Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, 2022, T. 503, № 1, стр. 172-176

5-азацитидин подавляет экспрессию тканеспецифических изоформ Oct-1 в B-клеточной лимфобластной линии Namalwa

А. П. Котнова 1*, А. Г. Степченко 1, академик РАН Ю. В. Ильин 1, член-корреспондент РАН С. Г. Георгиева 1, Е. В. Панкратова 1

1 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук (ИМБ РАН)
Москва, Россия

* E-mail: alina_kotnova@mail.ru

Поступила в редакцию 30.11.2021
После доработки 16.12.2021
Принята к публикации 16.12.2021

Полный текст (PDF)

Аннотация

Сверхэкспрессия транскрипционного фактора POU2F1(Oct-1) при канцерогенезе у человека повышает злокачественный потенциал опухоли и определяет неблагоприятный прогноз как для солидных, так и для гематологических случаев заболевания. При остром миелодиспластическом лейкозе (ОМЛ) уровень Oct-1 определяет скорость развития заболевания, а понижение его экспрессии значительно задерживает развитие лейкоза у мышей, однако полный нокаут Oct-1 приводит к гибели животных. POU2F1(Oct-1) экспрессируется в клетках в виде нескольких изоформ, транскрибирующихся с альтернативных промоторов. Среди них есть как убиквитарная, так и тканеспецифические изоформы. Мы показали, что в клетках лимфомы Беркитта Namalwa 5-азацитидин специфически подавляет экспрессию мРНК тканеспецифической изоформы Oct-1L, уровень которой аномально повышен в этих клетках, при этом не вызывая изменений количества мРНК убиквитарной изоформы Oct-1A. Полученные результаты показывают, что можно избирательно понижать уровень транскрипции изоформы Oct-1L, аберрантно экспрессирующейся в опухолевых клетках человека.

Ключевые слова: фактор транскрипции POU2F1(Oct-1), альтернативные промоторы, 5-азацитидин, лимфома Беркитта

Злокачественные опухоли кроветворной и лимфоидной ткани составляют примерно 8% всех злокачественных заболеваний. Они делятся на две большие группы – лимфомы и лейкозы; многие из них характеризуются неблагоприятным прогнозом и низким уровнем выживаемости. Поиск маркеров и терапевтических мишеней для персонифицированного лечения онкологических заболеваний показал, что продукт гена POU2F1(Oct-1) является чрезвычайно значимым фактором развития и прогрессирования многих злокачественных опухолей как эпителиального происхождения, так и опухолей кроветворной и лимфоидной ткани [1].

Фактор транскрипции Oct-1 принадлежит к семейству POU-факторов транскрипции с высококонсервативным ДНК-связывающим доменом и контролирует дифференцировку, выживаемость и пролиферацию клеток иммунной системы и гемопоэтических клеток [2, 3]. Oct-1 экспрессируется во всех клетках организма, регулирует дифференцировку В- , Т-клеток и стволовых гемопоэтических клеток [2, 3] и является фактором защиты клетки от разных видов стресса: генотоксического, окислительного, гипоксического, стресса эндоплазматического ретикулума, а также модулирует ответ клетки на химиотерапевтические препараты [4, 5].

Повышение уровня экспрессии Oct-1 в опухолевых клетках вносит существенный вклад в неблагоприятный прогноз развития онкологических заболеваний. Так, например, определение уровня экспрессии POU2F1(Oct-1) при раке желудка имеет даже более высокое прогностическое значение, чем определение стадии (I-IV) заболевания по AJCC [6]. Для опухолей кроветворной системы проонкогенные функции Oct-1 были описаны для лимфомы Ходжкина, лимфомы тимуса, диффузной крупноклеточной В-лимфомы, острого миелоидного лейкоза [7–9]. Сверхэкспрессия Oct-1 часто наблюдается при диффузной B-крупноклеточной лимфоме и является независимым прогностическим фактором неблагоприятного исхода [8]. Oct-1 является важным регулятором лейкемогенности и гемопоэтического стресса. Высокий уровень экспрессии фактора транскрипции Oct-1 защищает гемопоэтические клетки от стресса, но способствует развитию лимфомы тимуса [1] и острого миелоидного лейкоза [9] у мышей. Напротив, подавление Oct-1 защищает мышей от лейкемии, вызванной гибридным онкопротеином MLL-AF9. Комбинация этой модельной системы ОМЛ с нокаутом Oct-1 показала, что потеря одного аллеля Oct-1 значительно задерживает развитие лейкоза. Делеция обоих аллелей Oct-1 полностью защищает мышей от лейкоза, но приводит к недостаточности костного мозга и гибели животных. [9]. Анализ этих данных указывает на то, что Oct-1 – мощный фактор, определяющий злокачественный потенциал опухоли и ее ответ на действие химиотерапевтических препаратов.

