Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, 2020, T. 491, № 1, стр. 159-163
МЕХАНИЗМ ДЕЙСТВИЯ СТИМФОРТЕ НА АКТИВАЦИЮ ЗАЩИТЫ КЛЕТОК – МИШЕНЕЙ ВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ
Д. Г. Мальдов 1, *, П. Г. Дерябин 2, С. С. Григорян 2, Д. В. Мишин 2, В. Л. Андронова 2, Е. И. Исаева 2, Г. А. Галегов 2, А. В. Ильичев 1
1 ЗАО “СКАЙ ЛТД”
129301 Москва, Россия
2 ФГБУ “Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи” Минздрава РФ
123098 Москва, Россия
* E-mail: maldov-dg@yandex.ru
Поступила в редакцию 06.02.2020
После доработки 06.02.2020
Принята к публикации 06.02.2020
Аннотация
Стимфорте в широком диапазоне концентраций (15–225 мкг/мл) полностью подавляет цитопатогенную активность вируса гепатита С (ВГС) в клеточной культуре Vero-V. При введении препарата в культуру до заражения наиболее важную роль в подавлении инфекции играют интерфероны (ИФН). При введении Стимфорте после заражения механизм, по-видимому, иной. Активаторами продукции ИФН являются в основном (или исключительно) лиганды рецепторных комплексов TLR-4 и NOD-2 в составе препарата. Действие этих веществ, вероятно, синергично, как синергично в клетках Vero-V действие липополисахарида (ЛПС) и мурамилдипептида (MDP).
ВВЕДЕНИЕ
При изучении влияния иммуностимулирующего препарата “Стимфорте” на хроническую инфекцию у мышей, вызванную вирусом гепатита С (ВГС), было показано, что одним из основных факторов, обусловливающих его противовирусное действие, является защитная реакция клеток-мишеней, в частности, синтез интерферона-β (ИФН-β) [1]. Эффективное подавление репликации вируса в культуре клеток Vero-V в присутствии Стимфорте также связано главным образом с выработкой ИФН [2]. Однако, факторы, активирующие продукцию самих ИФН при использовании Стимфорте, до настоящего времени не были установлены.
В составе Стимфорте обнаружены лиганды TLR-4 [2] и, возможно, NOD-2, являющихся одними из основных стимуляторов продукции ИФН, действующих аддитивно [3, 4]. Однако, активация продукции ИФН и других цитокинов Стимфорте была показана только в клетках иммунной системы [5–7].
Целью данной работы было изучение действия Стимфорте на инфекцию ВГС в клетках Vero-V, не являющихся элементом иммунной системы, роль в этом процессе ИФН, и рецепторного аппарата, через который стимулируется усиление активности ИФН.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Эффекторы. Для позитивного воздействия на рецепторный аппарат клеток Vero-V использовали стандартные лиганды NOD-2 (мурамилдипептид [MDP, InvivoGen, США]) и TLR-4 (липополисахарид [ЛПС, МЕДГАМАЛ, Россия]), а также препарат Стимфорте (ЗАО “СКАЙ ЛТД”). Для ингибирования TLR-4 использовали антитела (Santa Cruz Biotechnology, США), специфические к патогенсвязывающему участку этого рецептора. Для подавления NOD-2 пути использовали ингибитор его молекулярного адаптера – GSK717 (Sigma-Aldrich, США).
Клетки и вирусы. Культура клеток почки зеленой мартышки Vero-V (вакцинный клон) получена из лаборатории культур тканей ФГБУ “Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи”. Для изучения инфекционной активности ВГС и постановки реакции биологической нейтрализации использовали одно- или двухдневные культуры клеток.
Высокопродуктивный вариант вируса гепатита С (ВГС) получен нами, как описано ранее [8].
Оценка противовирусной активности препарата “Стимфорте”. Культуральную среду с препаратом в известной концентрации вносили в лунки планшета со сформировавшимся клеточным монослоем в момент заражения клеток, за 12 ч до или через 12 ч после заражения ВГС (множественность инфицирования (МИ) 0.1 и 0.01 ТЦИД50/мл). Учет результатов проводили, когда в контрольных не обработанных препаратом культурах происходила тотальная гибель клеток вследствие вирусной инфекции.
