Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, 2021, T. 501, № 1, стр. 522-527

НОВЫЕ МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ КРИТЕРИИ ПРОФИЛЯ УСТОЙЧИВОСТИ ПРИ МОДЕЛИРОВАНИИ ПОСТТРАВМАТИЧЕСКОГО СТРЕССОВОГО РАССТРОЙСТВА – ТРИГГЕРА ДИСФУНКЦИИ НАДПОЧЕЧНИКОВ

М. В. Кондашевская 1*, М. В. Комелькова 23, В. Э. Цейликман 2, О. Б. Цейликман 23, К. А. Артемьева 1, В. В. Алексанкина 1, М. Н. Болтовская 1, А. П. Сарапульцев 24, П. Н. Попков 5, М. В. Черешнева 4, академик РАН В. А. Черешнев 4

1 ФГБНУ “Научно-исследовательский институт морфологии человека им. Академика А.П. Авцына”
Москва, Россия

2 ФГАОУ ВО “Южно-Уральский государственный университет (Национальный исследовательский университет)”
Челябинск, Россия

3 ФГБОУ ВО “Челябинский государственный университет”
Челябинск, Россия

4 ФГБНУ “Институт иммунологии и физиологии УрОРАН”
Екатеринбург, Россия

5 ФГБОУ ВО “Южно-Уральский государственный медицинский университет” Минздрава России
Челябинск, Россия

* E-mail: marivladiko@mail.ru

Поступила в редакцию 02.07.2021
После доработки 21.07.2021
Принята к публикации 21.07.2021

Полный текст (PDF)

Аннотация

Впервые при моделировании посттравматического стрессового расстройства (ПТСР) охарактеризовано морфофункциональное состояние надпочечников устойчивых и неустойчивых к предаторному стрессу (страх грызунов перед хищником) крыс Вистар. Несмотря на выраженные признаки дисфункции адреналовых желёз у обоих фенотипов, у устойчивых животных выявлены утолщение камбиальной зоны и высокие значения индекса функциональной активности стволовых клеток этой зоны, что свидетельствует о продуктивной адаптации. Приоритетными являются данные о непосредственной связи между снижением уровня кортикостерона и тестостерона с надпочечниковой недостаточностью при моделировании ПТСР. Полученные в работе сведения позволяют рассматривать стволовые клетки надпочечников в качестве потенциальных терапевтических мишеней.

Ключевые слова: крысы Вистар, посттравматическое стрессовое расстройство, морфофункциональная характеристика надпочечников, стволовые клетки надпочечников, устойчивость к стрессу

Опасное заболевание, провоцируемое вирусами из семейства коронавирусов, первоначально вспыхнувшее в Китае в конце 2019 г., быстро распространилось по всем континентам. В январе 2020 г. Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) дала официальное название коронавирусу – COVID-19, а в марте была объявлена пандемия. Пандемии и эпидемии всегда имеют массу негативных последствий социально-политического, экономического, социально-психологического и ситуационного характера, поэтому они связаны с неблагоприятным влиянием на психическое здоровье населения. Уже в середине 2020 г. появились многочисленные свидетельства о том, что во всех странах у населения обнаружился высокий процент симптоматики посттравматического стрессового расстройства (ПТСР). Характерными особенностями ПТСР являются, во-первых, отсроченное проявление симптомов и, во-вторых – развитие заболевания не у всех стрессированных индивидуумов [1]. Так, например, по сведениям эпидемиологических исследований, в Китае среди 2450 студентов колледжей, помещенных на домашний карантин, распространенность ПТСР и депрессии составила 2.7 и 9.0% соответственно [2]. Таким образом, в настоящее время существует острая необходимость активно исследовать механизмы формирования адаптивного ответа при ПТСР. В настоящее время в приоритете работы, рассматривающие в деталях отклик организма восприимчивых и устойчивых к развитию ПТСР индивидов, или особей. Определение молекулярной, клеточной и морфофункциональной основы индивидуальных различий в реакции на стресс имеет решающее значение для понимания патофизиологии и лечения ПТСР [3, 4]. До сих пор остается не вполне ясным морфофункциональное состояние надпочечников (адреналовых желёз) – существенного источника гормонов-регуляторов многих ключевых процессов в организме млекопитающих и важного элемента гипоталамо-гипофизарно-адреналовой системы. Отсутствуют сведения о сравнении надпочечников неустойчивых и устойчивых к стрессу особей.