Полифункциональность Oct-1 в значительной степени определяется тем, что он существует в клетке в виде ряда различных изоформ, которые образуются за счет альтернативного сплайсинга и/или альтернативной инициации транскрипции [10]. В гене POU2F1 существуют альтернативные промоторы [1012]. Как видно из рис. 1, считываемые с них транскрипты имеют разные первые экзоны и кодируют изоформы, различающиеся своими N-концевыми последовательностями [11]: убиквитарная изоформа Oct-1A считывается с промотора U, а тканеспецифические изоформы Oct-1L и Oct-1R – с промотора L.

Рис. 1.

Экзон-интронная организация гена POU2F1(Oct-1). Схема строения изоформ, транскрибирующихся с убиквитарного промотора U и тканеспецифического промотора L. Экзоны обозначены прямоугольниками. Альтернативные 5'-концевые экзоны обозначены штриховкой. Начало транскрипции показано на схеме гена поворотными стрелками. Начало трансляции и стоп-кодоны обозначены стрелками и звездочками соответственно.

Экспрессия изоформ Oct-1 изменяется во время дифференцировки гематопоэтических клеток: в плюрипотентных гематопоэтических клетках CD34+ (ПГК) Oct-1L экспрессируется на высоком уровне; во время дифференцировки Т-клеток (CD3+) и клеток моноцитарного ряда (CD14+) его уровень экспрессии резко падает, но при этом почти не изменяется при дифференцировке B-клеток (CD19 +) [13, 14]. Изоформа Oct-1R у человека экспрессируется только в В-клетках, в ПГК она не обнаружена [13]. Характерно, что уровень убиквитарной изоформы Oct-1A не претерпевает значительных изменений при дифференцировке гематопоэтических клеток.

Во всех нормальных кроветворных клетках активность тканеспецифического промотора L, а следовательно, и концентрация тканеспецифических изоформ, ниже, чем активность убиквитарного промотора U и концентрация убиквитарной изоформы Oct-1А. При этом в В-клеточных лимфомах Беркитта Namalwa и Raji данное соотношение нарушено, и концентрация изоформы L значительно превосходит содержание в клетках изоформы А. Концентрация тканеспецифичной изоформы Oct-1L в В-клетках Namalwa в несколько раз выше, чем в нормальных В-клетках (CD19+) [13]; уровень ее экспрессии также повышен в Т-клеточной линии Jurkat по сравнению с нормальными Т-клетками (CD3 +) [13]. Примечательно, что все эти клеточные линии изначально были получены из низкодифференцированных лимфобластов.

Ранее было показано, что сверхэкспрессия Oct-1R и Oct-1L в клетках Namalwa приводит к репрессии многих генов, участвующих в дифференцировке В- и Т-лимфоцитов, а также клеток моноцитарного ряда (CD14+) [13, 14]. Высокий уровень изоформы Oct-1L, наблюдаемый в лимфобластных линиях опухолевых клеток, показывает, что избыток Oct-1L, по всей видимости, значительно уменьшает их способность к дифференцировке. Существование альтернативных промоторов в гене POU2F1(Oct-1) позволяет влиять не только на экспрессию тотального Oct-1, что губительно сказывается на организме, но также на экспрессию отдельных его изоформ, уровень которых повышен в опухолевых клетках.

