j.hal.2019.101731
Herbert D., Phipps P.J., Stange R.E. 1971. Chapter III Chemical Analysis of Microbial Cells // Methods in Microbiology. V. 5. Part B. P. 209. https://doi.org/10.1016/S0580-9517(08)70641-X
Hernando M., Minaglia M.C.C., Malanga G. et al. 2018. Physiological responses and toxin production of Microcystis aeruginosa in short-term exposure to solar UV radiation // Photochem. Photobiol. Sci. V. 17. P. 69. https://doi.org/10.1039/C7PP00265C
Jakubowska N., Szeląg-Wasielewska E. 2015. Toxic Picoplanktonic Cyanobacteria – Review // Marine Drugs. V. 13(3). P. 1497. https://doi.org/10.3390/md13031497
Jankowiak J., Hattenrath-Lehmann T., Kramer B.J. et al. 2019. Deciphering the effects of nitrogen, phosphprous, and temperature on cyanobacterial bloom intensification, diversity, and toxicity in western Lake Erie // Limnol., Oceanogr. V. 9999. P. 1. https://doi.org/10.1002/lno.11120
Lee J., Kumar Rai P.K., Jeon Y.J. et al. 2017. The role of algae and cyanobacteria in the production and release of odorants in water // Environ. Pollut. V. 227. P. 252. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2017.04.058
Lee J.H., Lee K.L., Lee J.Y, Kim H.S. 2020. Effect of nitrate, ammonium and phosphate on the growth and microcystin production of Korean Microcystis species // J. Environ. Biol. V. 41. P. 812. https://doi.org/10.22438/jeb/41/4/MRN-1294
Loza V., Perona E., Mateo P. 2014. Specific responses to nitrogen and phosphorus enrichment in cyanobacteria: Factors influencing changes in species dominance along eutrophic gradients // Water Res. V. 48. P. 622. https://doi.org/10.1016/j.watres.2013.10.014
Oh H., Lee C.S., Srivastava A. et al. 2017. Effects of Environmental Factors on Cyanobacterial Production of Odorous Compounds: Geosmin and 2-Methylisoborneol // J. Microbiol. Biotechnol. V. 27 (7). P. 1316. https://doi.org/10.4014/jmb.1702.02069
Omidi A., Esterhuizen-Londt M., Pflugmacher S. 2018. Still challenging: the ecological function of the cyanobacterial toxin microcystin – What we know so far // Toxin Rev. V. 37(2). P. 87. https://doi.org/10.1080/15569543.2017.1326059
Park H.-J., Park M.-H., Sim Y.-B. et al. 2017. Geosmin Production Potential of a Cyanobacterium, Anabaena circinalis Isolated from Lake Paldang, Korea // Korean J. Ecol. Environ. V. 50(4). P. 363. https://doi.org/10.11614/KSL.2017.50.4.363
Pinheiro C., Azevedo J., Campos A. et al. 2013. Absence of negative allelopathic effects of cylindrospermopsin and microcystin-LR on selected marine and freshwater phytoplankton species // Hydrobiologia. V. 705 (1). P. 27. https://doi.org/10.1007/s10750-012-1372-x
Polyak Yu., Zaytseva T., Medvedeva N. 2013. Response of Toxic Cyanobacterium Microcystis aeruginos to Environmental Pollution // Water, Air, Soil Pollut. V. 224. № 1494. P. 14. https://doi.org/10.1007/s11270-013-1494-4
Prasad R., Prasad S. 2019. Algal Blooms and Phosphate Eutrophication of Inland Water Ecosystems with Special Reference to India // Int. J. Plant Environ. V. 5. № 1. P. 1. https://doi.org/10.18811/ijpen.v5i01.1
Rapala J., Sivonen K., Lyra C., Niemelä S.I. 1997. Variation of Microcystins, Cyanobacterial Hepatotoxins, in Anabaena spp. as a Function of Growth Stimuli // Appl. Environ. Microbiol. V. 63. № 6. P. 2206. https://doi.org/10.1128/AEM.63.6.2206-2212.1997
Rippka R., Deruelles J., Waterbury J.B. et al. 1979. Genetic assignments, strain histories and properties of pure cultures of cyanobacteria // J. Gen. Microbiol. V. 111. P. 1.