Цель исследования – при моделировании посттравматического стрессового расстройства определить интегральные показатели морфофункционального состояния надпочечников крыс Вистар, произвести сравнение показателей устойчивых и неустойчивых к стрессу особей.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Работа проведена в осенне-зимний период на половозрелых крысах-самцах Вистар (n = 60) с исходной массой тела 180–200 г. Животных содержали по 10 особей. ПТСР воспроизводили, используя общепризнанную модель предаторного стресса – эволюционно закрепленного, избирательного страха грызунов перед хищником и его запахом, разработанную Hagit Cohen и Joseph Zohar и усовершенствованную Vadim Tseilikman и соавт. [5, 6]. В работах Vera Voznessenskaya и соавт., а также Raimund Apfelbach и соавт. показано, что воздействие запаха хищника настолько значительно для грызунов, что активирует не только поведенческий рефлекс – бегство, но и абортивную реакцию у беременных самок [79]. Были сформированы 2 группы: 1-я – интактные крысы (n = 20); 2-я – животные, подвергаемые предаторному стрессу (кошачья моча) по 10 мин в течение 10 сут с последующим содержанием в течение 14 сут в обычных условиях (ПТСР) (n = 40). Все экспериментальные процедуры проводили согласно требованиям “Правил проведения работ с использованием экспериментальных животных” (1984) и в соответствии с директивой Европейского парламента 2010/63/EU“О защите животных, используемых в экспериментальных целях” (от 22.09.2010).

Для выявления поведенческих проявлений развития ПТСР, животных в конце эксперимента тестировали в течение 10 мин (600 с) в “Приподнятом крестообразном лабиринте” (ПКЛ). Вычисляли   разработанный H. Cohen и соавт. индекс тревожности (ИТ), по формуле: ИТ = 1 – – [(ВОР/ВТ + ЧЗОР/ОЧЗ)/2], где ВОР – время нахождения в открытых рукавах ПКЛ, ВТ – время тестирования в с, ЧЗОР – число заходов в открытые рукава, ОЧЗ – общее число заходов в рукава [10].

Крыс выводили из эксперимента передозировкой золетила. Левые надпочечники фиксировали в жидкости Буэна, заливали в парафин. Гистологические экваториальные срезы надпочечников толщиной 4–5 мкм окрашивали гематоксилином и эозином. При помощи морфометрической программы AxioVision на микрофотографиях, полученных с помощью микроскопа Axioplan 2 imaging, производили на каждом срезе 10 измерений толщины функциональных зон коркового вещества и диаметра кариона эндокриноцитов. Рассчитывали индекс функциональной активности адренокортикоцитов каждой зоны по формуле: ИФА = (ТФЗ * СДК)/100, где ТФЗ – толщина функциональной зоны, СДК – средний диаметр кариона, рассчитанный по формуле: $\sqrt {{\text{Макс}}} *{\text{Мин}}$ [11].

В сыворотке крови крыс методом иммуноферментного анализа (ИФА) определяли уровень кортикостерона “IBL” (Германия) и тестостерона DBC (Канада), используя иммуноферментный анализатор ANTHOS (Австрия).

Сравнение экспериментальных групп производили при помощи ANOVA, критерия Краскела–Уоллиса для множественных сравнений, U-критерия Манна–Уитни для парных сравнений. Результаты выражали как Me (Qн; Qв) – медиана, нижний и верхний квартили. Различия считали статистически значимыми при p ≤ 0.05.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ОБСУЖДЕНИЕ

