Известия РАН. Серия физическая, 2020, T. 84, № 11, стр. 1652-1656

3D-печать тетрафункционального полилактида с использованием производных ципрофлоксацина в качестве фотоинициаторов

Е. О. Епифанов 1, П. С. Тимашев 12, Я. В. Фалетров 34, Ю. А. Пискун 3, С. В. Костюк 234, Н. В. Минаев 1, К. Н. Бардакова 12*

1 Федеральное государственное учреждение “Федеральный научно-исследовательский центр “Кристаллография и фотоника” Российской академии наук, Институт фотонных технологий Российской академии наук
Москва, Россия

2 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет), Институт регенеративной медицины
Москва, Россия

3 Белорусский государственный университет, Научно-исследовательский институт физико-химических проблем
Минск, Беларусь

4 Белорусский государственный университет, химический факультет
Минск, Беларусь

* E-mail: arie5@yandex.ru

Поступила в редакцию 18.06.2020
После доработки 10.07.2020
Принята к публикации 27.07.2020

Полный текст (PDF)

Аннотация

Синтезированы гидрофобные производные антибактериального препарата ципрофлоксацина, которые были использованы в качестве фотоинициаторов двухфотонной полимеризации. Для фоточувствительных композиций на основе тетрафункционального поли(D,L-лактида) и производных ципрофлоксацина продемонстрирована методика подбора параметров 3D-печати, влияние параметров 3D-печати на топографию матриксов.

ВВЕДЕНИЕ

Среди способов формирования трехмерных матриксов особо стоит выделить технологии 3D-печати, когда трехмерный матрикс формируется послойно, исходя из цифровой модели желаемого объекта. Одним из наиболее перспективных методов структурирования является метод двухфотонной микростереолитографии – уникальная технология 3D-печати микро- и нанообъектов с использованием фемтосекундного лазерного излучения и жидкого фотополимеризуемого композиционного материала [14]. Метод двухфотонной микростереолитографии позволяет формировать матриксы непосредственно в объеме фоточувствительного материала. Благодаря нелинейному характеру поглощения лазерного излучения, процесс структурирования происходит без нагрева материала, что дает возможность вводить различные биоактивные компоненты (факторы роста, цитокины) в материал матрикса непосредственно перед 3D-печатью. C помощью метода двухфотонной микростереолитографии уже получены трехмерные матриксы из фоточувствительных композиций на основе желатина [5], гиалуроновой кислоты [6, 7], фибрина [8], хитозана [9].

Данная работа является продолжением наших исследований по формированию трехмерных микроструктур из композиций на основе фоточувствительных разветвленных поли(D,L-лактидов). Ранее было показано, что такие матриксы обеспечивают остеогенную дифференцировку стволовых клеток жировой ткани, увеличивают скорость минерализации новообразованной костной ткани [10]. Были синтезированы гидрофобные производные антибактериального препарата ципрофлоксацина, которые дополнительно обладали абсорбцией в области двухфотонного поглощения. Это позволило использовать их в качестве фотоинициаторов 3D-печати, а также реализовать ковалентную фиксацию производных ципрофлоксацина в структуре трехмерных матриксов. В дальнейшем такой подход может обеспечить пролонгированное действие антибактериальных препаратов при хирургических операциях с использованием трехмерных матриксов из тетрафункционального поли(D,L-лактида), также избежать традиционную бактериальную терапию после имплантации.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Синтез гидрофобных производных ципрофлоксацина

Для получения производных ципрофлоксацина в работе использовали фармацевтическую субстанцию ципрофлоксацина (CPF) гидрохлорида, аллил-хлорид, 4-винилбензилхлорид, триэтиламин, метанол, K2CO3. Для подтверждения получения целевых соединений использовали масс-спектрометрический (ESI-MS) анализ с системой LCMS-2020, оснащенной масс-спектрометром.

Синтез производного CPF с аллил хлоридом (CPF-Allyl) осуществляли согласно схеме на рис. 1: ципрофлоксацина гидрохлорид (200 мг, 545 мкмоль, 1 эквивалент) растворяли в 10 мл метанола, добавляли аллилхлорид (50 мкл, 695 мкмоль, избыток 1.3 раза) и карбонат калия (115 мг, 0.833 мкмоль, избыток 3.0 раза). Полученную смесь кипятили в течение 2 ч в круглодонной колбе с обратным холодильником. По окончании реакции полученный раствор охлаждали, отфильтровывали от соли на целлюлозном фильтре, упаривали на ротационном испарителе при пониженном давлении. Получили белое твердое вещество, растворы которого в метаноле обладают характерной синей флуоресценцией при облучении УФ излучением на длине волны 365 нм. ESI-MS: m/z 372.15 [M+H]+ для ${{{\text{C}}}_{{{\text{2}}0}}}{{{\text{H}}}_{{{\text{23}}}}}{\text{F}}{{{\text{N}}}_{{\text{3}}}}{\text{O}}_{{\text{3}}}^{ + }$ (теор. 372.17).

