Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, 2021, T. 501, № 1, стр. 547-550

ВЛИЯНИЕ ПОЛИМЕТАЛЛИЧЕСКОГО ЗАГРЯЗНЕНИЯ НА ИОНООБМЕННЫЕ СВОЙСТВА КЛЕТОЧНЫХ СТЕНОК КОРНЕЙ И ПОБЕГОВ ЯЧМЕНЯ

Н. Р. Мейчик 1*, Ю. И. Николаева 1, О. В. Никушин 1, М. А. Кушунина 1

1 Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, Биологический факультет, кафедра физиологии растений
Москва, Россия

* E-mail: meychik@mail.ru

Поступила в редакцию 20.06.2021
После доработки 30.06.2021
Принята к публикации 30.06.2021

Полный текст (PDF)

Аннотация

Впервые определены ионообменные свойства клеточных стенок (КС), изолированных из корней и побегов ячменя, выращенного в условиях полиметаллического загрязнения. Установлено, что в побегах содержание в КС всех типов катионообменных групп значительно выше, чем в корнях, что обусловливает более высокую металл-связывающую способность КС побегов и степень гидратации ее полимеров. Впервые показано, что воздействие избытка тяжелых металлов на растения приводит к возрастанию содержания деметилированных пектинов в КС побегов.

Ключевые слова: клеточная стенка, ионообменные свойства, тяжелые металлы, ячмень

Клеточная стенка (КС) – это сложноорганизованная и многофункциональная структура, первая вступающая в контакт с внешним раствором и модифицирующая его состав за счет реакций обмена между ионогенными группами полимеров КС и ионами раствора. Структурные и ионообменные характеристики КС определяют ионный состав среды, которая омывает клеточную мембрану, контролируют перенос растворенных веществ в клетку и влияют на механические и осмотические явления, связанные с ростом клеток [1]. КС является не только сложной, но и динамичной структурой, состав и организация которой могут изменяться в процессе онтогенеза и под действием внешних факторов [2, 3]. Кроме того, реакции ионного обмена в КС клеток корня регулируют поступление веществ в корни растений [46], а при повышенной концентрации тяжелых металлов (ТМ) в почвенном растворе КС выступает как первый защитный барьер на пути их поступления в цитоплазму клеток корня, эффективность которого обусловлена ионообменной способностью КС в отношении катионов металлов [5].

Ионообменные свойства КС в отношении двух- и трехвалентных катионов металлов главным образом определяются содержанием деметилированных карбоксильных групп галактуроновой кислоты [4, 7] в составе пектиновых веществ. В то же время и другие компоненты КС (белки, аминокислоты и фенольные соединения) также принимают участие в связывании и накоплении ТМ в апопласте [6, 7]. Однако в литературе имеются лишь ограниченные данные об изменении количества ионогенных групп полимеров КС в условиях избытка ТМ в среде, а влияние совместного присутствия нескольких токсичных металлов на ионообменные свойства КС у злаковых растений никогда ранее не изучалось.

В настоящей работе мы впервые определили ионообменные свойства КС корней и побегов ячменя (Hordeum vulgare L., сорт «Биом») в условиях полиметаллического загрязнения.

Растения выращивали в водной культуре (по 60 растений на сосуд объемом 3 л) в климатической камере (24°С, освещенность 100 мкмоль квантов м–2 с–1, 16 ч день) при постоянной аэрации растворов. Контрольные растения выращивали на питательном растворе, содержащем (мкМ): K2SO4 – 147.5, KH2PO4 – 5, MgSO4 – 95, NH4NO3 – 120, CaCl2 – 620, Ca(NO3)2 – 275, MnSO4 – 0.5, ZnSO4 – 0.5, CuSO4 – 0.2, Na2MoO4 – 0.01, NaCl – 10, H3BO3 – 1, FeSO4 – 6, и 2.22 г/л ЭДТА. В опытные сосуды через 7 сут после высадки растений дополнительно вносили растворы ТМ до конечной концентрации: а) опытный вариант с суммарной концентрацией ТМ 65.5 мкМ: Al3+ – 10; Mn2+ – 25; Cd2+ – 1.4; Cu2+ – 1; Ni2+ – 8; Zn2+ – 20; Pb2+ – 0.15 мкМ; б) опытный вариант с суммарной концентрацией ТМ 131 мкМ: Al3+ – 20; Mn2+ – 50; Cd2+ – 2.8; Cu2+ – 2; Ni2+ – 16; Zn2+ – 40; Pb2+ – 0.3 мкМ. В питательный раствор и для опытных, и для контрольных растений ежедневно вносили раствор KH2PO4 из расчета 1 мкмоль на литр среды. Растения выращивали в присутствии ТМ в течение 7 сут, после чего у части растений определяли сырую и сухую массу органов, их оводненность, а оставшиеся использовали для выделения КС (из корней и надземной части) в соответствии с ранее описанной методикой [6]. Исследование ионообменных групп в составе КС проводили методом потенциометрического титрования, как описано ранее [6], при постоянной ионной силе раствора (10 мМ), которую создавали добавлением NaCl. Весовой коэффициент набухания КС (KКС, г Н2О/г сухой массы КС) в растворах с рН 4–12 и ионной силой 10 мМ определяли в соответствии с методикой, описанной в [6]. Опыты проводили в 3–6 биологических повторностях для каждой концентрации полиметаллов. Приведены средние значения и их стандартные отклонения или ошибки. Различия считали достоверными при p < 0.05 или р < 0.01.