Биологическую активность интерферона (ИФН) в пробах, полученных после активации клеток Vero-V препаратом Стимфорте определяли в соответствии с ранее описанной методикой по подавлению репликации вируса везикулярного стоматита в клетках Vero-V [1].
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
При использовании для заражения клеток Vero-V ВГС в дозе, обеспечивающей МИ 0.1 ТЦИД50/кл, были получены следующие результаты (табл. 1). Стимфорте в концентрациях от 14 мкг/мл до 223 мкг/мл полностью защищал клетки от гибели не зависимо от времени внесения (за 12 ч до заражения, одновременно с заражением вирусом или через 12 ч после заражения). При концентрации 446 мкг/мл наблюдалась 50% гибель клеток в условиях, когда Стимфорте вводили одновременно с заражением или при заражении через 12 ч после введения препарата, но, если препарат вносили через 12 ч после заражения, все клетки выживали. В лунках без препарата (контроль) все клетки погибли в результате цитопатического действия вируса. При заражении клеток до введения препарата гибели клеток не наблюдалось при всех исследованных концентрациях Стимфорте.
Таблица 1.
Множественность инфицирования | Время внесения препарата | Концентрация препарата (мкг/мл)/ количество погибших клеток (%) | |||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
893 | 446 | 223 | 111 | 55 | 28 | 14 | 0 | ||
0.1 ТЦИД50 | за 12 ч до заражения | 100 | 50 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 100 |
в момент заражения | 100 | 50 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 100 | |
через 12 ч после заражения | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 100 | |
0.01 ТЦИД50 | за 12 ч до заражения | 100 | 50 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 100 |
в момент заражения | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 100 | |
через 12 ч после заражения | 100 | 50 | 0 | 0 | 0 | 0 | 100 | 100 |
При десятикратном снижении заражающей дозы ВГС (0.01 ТЦИД50/кл), если клетки заражали через 12 ч после добавления препарата, результат не отличался от результата, полученного при МИ 0.1 ТЦИД50/кл. Такие же результаты наблюдали при заражении клеток за 12 ч до введения Стимфорте. При одновременном с заражением введении Стимфорте в интервале концентраций от 14 до 893 мкг/лунку все клетки выжили.
Одним из наиболее вероятных механизмов ингибирующего действия Стимфорте на репродукцию ВГС является стимуляция продукции ИФН. В соответствии с результатами, представленными на рис. 1, внесение Стимфорте в культуральную среду в дозах 27–55 мкг/мл за 12 ч или одновременно с заражением ВГС (МИ 0.1 или 0.01 ТЦИД50/кл) индуцирует синтез ИФН дозозависимым образом и обеспечивает 100% защиту клеток, т.е. полностью предотвращает репродукцию ВГС. В высоких концентрациях 446–893 мкг/мл Стимфорте не активирует продукцию ИФН, что может быть обусловлено особенностью его действия, описываемого колоколообразной кривой зависимости активности препарата от концентрации, или его токсичностью в высоких концентрациях. Вместе с тем, обращает на себя внимание тот факт, что препарат в низкой концентрации 14 мкг/мл не стимулирует синтез ИФН в детектируемых количествах, но оказывает 100% защитное действие, как и в дозах, вызывающих синтез ИФН. Подобный эффект выявляется также при внесении Стимфорте в дозах до 55 мкг/мл через 12 ч после заражения, т.е. продукция ИФН не индуцируется, но обеспечивается 100% защита инфицированных клеток от гибели. Следовательно, индукция ИФН не может быть единственным путем воздействия на репродукцию ВГС in vitro.