Рис. 1.

Структура и схема синтеза аллил-ципрофлоксацина (CPF-Аllyl).

Синтез производного CPF с винилбензил хлоридом (CPF-VBC) осуществляли согласно схеме на рис. 2: ципрофлоксацина гидрохлорид (200 мг, 545 мкмоль, 1 эквивалент) растворяли в 10 мл метанола, добавляли винилбензил хлорид 90% (153 мкл, 1000 мкмоль, избыток 1.8) и карбонат калия (115 мг, 0.833 мкмоль, избыток 3.0 раза). Полученную смесь кипятили в течение 2 ч в круглодонной колбе с обратным холодильником. По окончании реакции полученный раствор охлаждали, отфильтровывали от соли на целлюлозном фильтре, хроматографировали на силикагеле с использованием этанола в качестве элюента, упаривали на ротационном испарителе при пониженном давлении. Получили белое твердое вещество, растворы которого в метаноле обладают характерной синей флуоресценцией при облучении УФ излучением на длине волны 365 нм. ESI-MS: m/z 448.2 [M+H]+ для ${{{\text{C}}}_{{26}}}{{{\text{H}}}_{{{\text{27}}}}}{\text{F}}{{{\text{N}}}_{{\text{3}}}}{\text{O}}_{{\text{3}}}^{ + }$ (теор. 448.20).

Рис. 2.

Структура и схема синтеза винилбензил-ципрофлоксацина (CPF-VBC).

Для регистрации спектров поглощения растворов производных ципрофлоксацина использовали спектрофотометр Cary-50 (Varian Optical Spectroscopy Instruments).

Оценка липофильности производных ципрофлоксацина

Липофильность веществ оценивалась по значению LogP теоретически рассчитываемому проводилась с помощью программы HyperChem 7.01. Конформация молекул предварительно находилась в приближении полуэмпирического метода модели Аустина AM1 по алгоритму Полака–Райбера (значение градиента – не более 0.05).

Теоретические расчеты взаимодействия полученных производных ципрофлоксацина осуществляли с помощью программ MGL Tools 1.5.6 и Autodock Vina 1.1.2 (область докирования 4 × 4 × × 4 нм с центром по центру белка, параметры exhaustiveness и число моделей были 12 и 5, соответственно). Структуры ДНК гиразы E. coli были из базы Protein Data Bank. Эффективность взаимодействия оценивали по величине расчетной энергии связывания (Есв), которая табулировалась вместе с данными об аминокислотном окружении структур полученных соединений в рассчитанных комплексах.

Подготовка фотополимеризующихся композиций

Для приготовления фотополимеризующихся композиций (ФПК) на первом этапе к навеске производного ципрофлоксацина (4–5.5 мг) добавляли 1 мл трихлорметана. Растворы оставляли перемешиваться на 24 ч, после чего фильтровали через фильтрующую насадку с размером пор 0.45 мкм. На втором этапе в фильтрат вводили тетрафункциональный поли(D,L-лактид) (20 мас. %), модифицированный метакрилоил хлоридом согласно [10] (Мn(ГПХ) = 2340 г/моль; Mw/Mn =1.2, содержание концевых метакрилатных групп (Fn) 91%). ФПК оставляли перемешиваться на 24 ч, после использовали для трехмерной печати.

3D-печать

Подбор параметров 3D-печати производили на комплексе лазерного фемтосекундного микроструктурирования, созданном в ИФТ ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН. Использовали излучение второй гармоники фемтосекундного лазера “ТЕМА-100” длиной волны 525 нм (длительность импульса ~200 фс, частота следования импульсов 80 МГц, средняя мощность до 100 мВт) и 20× планарный микрообъектив с числовой апертурой NA = 0.4. Излучение перемещалось в рабочем поле микроскопического объектива с помощью гальваносканирующей системы со скоростями до 50 мм/с. Смещение по вертикальной оси осуществлялось с помощью прецизионных подвижек с субмикронной точностью позиционирования. Такой подход позволял проводить высокопроизводительное лазерное воздействие на фоточувствительную полимерную композицию и сформировать тестовые микроструктуры за время порядка 10 мин.