Общеизвестно, что ПТСР развивается далеко не у всех субъектов (людей и животных), подвергавшихся одинаковому стрессу [1, 2]. При тестировании крыс в ПКЛ установлено, что по сравнению с контрольными и устойчивыми к стрессу крысами, неустойчивые особи характеризовались более выраженным анксиогенным эффектом, проявляющимся в снижении времени нахождения в открытых рукавах ПКЛ, числа заходов в них и локомоторной активности (табл. 1). Показатели устойчивых к стрессу особей отличались от контрольных лишь по времени нахождения в открытых рукавах ПКЛ, которые, так же, как и у неустойчивых крыс, уменьшались, однако были в 5.6 раза выше, чем у низкоустойчивых особей. Правомерность фенотипирования популяции, в дополнение к вышеуказанным показателям, подтверждалась интегральным параметром – индексом тревожности, который был достоверно значимо повышен у неустойчивых к стрессу животных, тогда как значения этого параметра устойчивых особей не отличались от контроля (табл. 1).

Таблица 1.

Показатели поведения крыс Вистар в “Приподнятом крестообразном лабиринте”, уровня тестостерона и кортикостерона в сыворотке крови при моделировании посттравматического стрессового расстройства Me (Qн; Qв)

Показатель Контроль (1) Высокоустойчивые к стрессу крысы (2) Низкоустойчивые к стрессу крысы (3)
Время нахождения в открытых рукавах, с 178.6 (136.3; 228.8) 106.7*# (55.1; 165.1)
р1–2 = 0.0029
р2–3 = 0.0001
19.2 (67.1; 38.3)*#
р1–3 = 0.0001
Число заходов в открытые рукава, усл. ед. 4.9(2.8; 9.8) 5.2 (3.9; 6.3)#
р1–2 = 0.7103
р2–3 =0.0001
1.7 (1.0; 2.7)*#
р1–3 = 0.0011
Общее число заходов в рукава, усл. ед. 16.2(11.1; 22.8) 17.5 (15.7; 25.1)#
р1–2 = 0.5416
р2–3 = 0.0001
8.6 (4.2; 12.1)*#
р1–3 = 0.0004
Индекс тревожности, усл. ед. 0.72(0.64; 0.81) 0.72 (0.64; 0.79)#
р1–2 = 0.9250
р2–3 = 0.0007
0.91 (0.67; 0.75)*#
р1–3 = 0.0001
Тестостерон (Т), нмоль/л 14.3(8.5; 22.9) 8.7 (5.6; 13.7)*#
р1–2 = 0.0401
р2–3 = 0.0014
4.1 (2.8; 4.8)*#
р1–3 = 0.0004
Кортикостерон, (Кор) нмоль/л 436.5 (309.9; 524.9) 275.5*# (194.3; 343.2)
р1–2 = 0.0004
р2–3 = 0.0014
166.8*# (116.2; 233.2)
р1–3 = 0.0004
Отношение Т/Кор 0.039 (0.021; 0.065) 0.035# (0.024; 0.051)
р1–2 = 0.7192
р2–3 = 0.0235
0.025*# (0.018; 0.041)
р1–3 = 0.0412

Примечание: * – достоверно значимые отличия от контроля,

# – достоверно значимые отличия при сравнении опытных групп.

Сравнение содержания кортикостерона и тестостерона в сыворотке крови продемонстрировало снижение содержания определяемых гормонов у всех стрессированных крыс (табл. 1). Снижение уровня кортикостерона является общепризнанным показателем развития ПТСР-подобного состояния [6, 10, 12, 13]. Тем не менее значения содержания кортикостерона у высокоустойчивых крыс были достоверно значимо выше, чем у неустойчивых (табл. 1). В нашем предыдущем эксперименте, было установлено, что еще до моделирования стресса крысы, оказавшиеся впоследствии неустойчивыми к стрессу, характеризовались более высоким уровнем кортикостерона. Удалось определить, что у устойчивых к стрессу животных преобладает цитохром P4503A-зависимый метаболизм глюкокортикоидов, а у неустойчивых – зависящий от 11β-гидроксистероиддегидрогеназы типа 2 [13].