Ранее нами было показано, что иммуностимулирующая активность Стимфорте обусловлена взаимодействием препарата с ТLR4 рецепторами [2]. Для их выявления в клетках Vero-V мы использовали в качестве лиганда ТLR4-рецепторов ЛПС и в качестве их блокатора антиТLR4–антитела. Для доказательства существования NOD-2 рецепторов в этих клетках использовали MDP и ингибитор молекулярного адаптера пути NOD-2 рецептора – GSK-717. Действие этих эффекторов оценивали через 24 и 72 ч после введения по активности ИФН. Использование данного метода обусловлено природой клеток Vero-V – иммортализированных фибробластов почек зеленой мартышки, в которых невозможно провести измерение продукции ИФН с помощью иммуноферментного анализа из-за видоспецифичности этих цитокинов.
Из данных, приведенных в табл. 2, видно, что активирующее действие ЛПС в концентрации 100 нг/мл на продукции ИФН было на грани достоверности (в разведении 1/2 через 24 ч) и в 4 раза слабее, чем эффект MDP (100 нг/мл). Однако, при сочетанном использовании ЛПС в той же концентрации с MDP в неактивной концентрации 30 нг/мл наблюдается достоверное действие на продукцию активных ИФН через 72 ч (разведение 1/8), хотя через 24 ч влияние на продукцию ИФН еще не обнаруживалось. При снижении концентрации ЛПС до 30 нг/мл комбинация потеряла активность. Таким образом, очевидно, что клетки Vero-V сенситивны как к MDP, так и к ЛПС, а ответ на одновременное введение этих веществ аддитивен или даже синергичен.
Таблица 2.
Препараты, действующие на клетки Vero-V | Титр интерферона в клетках, ед/мл* | |
---|---|---|
24 ч | 72 ч | |
Контроль клеток | <2 | <2 |
MDP (100 нг/мл) | 8** | <2 |
Стимфорте (30 мкг/мл) | <2 | <2 |
Стимфорте (50 мкг/мл) | 16** | 8** |
Стимфорте (100 мкг/мл) | 16** | 4** |
АнтиТLR4-антитела (10мкг/мл) + Стимфорте (50 мкг/мл) | <2 | <2 |
Стимфорте (50 мкг/мл) + GSK-717 (50 нM/мл) | <2 | <2 |
Стимфорте (50 мкг/мл) + GSK-717 (1 мкМ/мл) | <2 | <2 |
MDP (100 нг/мл) + GSK-717 (200 нМ/мл) | <2 | 2 |
ЛПС 100 нг/мл | 2 | <2 |
ЛПС 30 нг/мл | <2 | <2 |
ЛПС 30 нг/мл + 30 мкг/мл Стимфорте | 4** | <2 |
ЛПС 30 нм/мл + MDP 30 нг/мл | <2 | <2 |
Стимфорте 30 мкг/мл + MDP 30 нг/мл | 16** | 2 |
ЛПС 100 нг/мл + MDP 30 нг/мл | <2 | 8** |
В концентрациях 50 и 100 мкг/мл Стимфорте максимально эффективно усиливал продукцию ИФН через 24 ч, но через 72 ч активность препарата в концентрации 100 мкг/мл снижалась более значительно, что согласуется с полученными нами ранее результатами – стимулирующая активность Стимфорте описывается колоколообразной концентрационной кривой [9, 10].
В концентрации 30 мкг/мл Стимфорте не активен. Но при добавлении ЛПС или MDP (по 30 нг/мл) активность комбинации через 24 ч возрастает до титра 1/4 и 1/16, соответственно, что доказывает аддитивный характер взаимодействия Стимфорте с этими веществами.
Как видно из табл. 2, продукция ИФН полностью блокируется и антителами к ТLR-4 и ингибитором GSK-717, и стимулируется MDP и Стимфорте. Таким образом, активация продукции ИФН под действием Стимфорте является результатом его воздействия на рецепторы ТLR-4 и NOD-2.