Для анализа возможности формирования трехмерных микроструктур использовался матричный подбор параметров воздействия лазерным излучением. Для этого формировались двухмерные матрицы с единичными элементами в виде цилиндров (внешний диаметр 250 мкм, внутренний диаметр 180 мкм, высота 80 мкм), расположенных на предварительно сформированной из ФПК подложке. В двухмерной матрице цилиндров по одной из осей варьировалась средняя мощность лазерного излучения (от 25 мВт, шаг 5 мВт – 4 точки) и плотность заливки отдельными треками лазерного излучения – расстояния между отдельными проходами лазерного луча (от 1 мкм, шаг 1 мкм, 6 точек). Скорость перемещения лазерного луча составляла 25 мм/с.

Для оценки геометрических размеров элементов матрицы после 3D-печати использовали флуоресцентный микроскоп KOZO XJF900. Далее сформированные матрицы отмывали от несшитых компонентов ФПК трихлорметаном в течение 2 ч. Топографию матриц оценивали с помощью метода сканирующей электронной микроскопии (СЭМ) на приборе Phenom ProX.

РЕЗУЛЬТАТЫ

В результате УФ-спектрометрии было подтверждено, что полученные производные ципрофлоксацина сохраняют характерную для исходного соединения оптические свойства, а именно способность к синей флуоресценции (максимум при 420–450 нм) при облучении светом светодиода с максимумом излучения при 365 нм. Следовательно, синтезированные производные ципрофлоксацина прозрачны в области работы фемтосекундного лазера, при этом имеют интенсивную полосу поглощения при 282 нм и более слабый максимум при 320 нм. Способность ципрофлоксацина претерпевать фотоиндуцированные радикальные превращения описана в литературе [11], однако новизна этой работы состоит в том, что это его свойство использовали для лазер-инициируемой контролируемой фотополимеризации функционализированного акрилатом полилактида. Введение аллиловой и винилбензиловой групп в структуру ципрофлоксацина дало производные с повышенной гидрофобностью. Это важно для лучшей растворимости соединения в полилактиде, а также сайты ковалентного присоединения к обсуждаемой полимерной матрице через механизмы радикальной полимеризации [12, 13]. Таким образом, введение двойной ‒С=С– связи в структуру ципрофлоксацина позволяет расширить возможности применения данного антибактериального препарата за счет использования его в качестве фотоинициатора и мономера материалов для двухфотонной полимеризации.

Результаты, представленные в табл. 1, количественно характеризуют увеличение липофильности аллильного и винилбензильного производных по сравнению с исходным ципрофлоксацином.

Таблица 1.  

Теоретически-рассчитанные величины липофильности (log P) для ципрофлоксацина и его полученных производных

Вещество CPF CPF-Allyl CPF-VBC
log P –1.85 –0.74 +1.19

Из полученных данных по докингу следует, что данные соединения способны связываться с ДНК гиразой бактерии E. coli с различной аффинностью, однако различия в нюансах их связывания (аминокислотного окружение фторхинолонового фрагмента) могут вносить существенный вклад в возможность ингибирования активности этого фермента полученными соединениями (табл. 2).

Таблица 2.  

Теоретически-рассчитанные параметры взаимодействия полученных соединений с ДНК-гиразой бактерий E. coli

ДНК гираза B E. coli (код структуры 3g7e)
Соединение CPF CPF-Allyl CPF-VBC
Есв, ккал/моль –8.5 –6.8 –9.4
Аминокислотное окружение в радиусе 0.4 нм от фторхинолонового ядра ALA47; GLY77; ILE78; ILE94; PHE104 PHE104; ASN46; ILE78; ILE94 ARG76; ALA53; PHE104; LYS103; GLU50
ДНК гираза B E.coli (код структуры 5l3j)
Соединение CPF CPF-Allyl CPF-VBC
Есв, ккал/моль –6.7 –7.5 –8.8
Аминокислотное окружение в радиусе 0.4 нм от фторхинолонового ядра ARG190; LYS189; PRO274 ARG276; CYS268; GLU193; HIS37; LYS189; PRO274 ASP49; ASP73; GLU42; GLU50

Подбор параметров 3D-печати проводили в несколько этапов. Вначале, подбиралась минимальная мощность лазерного воздействия, при которой происходило формирование матрицы параметров с четкими контурами. Также оценивалась сохранность матрицы после процедуры отмывки. Затем, при фиксированной мощности лазера формировали матрицу параметров, меняя расстояние между отдельными слоями и расстояние между отдельными проходами луча. Результаты подбора параметров приведены на рис. 3 и 4.