В данной работе мы исследовали влияние 5-азацитидина на транскрипцию гена POU2F1 и показали, что он избирательно подавляет транскрипцию с тканеспецифического L-промотора гена POU2F1 и уменьшает концентрацию изоформы Oct-L в опухолевых клетках лимфомы Беркитта Namalwa.

Ингибитор метилирования ДНК 5-азацитидин применяется в клинической практике для лечения миелодиспластического синдрома (МДС) и острого миелоидного лейкоза (ОМЛ). Для изучения его влияния на уровень транскрипции альтернативных изоформ белка Ост-1 клетки Namalwa рассевали в 6-луночные планшеты по 2 × 106 на лунку в среде DMEM, содержащей 10% эмбриональной сыворотки. К клеткам добавляли 5-азацитидин (5-Azacytidine, Sigma-Aldrich), растворенный в 8 мкл ДМСО, в следующих концентрациях: 10, 5, 2.5, 1.25 μМ. В контрольные лунки добавляли по 8 мкл ДМСО. Для оценки воздействия 5-азацитидина на уровень транскрипции разных изоформ Oct-1 из клеточной культуры выделяли РНК тризольным методом, после чего проводили обратную транскрипцию с использованием набора Maxima First Strand cDNA Synthesis Kit for RT-qPCR (Thermo Scientific) и ПЦР в реальном времени с использованием праймеров, специфичных к изоформам А и L (Oct-1A-sense: 5'-tattcaaaatggcggacgga-3'; Oct-1L-sense: 5'-ccaccccaaactgctacctgt-3'; Oct-1-antisense, общий для обеих изоформ: 5'-ctgacggattgttcattcttgagt-3'). Нормировку проводили по гену GUS: GUS sense: 5'-cgtggttggagagctcatttgga-3' и GUS antisense 5'-attccccagcactctcgtcggt-3'.

Как видно из рис. 2, при культивировании клеток Namalwa в течение 24 ч в среде, содержащей 5-азацитидин, значительно снижается количество изоформы Oct-1L, транскрибирующейся с альтернативного тканеспецифического промотора L, тогда как количество мРНК убиквитарной изоформы Oct-1A практически не изменяется. Этот эффект дозозависимый и проявляется на уровне концентраций, применяемых в клинической практике. При концентрации 5-азацитидина 10 μМ в культуральной среде количество мРНК Oct-1L в клетках Namalwa снижалось в три раза по сравнению с контролем, а при концентрации 5 μМ – в два раза. Дальнейшее понижение концентрации 5-азацитидина не вызывало достоверных изменений в экспрессии Oct-1L.

Рис. 2.

Влияние 5-азацитидина на транскрипцию с альтернативных промоторов U и L гена POU2F1(Oct-1). Результаты количественной ПЦР. На диаграмме представлено среднее значение ±S.E.M. для трех независимых экспериментов; t-тесты были выполнены, чтобы определить, существует ли значимая разница между средними значениями для контрольных и обработанных клеток (**p < 0.01).

Из представленных результатов видно, что 5-азацитидин подавляет транскрипцию с тканеспецифического промотора L, снижая концентрацию тканеспецифических изоформ в опухолевых клетках, но практически не влияет на транскрипцию с убиквитарного промотора U и концентрацию мРНК убиквитарной изоформы А.

В низких концентрациях, которые применяются в настоящее время в онкогематологической практике, 5-азацитидин является гипометилирующим агентом, который ингибирует ДНК-метилтрансферазу путем включения в ДНК азацитидинтрифосфата. Это приводит к потере метилирования ДНК и реактивации репрессированных генов. Считается, что патологические паттерны метилирования ДНК определяют развитие миелодиспластических синдромов высокого риска и острого миелоцитарного лейкоза, а гипометилирование может восстанавливать нормальную функцию генов, контролирующих дифференцировку и пролиферацию [1517]. После 16 лет клинического применения 5-азацитидина он остается основным препаратом для лечения МДС и ОМЛ. Однако точный механизм его действия все еще до конца не изучен [17]. В нашей работе было показано, что 5-азацитидин подавляет транскрипцию с тканеспецифического L-промотора гена POU2F1 и избирательно снижает экспрессию изоформы Oct-1L в два-три раза при концентрациях, используемых в клинической практике.