Уровень тестостерона уязвимых особей оказался наиболее низким (табл. 1). Аналогичное снижение уровня тестостерона отмечено у комбатантов при диагностировании выраженного ПТСР [14, 15]. Кроме того, снижение уровня тестостерона – основного анаболического гормона, обычно связано с риском развития ишемической болезни сердца и другими заболеваниями сердечно-сосудистой системы [16, 17].

Необходимо акцентировать внимание на снижении интегрального показателя отношения уровня тестостерона к уровню кортикостерона у неустойчивых к стрессу животных (табл. 1). Последнее свидетельствует о преобладании у неустойчивых крыс катаболических процессов над анаболическими, что при дополнительных факторах риска чревато сбоем работы функциональных систем. В то же время этот показатель у высокоустойчивых особей не отличался от контроля (табл. 1).

Анализируя морфологическое состояние коркового вещества надпочечников, которое отражает статус гипоталамо-гипофизарно-адреналовой системы, установлено, что после развития ПТСР-подобного состояния у всех стрессированных крыс отмечено уменьшение толщины коркового слоя надпочечников на 46.1–44.3%, происходящее в основном за счет сокращения толщины пучковой на 48.1–50.2% и сетчатой на 43.9–50.1% зон (табл. 2). При этом интегральный показатель – индекс функциональной активности клеток (ИФАК) этих зон значительно снижался при моделировании ПТСР (табл. 2). В то же время ИФАК пучковой зоны устойчивых крыс был достоверно значимо выше, чем уязвимых, тогда как значения ИФАК сетчатой зоны этих особей были сходны (табл. 2). Тем не менее более масштабные морфофункциональные трансформации наблюдались у неустойчивых к стрессу животных, у которых, в дополнение к указанным изменениям, обнаружено более существенное по сравнению с контролем и устойчивыми крысами уменьшение толщины клубочковой зоны – на 18.2 и 14.4% соответственно, сопровождающееся наименьшими показателями ИФАК этой зоны (табл. 2). Тогда как показатели ИФАК клубочковой зоны устойчивых крыс были самыми высокими, превышая контрольные значения на 24 и 29.2% – значения неустойчивых к стрессу особей (табл. 2).

Таблица 2.

Показатели морфофункционального состояния коры надпочечников устойчивых и неустойчивых к стрессу крыс Вистар при моделировании посттравматического стрессового расстройства Me (Qн; Qв)

Показатель Контроль (1) Высокоустойчивые к стрессу крысы (2) Низкоустойчивые к стрессу крысы (3)
Толщина коры надпочечников, мкм 1094.1 (699.4; 1451.9) 608.2* (549.1; 645.6)
р1–2 = 0.0001
р2–3 = 0.2822
589.5* (550.7; 634.5)
р1–3 = 0.0001
Толщина капсулы надпочечника, мкм 12.9 (8.9; 16.5) 10.8 (8.1; 12.6)*#
р1–2 = 0.037
р2–3 = 0.0001
7.2 (6.9; 8.8)*#
р1–3 = 0.0001
Толщина камбиальной зоны, мкм 17.1 (12.3; 21.4) 32.4 (27.9; 36.4)*#
р1–2 = 0.0001
р2–3 = 0.0001
18.3 (15.2; 21.6)#
р1–3 = 0.3042
Толщина клубочковой зоны, мкм 58.5 (53.9; 64.7) 55.5 (49.1; 62.6)#
р1–2 = 0.1093
р2–3 = 0.0029
47.5(38.4; 57.2)*#
р1–3 = 0.0001
Толщина пучковой зоны, мкм 421.3 (433.5; 609.9) 219.1* (186.8; 266.2)
р1–2 = 0.0001
р2–3 = 0.3320
209.9* (183.2; 253.3)
р1–3 = 0.0001
Толщина сетчатой зоны, мкм 467.6 (369.7; 570.9) 280.3* (258.4; 337.5)
р1–2 = 0.0001
р2–3 = 0.0463
308.7* (261.1; 333.2)
р1–3 = 0.0001
Индекс функциональной активности клеток камбиальной зоны, усл. ед. 0.85 (0.56; 1.31) 2.07 (1.71; 2.78)*#
р1–2 = 0.0001
р2–3 = 0.0031
0.79 (0.48; 1.2)#
р1–3 = 0.4712
Индекс функциональной активности клеток клубочковой зоны, усл. ед. 2.5 (1.8; 2.8) 3.1 (2.8; 3.7)*#
р1–2 = 0.0001
р2–3 = 0.0006
2.4 (2.1; 2.9)#
р1–3 = 0.6621
Индекс функциональной активности клеток пучковой зоны, усл. ед. 22.7 (15.5; 27.5) 12.1 (10.6; 15.1)*#
р1–2 = 0.0001
р2–3 = 0.0019
9.9 (8.3; 11.2)*#
р1–3 = 0.0001
Индекс функциональной активности клеток сетчатой зоны, усл. ед. 20.5 (17.1; 24.9) 12.3 (11.1; 14.7)*
р1–2 = 0.0001
р2–3 = 0.4031
12.9 (10.4; 14.4)*
р1–3 = 0.0001