Рис. 3.

Микрофотография (а) и СЭМ (б, в) матрицы подбора параметров для ФПК с CPF-Аllyl в качестве фотоинициатора. (в) – элемент матрицы параметров, структурированный при мощности 60 мВт, расстояние между отдельными слоями – 5 мкм, расстояние между проходами луча – 1 мкм.

Рис. 4.

Микрофотография (а) и СЭМ (б–г) матрицы подбора параметров для ФПК с CPF-VBC в качестве фотоинициатора. Элемент матрицы параметров, структурированный при мощности 35 мВт, расстояние между отдельными слоями – 5 мкм, расстояние между проходами луча – 1 мкм (в). Элемент матрицы параметров, структурированный при мощности 50 мВт, расстояние между отдельными слоями – 8 мкм, расстояние между проходами луча – 4 мкм (г).

Для матрицы параметров из ФПК и CPF-Аllyl в качестве фотоинициатора (рис. 3) мощность структурирования составила 60 мВт, при этом единичные элементы матрицы сохранялись после отмывки только в случае “плотной” заливки линиями c шагом 1 мкм.

Минимальная мощность лазерного излучения при структурировании ФПК с CPF-VBC в качестве фотоинициатора составила 35 мВт. Для ФПК с CPF-VBC (рис. 4) наблюдалась большая стабильность матрицы после отмывки в сравнении с CPF-Аllyl: единичные элементы матрицы сохранялись при расстоянии между проходами луча с шагом 4 мкм, при этом поверхность элементов представляла собой решетчатую структуру (рис. 4г).

Таким образом, методом 3D-печати с использованием фемтосекундного лазерного излучения впервые были сформированы трехмерные матриксы на основе тетрафункционального поли(D,L-лактида) и производных ципрофлоксацина, модифицированных аллил хлоридом и винилбензил хлоридом. Синтезированные производные ципрофлоксацина характеризуются большей липофильностью по сравнению с исходным ципрофлоксацином. В рамках продолжения работы будут изучены биосовместимость и антимикробные свойства трехмерных матриксов на основе разработанных ФПК.

Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ и БРФФИ (проекты № 19-52-04020 и № Х19РМ-034), Министерства науки и высшего образования в рамках выполнения работ по государственному заданию ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН в части развития лазерных аддитивных технологий.

Список литературы

  1. Nguyen A.K., Narayan R.J. // Mater. Today. 2017. V. 20. № 6. P. 314.

  2. Guo R., Xiao S., Zhai X. et al. // Opt. Expr. 2006. V. 14. № 2. P. 810.

  3. Serbin J., Ovsianikov A., Chichkov B. // Opt. Expr. 2004. V. 12. № 21. P. 5221.

  4. Ovsianikov A., Chichkov B., Mente P. et al. // Int. J. Appl. Ceram. Technol. 2007. V. 4. № 1. P. 22.

  5. Koroleva A., Kufelt O., Schlie-Wolter S. et al. // Biomed. Tech. Eng. 2013. V. 58. № 5. P. 399.

  6. Leach J.B., Bivens K.A., Patrick C.W. et al. // Biotechnol. Bioengin. 2003. V. 82. № 5. P. 578.

  7. Leach J.B., Bivens K.A., Collins C.N. // J. Biomed. Mater. Res. Part A. 2004. V. 70. № 1. P. 74.

  8. Koroleva A., Gittard S., Schlie S. et al. // Biofabrication. 2012. V. 4. № 1. Art. № 015001.

  9. Timashev P.S., Bardakova K.N., Minaev N.V. et al. // Appl. Biochem. Microbiol. 2016. V. 52. № 5. P. 508.

  10. Timashev P., Kuznetsova D., Koroleva A. et al. // Nanomed. 2016. V. 11. № 9. P. 1041.

  11. Soldevila S., Cuquerella M.C., Lhiaubet-vallet V. et al. // Free Radic. Biol. Med. 2014. V. 67. P. 417.

  12. Volodina V.I., Tarasov A.I. // Russ. Chem. Rev. 1970. V. 39. № 2. P. 140.

  13. Atsumoto B.A.M., Umagai Ã.T.K., Ota H.A. et al. // Polymer J. 2009. V. 41. № 1. P. 26.

Дополнительные материалы отсутствуют.