Мы провели анализ области альтернативного промотора L гена POU2F1 и не обнаружили там CpG-островков, которые могли бы подвергаться метилированию, поэтому мы полагаем, что обнаруженный нами эффект 5-азацитидина не связан с деметилированием промотора L. Возможно, деметилированию подвергаются более отдаленные участки гена POU2F1, регулирующие транскрипцию тканеспецифического промотора, или проявляются другие свойства 5-азацитидина, не связанные с деметилированием.

При лечении онкологических заболеваний следует обратить внимание на следующие факты: 1) высокий уровень экспрессии Oct-1 осложняет течение заболевания при таких гематологических опухолях, как ОМЛ, диффузная В-крупноклеточная лимфома, лимфома Ходжкина, лимфома тимуса; 2) искусственно вызванная гипоэкспрессия Oct-1 при ОМЛ задерживает развитие лейкоза; 3) в В- и Т-клеточных лимфомах (линии клеток Namalwa, Raji, Jurkat) наблюдается аномально высокая экспрессия изоформы Oct-1L, нехарактерная для нормальных лимфоидных клеток; 4) в некоторых опухолевых линиях клеток уровень экспрессии изоформы Oct-1L значительно превышает таковой у нормальных клеток того же происхождения [18]. Из совокупности этих данных можно сделать вывод, что аберрантная экспрессия тканеспецифической изоформы Oct-1L является фактором неблагоприятного прогноза и может стать терапевтической мишенью для опухолей, в которых наблюдается высокий уровень Oct-1. В этих случаях возможно применение в комбинированной терапии 5-азацитидина, избирательно подавляющего экспрессию изоформы Oct-1L. Это предположение требует дальнейшего анализа экспрессии изоформ Oct-1 в первичных опухолях.

Из клинической практики известно, что монотерапия 5-азацитидином эффективна при лечении МДС и ОМЛ. Однако в настоящее время нет достаточных доказательств в поддержку применения 5-азацитидина при лечении солидных опухолей или других гематологических злокачественных новообразований. Единственная попытка применения 5-азацитидина для лечения солидных опухолей была предпринята в 1977 г. Противоопухолевый эффект наблюдался только у 17% обследованных пациентов с карциномой груди и у 21% пациентов со злокачественными лимфомами. В результате был сделан вывод, что препарат неэффективен при солидных опухолях [15]. Однако исследования последних лет показали, что опухоли следует разделять по уровню экспрессии Oct-1. Сверхэкспрессия Oct-1 коррелирует с агрессивностью опухоли при раке груди, пищевода, желудка, простаты, легких, головы и шеи, шейки матки, колоректального рака, диффузной В-крупноклеточной лимфомы и других злокачественных опухолей [1, 8]. Возможно, положительный противоопухолевый эффект 5-азацитидина в исследовании 1977 г. наблюдался именно у пациентов со сверхэкспрессией Oct-1L в опухоли.

Наши результаты подтверждают важность детального анализа экспрессии генов как стратегии выявления новых биомаркеров и терапевтических мишеней при лимфомах и лейкозах. Способность 5-азацитидина подавлять экспрессию Oct-1L в опухолевых клетках может стать важным шагом для его применения при лечении опухолей с повышенным уровнем экспрессии Oct-1L.

Список литературы

  1. Vázquez-Arreguín K., Tantin D. The Oct1 transcription factor and epithelial malignancies: Old protein learns new tricks // Biochim Biophys Acta. 2016. V. 1859. № 6. P. 792–804.

  2. Maddox J., Shakya A., South S., et al. Transcription factor Oct1 is a somatic and cancer stem cell determinant // PLoS Genet. 2012. V. 8. P. e1003048.

  3. Shakya A., Goren A., Shalek A., et al. Oct1 and OCA-B are selectively required for CD4 memory T cell function // J. Exp. Med. 2015. V. 212. P. 2115–2131.

  4. Shakya A., Cooksey R., Cox J.E., Wang V., McClain D.A., Tantin D. Oct1 loss of function induces a coordinate metabolic shift that opposes tumorigenicity // Nat Cell Biol. 2009. V. 11. № 3. P. 320–327.