Сухая масса корней и надземной части, а также их оводненность и массовая доля КС в корнях и побегах растений ячменя достоверно не различались по отношению к контролю ни при 65.5 мкМ, ни при 131 мкМ ТМ в среде (р < 0.01, табл. 1), причем различий не наблюдалось и между вариантами обработки с разной концентрацией ТМ (р < 0.01, табл. 1). Эти данные свидетельствуют о том, что воздействие полиметаллических загрязнений в указанных концентрациях не приводит к ингибированию роста растений и не нарушает их водный обмен.

Таблица 1.

Сухая масса корня (Gкорня, мг) и надземной части (Gнадз, мг) одного растения, их оводненность (Qкорни, Qнадз, г Н2О/г сухой массы органа), доля КС от общей сухой массы корней и надземной части (${\text{G}}_{{{\text{корни}}}}^{{{\text{КС}}}}$, ${\text{G}}_{{{\text{надз}}}}^{{{\text{КС}}}}$) растений ячменя, выращенных на контрольной среде и средах с добавлением 65.5 мкМ и 131 мкМ ТМ. Приведены средние значения и их стандартные ошибки

Вариант Gкорня Gнадз Qкорни Qнадз ${\text{G}}_{{{\text{корни}}}}^{{{\text{КС}}}}$ ${\text{G}}_{{{\text{надз}}}}^{{{\text{КС}}}}$
контроль 11.33 ± 0.53 41.91± 3.82 15.47 ± 0.48 10.70 ± 0.05 0.53 ± 0.02 0.41 ± 0.01
65.5 мкМ ТМ 12.33 ± 0.75 43.63 ± 1.45 12.06 ± 1.25 9.28 ± 0.25 0.51 ± 0.03 0.41 ± 0.01
131 мкМ ТМ 11.70 ± 0.49 38.08 ± 0.74 11.78 ± 0.51 9.74 ± 0.28 0.51 ± 0.01 0.41 ± 0.00

Водный режим в КС регулируется через набухание ее полимерного матрикса, которое изменяется под влиянием состава внешней среды. Способность к набуханию – это свойство полимерного материала, определяемое его строением и составом. Результаты показывают, что коэффициент набухания КС (KКС), изолированных из корней и надземных частей растений ячменя, увеличивается с рН раствора. С увеличением рН от 4 до 9 этот параметр возрастал от 2.5 до 4.0 и от 2.5 до 5.5 г H2O/г сухой массы КС в корнях и в побегах соответственно. Существенные отличия в набухании были обнаружены между КС корней и побегов: у последних значение этого показателя было в 1.4–1.5 раза выше вне зависимости от среды выращивания.

Во всех вариантах при рН > 10.8 катионообменная способность КС достигала максимальных значений (${\text{S}}_{{\text{о}}}^{{{\text{кат}}}}$, табл. 2), которые характеризуют общее количество катионообменных групп, имеющихся в полимерной структуре КС. Следует отметить, что в КС как побегов, так и корней были обнаружены и анионообменные группы, но их содержание не превышало 20 мкмоль/г сухой массы КС, что соответствует известным данным [4, 6].

Таблица 2.