Примечание: * – достоверно значимые отличия от контроля,

# – достоверно значимые отличия при сравнении опытных групп.

В 1994 г. группой японских исследователей была идентифицирована и охарактеризована новая зона надпочечников крыс, расположенная между клубочковой и пучковой зонами, и названная “камбиальной зоной” [18]. В последующих работах было показано, что клетки этой зоны являются стволовыми клетками, поддерживающими клеточный состав клубочковой и пучковой зон [19]. В нашем исследовании толщина камбиальной зоны неустойчивых особей оставалась на уровне контрольных величин, тогда как у устойчивых к стрессу крыс зарегистрировано очень значительное увеличение толщины камбиальной зоны, превышающее контрольные значения на 89.5 и 77.1% – неустойчивых животных (табл. 2). При этом интегральный показатель – ИФАК камбиальной зоны устойчивых к стрессу крыс оказался наибольшим среди всех групп, он превосходил контрольные значения в 2.5 раза и в 2.7 раза – значения уязвимых животных. Вероятнее всего увеличение толщины камбиальной зоны и возрастание ИФАК устойчивых особей отражают существенную активацию адаптационных процессов гипоталамо-гипофизарно-адреналовой системы.

Как известно, снаружи надпочечник заключен в фиброзную капсулу, состоящую из пучков коллагеновых и эластических волокон, нескольких слоев фиброцитов и гладкомышечных клеток, идущих параллельно наружной поверхности железы. Считается, что в капсуле надпочечника находятся стволовые/прогениторные клетки, которые способны давать начало гонадоподобным клеткам и производить половые стероиды [16]. При моделировании ПТСР в нашем эксперименте толщина капсулы надпочечников устойчивых и неустойчивых к стрессу крыс уменьшалась по сравнению с контролем. Тем не менее следует подчеркнуть, что толщина капсулы уязвимых к стрессу крыс была на 43.4% меньше устойчивых. Возможно, свойством стволовых/прогениторных клеток капсулы производить половые стероиды объясняется более высокий уровень тестостерона у высокоустойчивых особей, чем у неустойчивых.

Таким образом, в проведенном исследовании впервые удалось обнаружить персонифицированные морфофункциональные различия надпочечников устойчивых и неустойчивых к предаторному стрессу крыс Вистар. Несмотря на выраженные признаки дисфункции адреналовых желёз у обоих фенотипов, утолщение камбиальной зоны и высокие значения индекса функциональной активности стволовых клеток этой зоны у устойчивых особей, позволяют сделать вывод о том, что у этих животных наблюдается восстановление морфофункционального состояния надпочечников, т.е. продуктивная адаптация. Приоритетными являются данные о непосредственной связи между снижением уровня кортикостерона и тестостерона с надпочечниковой недостаточностью при моделировании ПТСР. Полученные в работе сведения позволяют рассматривать стволовые клетки надпочечников в качестве потенциальных терапевтических мишеней.

Список литературы

  1. Osório C., Probert T., Jones E., et al. Adapting to Stress: Understanding the Neurobiology of Resilience // Behav Med. 2017. V. 43. № 4. P. 307–322.