  5. Порцева Т.Н., Панкратова Е.В., Степченко А.Г., Георгиева С.Г. Повышение уровня белка OCT-1 в опухолевых клетках модулирует клеточный ответ на противоопухолевые препараты // ДАН. 2016. Т. 469. С. 366–370.

  6. Qian J., Kong X., Deng N., et al. OCT1 is a determinant of synbindin-related ERK signalling with independent prognostic significance in gastric cancer // Gut. 2015. V. 64. № 1. P. 37–48.

  7. García-Cosío M., Santón A., Martín P., et al. Analysis of transcription factor OCT.1, OCT.2 and BOB.1 expression using tissue arrays in classical Hodgkin’s lymphoma // Mod Pathol. 2004. V. 17. № 12. P. 1531–1538.

  8. Gouveia G.R., Ferreira S.C., Siqueira S.A.C., et al. Overexpression of OCT-1 gene is a biomarker of adverse prognosis for diffuse large B-cell lymphoma (DLBCL): data from a retrospective cohort of 77 Brazilian patients. // BMC Cancer. 2020. V. 20. № 1. P. 1041.

  9. Jafek J.L., Shakya A., Tai P.Y., et al. Transcription factor Oct1 protects against hematopoietic stress and promotes acute myeloid leukemia. // Exp Hematol. 2019. V. 76. P. 38–48.e2.

  10. Сытина Е.В., Панкратова Е.В. Фактор транскрипции Oct-1 – пластичность и полифункциональность. // Молекулярная биология. 2003. Т. 37 № 5. С. 755–767.

  11. Pankratova E.V., Stepchenko A.G., Portseva T., Mogila V.A., Georgieva S.G. Different N-terminal isoforms of Oct-1 control expression of distinct sets of genes and their high levels in Namalwa Burkitt’s lymphoma cells affect a wide range of cellular processes // Nucleic Acids Res. 2016. V. 44. № 19. P. 9218–9230.

  12. Pankratova E.V., Deyev I.E., Zhenilo S.V., Polanovsky O.L. Tissue-specific isoforms of the ubiquitous transcription factor Oct-1 // Mol Genet Genomics. 2001. V. 266. № 2. P. 239–245.

  13. Pankratova E.V., Stepchenko A.G., Krylova I.D., Portseva T.N., Georgieva S.G. The regulatory interplay between Oct-1 isoforms contributes to hematopoiesis and the isoforms imbalance correlates with a malignant transformation of B cells // Oncotarget. 2018. V. 9. № 52. P. 29892–29905.

  14. Stepchenko A.G., Lyanova B.M., Krylova I.D., Ilyin Y.V., Georgieva S.G., Pankratova E.V. Differentiation of Monocytic Cells Is Accompanied by a Change in the Expression of the Set of Oct-1 Isoforms // Dokl Biochem Biophys. 2018. V. 483. P. 306–308.

  15. Семочкин С.В., Толстых Т.Н., Румянцев А.Г. Миелодиспластические синдромы: терапевтические проблемы и решения // Онкогематология. 2012. Т. 2. С. 57–66.

  16. Овечкина В.Н., Бондаренко СН., Морозова Е.В., Слесарчук О.А., Смирнова А.Г., Екушев К.А., Зубаровская Л.С., Афанасьев Б.В. Эффективность и безопасность применения 5-азацитидина после аллогенной трансплантации гемопоэтических стволовых клеток при остром миелобластном лейкозе и миелодиспластическом синдроме. // Клеточная терапия и трансплантация 2015. Т. 5. С. 71.

  17. Kordella C., Lamprianidou E., Kotsianidis I. Mechanisms of Action of Hypomethylating Agents: Endogenous Retroelements at the Epicenter. // Front Oncol. 2021. V. 11. P. 650473.

  18. Luchina N.N., Krivega I.V., Pankratova E.V. Human Oct-1L isoform has tissue-specific expression pattern similar to Oct-2. // Immunol Lett. 2003. V. 85. № 3. P. 237–241.

Дополнительные материалы отсутствуют.