К сожалению, низкий титр ИФН и отсутствие его продукции при использовании Стимфорте в дозе 30 мкг/мл (крутая концентрационная кривая) не позволяют в должной мере оценить эффекты воздействия на каждый из рецепторов Vero-V количественно. Тем не менее полученные результаты позволяют предположить пути воздействия Стимфорте на продукцию ИФН. Так как ЛПС усиливает продукцию ИФН, а антитела к TLR-4 ее блокируют, то, следовательно, в клетках Vero-V есть TLR4-рецепторы. MDP также вызывает усиленную продукцию ИФН, а GSK-717 ее ингибирует, что достоверно указывает на наличие NOD2- рецепторов в этих клетках.
В литературе имеются экспериментально подтвержденные доказательства синергизма между опосредованной TLR-2, TLR-4 и NOD2 продукцией цитокинов [11–13]. Кроме того, NOD2 и TLR4 аддитивно воздействуют на продукцию ИЛ-6, TNF-α, CXCL1 и CCL2 в нейтрофилах после стимуляции пептидогликаном, MDP и агонистами TLR (Pam3, CSK4 и ЛПС) [14]. Как TLR-4, так и NOD2 являются активаторами NF-κB и MAPK пути и каждый из этих рецепторов имеет свой путь для эпигенетических реакций защиты клеток от патогенов, которые в одних случаях конкурируют, а в других их действие аддитивно [15].
Таким образом, инфекция ВГС в клетках Vero-V подавляется Стимфорте при его предварительном введении посредством стимуляции продукции ИФН, которая осуществляется через рецепторы ТLR-4 и NOD-2. Этот же механизм, по-видимому, может быть основным при подавлении хронической инфекции ВГС у мышей [1].
ВЫВОДЫ
1. Клетки Vero-V содержат как ТLR-4 так и NOD-2 рецепторы подобно клеткам иммунной системы.
2. Стимфорте действует на репликацию ВГС в культуре клеток Vero-V, подавляя продукцию вируса и способствуя выживанию клеток.
3. Действие препарата частично обусловлено стимулированием продукции ИФН.
4. Стимулирование продукции ИФН при взаимодействии Стимфорте с клетками Vero-V происходит в основном или исключительно через рецепторы NOD-2 и TLR-4.
Список литературы
Мальдов Д.Г., Андронова В.Л., Григорян С.С. и др. // ДАН. 2017. Т. 477. № 2. С. 257–260.
Мальдов Д.Г., Чирвон Е.А., Ильичев А.В., и др. // Иммунология. 2011. № 4. С. 195–200.
Colonna M. // Eur. J. Immunol. 2007. V. 37. № 2. P. 306–309.
Tötemeyer S., Sheppard M., Lloyd A. et al. // J. Immunol. 2006. V. 176. № 8. P. 4804–4810.
Cui J., Chen Y., Wang H.Y. et al. // Hum. Vaccin. Immunother. 2014. V. 10. № 11. P. 3270–3285.
Cui J., Zhu L., Xia X. et al. // Cell. 2010. V. 141. № 3. P. 483–496.
Benko S., Magalhaes J.G., Philpott D.J., et al. // J. Immunol. 2010. V. 185. № 3. P. 1681–1691.
Дерябин П.Г., Львов Д.К. // ДАН. 1998. Т. 358. № 5. С. 685–687.
Мальдов Д.Г., Бельков А.П., Ильичев А.В и др. // Иммунология. 2009. Т. 30. № 2. С. 96–97.
Мальдов Д.Г., Григорян С.С., Галегов Г.А. и др. // Иммунология. 2011. Т. 32. № 5. С. 250–256.
Farzi A., Reichmann F., Meinitzer A. et al. // Brain Behav. Immun. 2015. V. 44. P. 106–120.
Fritz J.H., Girardin S.E., Fitting C., et al. // Eur. J. Immunol. 2005. V. 35. № 8. P. 2459–2470.
Tada H., Aiba S., Shibata K., et al. // Infect. Immun. 2005. V. 73. № 12. P. 7967–7976.
Netea M.G., Ferwerda G., de Jong D.J., et al. // J. Immunol. 2005. V. 174. № 10. P. 6518–6523.
Jeong Y.J., Kang M.J., Lee S.J., et al. // Immunology. 2014. V. 143. № 2. P. 269–276.
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Доклады Российской академии наук. Науки о жизни