  2. Tang W., Hu T., Hu B., et al. Prevalence and correlates of PTSD and depressive symptoms one month after the outbreak of the COVID-19 epidemic in a sample of home-quarantined Chinese university students // J Affect Disord. 2020. V. 274. P. 1–7.

  3. Colucci P., Marchetta E., Mancini G.F., et al. Predicting susceptibility and resilience in an animal model of post-traumatic stress disorder (PTSD) //Transl Psychiatry. 2020. V. 10. № 1. P. 243.

  4. Torrisi S.A., Lavanco G., Maurel O.M. et al. A novel arousal-based individual screening reveals susceptibility and resilience to PTSD-like phenotypes in mice. Neurobiol Stress. 2020. V. 14. P. 100286.

  5. Cohen H., Zohar J. An animal model of posttraumatic stress disorder: The use of cut-off behavioral criteria. Ann N Y AcadSci. 2004. V. 1032. P. 167–178.

  6. Tseilikman V., Dremencov E., Maslennikova E., et al. Post-Traumatic Stress Disorder Chronification via Monoaminooxidase and Cortisol Metabolism.HormMetab Res. 2019. V. 51. № 9. P. 618–622.

  7. Voznessenskaya V.V., Kyuchnikova M.A., Wysocki C.J. Roles of the main olfactory and vomeronasal systems in detection of androstenone in inbred straines of mice // Current Zool. 2010. V. 56. № 6. P. 813–818.

  8. Вознесенская В.В. Использование химических сигналов хищника для разработки альтернативных подходов к регуляции численности грызунов. Международный журнал экспериментального образования. 2015. № 2–1. С. 80–82.

  9. Apfelbach R., Parsons M.H., Soini H.A., et al.Are single odorous components of a predator sufficient to elicit defensive behaviors in prey species? Front Neurosci. 2015. V. 29. № 9. P. 263.

  10. Cohen H., Tianmin L., KozlovskyN., et al. The neuropeptide Y (NPY)-ergic system is associated with behavioral resilience to stress exposure in an animal model of posttraumatic stress disorder // Neuropsychopharmacol. 2011. V. 37. № 2. P. 350–363.

  11. Волков В.П. Функциональная морфология коры надпочечников в возрастном аспекте // Современная медицина: актуальные вопросы. 2014. № 31. С. 16–26.

  12. Wang Q., Yu K., Wang J., et al. Predator stress-induced persistent emotional arousal is associated with alterations of plasma corticosterone and hippocampal steroid receptors in rat // Behav. Brain Res. 2012. V. 230. № 1. P. 167–174.

  13. Komelkova M., Manukhina E., Downey H.F. et al. Hexobarbital Sleep Test for Predicting the Susceptibility or Resistance to Experimental Posttraumatic Stress Disorder. // Int J Mol Sci. 2020. V. 21. № 16. P. 5900.

  14. Karlović D., Serretti A., Marčinko D., et al. Serum testosterone concentration in combat-related chronic posttraumatic stress disorder // Neuropsychobiol. 2012. V. 65. № 2. P. 90–95.

  15. KiralyD.D., Sher L. Low testosterone in a young combat veteran with dual diagnosis and suicidal behavior: A case study //Int J Adolesc Med Health. 2015. V. 27. № 2. P. 235–237.

  16. Taylor M.K., Kviatkovsky S.A., Hernández L.M., et al. Anabolic hormone profiles in elite military men // Steroids. 2016. V. 110. P. 41–48.

  17. Goodale T., Sadhu A., Petak S., et al. Testosterone and the Heart // Methodist DebakeyCardiovasc J. 2017. V. 13. № 2. P. 68–72.

  18. Mitani F., Suzuki H., Hata J., et al. A novel cell layer without corticosteroid-synthesizing enzymes in rat adrenal cortex: histochemical detection and possible physiological role // Endocrinol. 1994. V. 135. № 1. P. 431–438.

  19. Mitani F. Functional zonation of the rat adrenal cortex: the development and maintenance // Proc JpnAcadSer B Phys Biol Sci. 2014. V. 90. № 5. P. 163.

Дополнительные материалы отсутствуют.