Rossi F., De Philippis R. 2016. Exocellular Polysaccharides in Microalgae and Cyanobacteria: Chemical Features, Role and Enzymes and Genes Involved in Their Biosynthesis // The Physiology of Microalgae. Switzerland: Springer International Publishing. P. 565. https://doi.org/10.1007/978-3-319-24945-2_21
Saadoun I.M., Schrader K.K., Blevins W.T. 2001. Environmental and nutritional factors affecting geosmin synthesis by Anabaena sp. // Water Res. V. 35. № 5. P. 1209. https://doi.org/10.1016/S0043-1354(00)00381-X
Shalaby E.A., Dubey N.K. 2018. Polysaccharides from cyanobacteria: respons to biotic and abiotic stress and their antiviral activity // Indian J. Marin. Sci. V. 47. № 1. P. 21.
Shaw G., Moore D., Garnett C. 2009. Eutrophication and algal blooms // Encyclopedia of life support system. V. II. Environmental and ecological chemistry. Oxford: Eolss Publishing. P. 298.
Sivonen K. 1990. Effects of Light, Temperature, Nitrate, Orthophosphate, and Bacteria on Growth of and Hepatotoxin Production by Oscillatoria agardhii Strains // Appl. Environ. Microbiol. V. 56. № 9. P. 2658.
Sivonen K., Jones G. 1999. Cyanobacterial toxins // Toxic cyanobacteria in water – a guide to their public health consequences, monitoring and management. London: E&FN Spon. P. 41.
Srivastava A., Ko S.-R., Ahn C.-Y. et al. 2016. Microcystin Biosynthesis and mcyA Expression in Geographically Distinct Microcystis Strains under Different Nitrogen, Phosphorus, and Boron Regimes // BioMed Research International. V. 2016. Article ID 5985987. https://doi.org/10.1155/2016/5985987
Tellez M.R., Schrader K.K., Kobaisy M. 2001. Volatile Components of the Cyanobacterium Oscillatoria perornata (Skuja) // J. Agric. Food Chem. V. 49. № 12. P. 5989. https://doi.org/10.1021/jf010722p
Tiwari O.N., Khangembam R., Shamjetshabam M. et al. 2015. Characterization and Optimization of Bioflocculant Exopolysaccharide Production by Cyanobacteria Nostoc sp. BTA97 and Anabaena sp. BTA990 in Culture Conditions // Appl. Biochem. Biotechnol. V. 176. № 7. P. 1950. https://doi.org/10.1007/s12010-015-1691-2
Wang S., Xiao J., Wan L. et al. 2018. Mutual dependence of nitrogen and phosphorus as key nutrient elements: one facilitates Dolichospermum flos-aquae to overcome the limitations of the other // Environ. Sci. Technol. V. 52. № 10. P. 5653. https://doi.org/10.1021/acs.est.7b04992
Zaytseva T.B., Medvedeva N.G., Mamontova V.N. 2015. Peculiarities of the Effect of Octyl- and Nonylphenols on the Growth and Development of Microalgae // Inland Water Biology. V. 8. № 4. P. 406. https://doi.org/10.1134/S1995082915040161
Zhan H.J., Lee C.C., Leigh J.A. 1991. Induction of the second exopolysaccharide (EPSb) in Rhizobium meliloti SU47 by low phosphate concentrations // Journal of Bacteriology. V. 173. № 22. P. 7391. https://doi.org/10.1128/jb.173.22.7391-7394.1991
Zhang T., Li L., Zheng L., Song L. 2017. Effects of nutritional factors on the geosmin production of Lyngbya kuetzingii UTEX 1547 (Oscillatoriales, Cyanobacteria) // Phycologia. V. 56. № 2. P. 221. https://doi.org/10.2216/16-98.1
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Биология внутренних вод