Содержание катионообменных групп каждого типа (Si, мкмоль/г сухой массы КС), общее содержание катионообменных групп (${\text{S}}_{{\text{о}}}^{{{\text{кат}}}}$, мкмоль/г сухой массы КС) в клеточных стенках, изолированных из корней и побегов растений ячменя, выращенных на контрольной среде и средах с добавлением 65.5 мкМ и 131 мкМ ТМ. ПГК – карбоксильные группы полигалактуроновой кислоты; ГКК – карбоксильные группы гидроксикоричных кислот; ФГ – фенольные ОН-группы. Приведены средние значения и их стандартные отклонения

Вариант SПГК SГКК SФГ ${\text{S}}_{{\text{о}}}^{{{\text{кат}}}}$
контроль КС корней 40 ± 1 330 ± 30 310 ± 21 678 ± 44
КС побегов 120 ± 12 540 ± 20 530 ± 20 1230 ± 80
65.5 мкМ ТМ КС корней 38 ± 2 420 ± 25 340 ± 15 798 ± 32
КС побегов 160 ± 15 540 ± 20 700 ± 30 1400 ± 70
131 мкМ ТМ КС корней 39 ± 3 450 ± 32 350 ± 20 838 ± 55
КС побегов 165 ± 20 700 ± 52 650 ± 25 1515 ± 100

Так же, как и в КС других видов растений [6], в КС, изолированных и из корней, и из побегов ячменя, обнаружено три типа катионообменных групп (табл. 2): карбоксильные группы полигалактуроновой (ПГК) и гидроксикоричных (ГКК) кислот, и фенольные ОН-группы. Последние не принимают участия в ионообменных реакциях, так как значение рКа этих групп (9.66 ± 0.17 ед. рН) лежит за пределами физиологической области рН.

Полученные в работе значения рКа ионообменных групп в составе КС (${\text{pK}}_{{\text{a}}}^{{{\text{ПГК}}}}$ = 4.35 ± 0.61; ${\text{pK}}_{{\text{a}}}^{{{\text{ГКК}}}}$ = 7.27 ± 0.15; ${\text{pK}}_{{\text{a}}}^{{{\text{ФГ}}}}$ = 9.66 ± 0.17) свидетельствуют о том, что их качественный состав одинаков в КС корней и надземной части, тогда как количество групп каждого типа (Si, табл. 2) значительно различается между органами растений. Так, в побегах содержание карбоксильных групп ПГК в КС больше, чем в корнях в 3 раза (контрольные растения) и 4 раза (обработанные ТМ растения), карбоксильных групп ГКК – в 1.6 раза (независимо от среды выращивания), фенольных ОН-групп – примерно в 2 раза. Данный факт объясняет различие в величине коэффициента набухания для КС побегов и корней: более высокое содержание всех типов катионообменных групп в побегах приводит к увеличению содержания электроотрицательного элемента кислорода, что, в свою очередь, увеличивает степень гидратации полимеров КС.

С точки зрения ионообменной способности КС корней слабо отвечают на присутствие в питательной среде полиметаллических загрязнений. Другая ситуация в этих условиях наблюдается для КС, изолированных из надземной части. В ответ на воздействие ТМ происходит увеличение количества как обоих типов карбоксильных групп, так и фенольных ОН-групп в 1.3–1.4 раза по отношению к контролю (табл. 2).

Известно, что у бобовых растений содержание карбоксильных групп ПГК в КС стеблей вдвое выше, чем в КС корней [8]. У исследованных же нами растений ячменя различия достигают четырех раз. Чтобы подтвердить эти данные, был применен еще один метод, основанный на том, что при рН < 4 в ионообменных реакциях с Cu2+ участвуют только карбоксильные группы ПГК [9]. После 72 ч инкубации в 131 мкМ растворе CuCl2 (рН 4.0 ± 0.2) в КС, изолированных из корней ячменя, содержалось 22.03 ± 2.84 мкмоль Cu/г сухой массы КС, а в КС надземной части – 33.77 ± ± 0.84 мкмоль Cu/г сухой массы КС, вне зависимости от среды, на которой были выращены растения. Поскольку КС, выделенные из корней, связали меньше Cu2+, можно заключить, что содержание деметилированных пектинов в них значительно ниже по сравнению с КС побегов.

Известно, что в ответ на металл-стресс растения могут реализовывать три стратегии изменения состава КС клеток корня и ее ионообменной способности. Первая из них, обнаруженная большей частью у чувствительных к воздействию ТМ сортов и видов растений, заключается в увеличении массовой доли деметилированных пектинов в КС корней при воздействии таких металлов, как Pb, Cd и Cu [10, 11]. Вторая, напротив, состоит в уменьшении массовой доли деметилированных пектинов в КС в ответ на избыток ТМ в среде [10, 12]. В данном случае формирование “металл-исключающих” КС препятствует накоплению ТМ в апопласте и, вероятно, также ограничивает симпластное поглощение металла клетками корня [10]. Третья стратегия изменения состава КС обусловлена усилением в равной мере биосинтеза всех компонентов КС, в том числе и пектинов с такой же степенью метилирования, как у контрольных растений. Такой ответ на воздействие повышенных концентраций ионов меди был выявлен у бобовых [13].

В настоящее время считается, что основную роль в связывании ТМ играют карбоксильные группы остатков уроновых кислот в составе пектинов [7]. Полученные нами данные о содержании таких групп в КС корней ячменя (табл. 2) свидетельствуют о том, что металл-связывающая способность КС корней, как и ее массовая доля (табл. 1), не изменяются при обработке полиметаллами, и, следовательно, можно заключить, что модификации состава КС в корнях ячменя не происходит при воздействии ТМ на растения ни в “высокой” (131 мкМ), ни в “низкой” (65.5 мкМ) концентрациях.

Напротив, полученные данные о содержании карбоксильных групп ПГК в КС, выделенных из надземной части растений ячменя, позволяют предположить, что в ответ на воздействие ТМ происходит модификация пектиновых полимеров путем их деметилирования, так содержание карбоксильных групп ПГК возрастает в 1.4 раза (табл. 2), а массовая доля КС в побегах не изменяется по отношению к контролю (табл. 1).

Увеличение содержания фенольных ОН-групп в КС и корней, и побегов ячменя в ответ на действие ТМ может быть обусловлено лигнификацией вторичной КС, так как такой ответ был обнаружен при воздействии других неблагоприятных факторов внешней среды, таких как засуха, пониженные температуры, засоление [14] и дефицит азота в среде [15].

Таким образом, нами впервые показано, что при воздействии ТМ на растения может происходить не только модификация КС корней, как было известно ранее, но и модификация КС побегов, которая заключается в деметилировании пектинов с целью увеличения ионообменной способности КС. Можно предположить, что такой ответ связан с механизмами поступления ТМ в растения ячменя. Вероятно, вследствие небольшого содержания карбоксильных групп ПГК в КС корней, ионы металлов поступают в надземную часть, где накапливаются и инактивируются, в том числе, и в КС.

Список литературы

  1. Grignon C., Sentenac H. // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1991. V. 42. P. 103–128.

  2. Carpita N.C., Gibeaut D.M. // Plant J. 1993. V. 3. P. 1–30.

  3. Fry S.C. // New Phytol. 2004. V. 161. № 3. P. 641–675.

  4. Sattelmacher B. // New Phytol. 2001. V. 149. P. 167–192.

  5. Haynes R.J. // Bot. Rev. 1980. V. 46. P. 75–99.

  6. Meychik N.R., Yermakov I.P. // Plant Soil. 2001. V. 234. № 2. P. 181–193.

  7. Krzesłowska M. // Acta Physiol. Plant. 2011. V. 33. P. 35–51.

  8. Meychik N.R., Yermakov I.P., Nikolaeva Yu I., et al. // Russ. J. Plant Physiol. 2010. V. 57. № 5. P. 620–630.

  9. Meychik N., Nikolaeva Y., Kushunina M., et al. // Plant Soil. 2014. V. 381. № 1–2. P. 25–34.

  10. Colzi I., Doumett S., Del Bubba N., et al. // Env. Exp. Bot. 2011. V. 72. P. 77–83.

  11. Douchiche O., Rihouey C., Schaumann A., et al. // Planta. 2007. V. 225. P. 1301–1312.

  12. Konno H., Nakashima S., Katoh K. // J. Plant Physiol. 2010. V. 167. P. 358–364.

  13. Meychik N., Nikolaeva Y., Kushunina M., et al. // Funct. Plant Biol. 2016. V. 43. № 5. P. 403–412.

  14. Le Gall H., Philippe F., Domon J.M., et al. // Plants. 2015. V. 4. P. 112–166.

  15. Meychik N.R., Nikolaeva Yu.I., Kushunina M.A. // Moscow Univ. Biol. Sci. Bull. 2017. V. 72. P. 74–78.

Дополнительные материалы отсутствуют.