Российские нанотехнологии, 2022, T. 17, № 2, стр. 225-233

ВВЕДЕНИЕ

В настоящее время из-за множественных путей выброса наноматериалов в окружающую среду растет их воздействие на экосистемы и здоровье человека [1–3]. Установлено, что кроме токсического воздействия на бактерии [4–6], низшие и высшие растения [7–9] некоторые наночастицы (НЧ) на основе металлов и высвобождающиеся из них ионы металлов могут адсорбироваться в водных организмах и передаваться по пищевым цепям водной экосистемы. Aдсорбция, которая существенно зависит от свойств поверхности НЧ, является первым и важным этапом взаимодействия между НЧ и водными видами животных. После адсорбции НЧ могут накапливаться на поверхности клеток или проходить во внутриклеточную среду путем диффузии или эндоцитоза [10–12].

Адсорбция НЧ индуцирует повреждение клеточной стенки, вызывает тяжелую острую токсичность у пресноводных и морских водорослей Pseudokirchneriella subcapitata, Phaeodactylum tricornutum, Chlorella sp., Dunaliella tertiolecta [13, 14]. Наблюдалось прилипание НЧ (НЧ TiO₂, Al₂O₃, многостенных углеродных нанотрубок) к внешней поверхности Daphnia magna, Ceriodaphnia dubia, Artemia sallina, Danio rerio в течение первых 48 ч от начала воздействия и накопление в кишечнике, липидных везикулах, фагоцитах с последующим снижением их содержания после 48 ч экспозиции [15–17]. Концентрация в Daphnia magna увеличивалась с ростом концентрации НЧ TiO₂ в среде [18]. Cкорость вымывания НЧ Ag у дафний значительно ниже, чем ионов Ag, что свидетельствует о более медленной элиминации НЧ Ag [19]. При экспозиции Ceriodaphnia dubia в течение 6 ч в дисперсных средах с разной концентрацией (1–50 мг/л) НЧ Fe₂O₃ максимальное накопление НЧ наблюдалось при концентрации 20 мг/л [20]. При экспозиции нектонных организмов, таких как рыбы Danio rerio, в дисперсных системах НЧ TiO₂ с концентрациями 0.1 и 1.0 мг/л могут биоаккумулировать НЧ с коэффициентом биоаккумуляции (КБА) 25.38 и 181.38 соответственно [21]. Однако после 25 дней экспозиции карпа (Cyprinus carpio) в дисперсных системах НЧ TiO₂ с концентрациями 3 и 10 мг/л зависимость КБА от концентрации была не столь выражена, и он был равен 675 и 595 соответственно [22].

Накапливаясь в отдельных видах фито- и зоопланктона НЧ переносятся по пищевой цепи, что приводит к значительной биомагнификации: верифицирован перенос квантовых точек из водорослей (Pseudokirchneriella subcapitata) в зоопланктон (Ceriodaphnia dubia) после обработки ими водорослей [23]; квантовые точки CdSe, накапливаясь в бактериях (Pseudomonas aeruginosa), переносятся на Tetrahymena thermophila [24]; высокое содержание НЧ Au в видах первичного звена пищевой цепи приводит к высокому содержанию Au в первичном потребителе Daphnia magna [21]; использование контаминированной Artemia salina в качестве пищи золотой рыбки (Carassius auratus) привело к накоплению НЧ CuO и ZnO в кишечнике, жабрах, печени [25]. Наряду с этим выявлена отрицательная биомагнификация НЧ TiO₂ в упрощенной пищевой цепи из-за депурации НЧ TiO₂ из контаминированного корма [21]. Кроме того, продемонстрирован трехуровневый трофический перенос квантовых точек по водной пищевой цепи [26]. Прием контаминированной НЧ пищи может представлять собой их основной маршрут по трофической сети [21–26], что является потенциальным путем для НЧ войти в пищевую цепь человека.

Таким образом, НЧ могут накапливаться в водных организмах и переноситься на различные трофические уровни, включая водоросли, рыб и бентосных животных. Однако по-прежнему имеются некоторые противоречивые результаты в отношении биомагнификации НЧ в водной среде, требующие дальнейшего изучения.

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

НЧ Pt в виде водного коллоидного раствора с концентрацией 50 мг/дм³ приобретены в лаборатории новых материалов и перспективных технологий Сибирского физико-технического института Томского государственного университета. Коллоидные растворы НЧ получали методом лазерной абляции в дистиллированной воде из слитков металла высокой степени чистоты [27]. Для определения среднего размера НЧ использовали анализатор “Zetasizer Nano ZS” (США) и просвечивающий электронный микроскоп “Phillips CM-12” (Франция). Удельную площадь поверхности измеряли методом БЭТ (метод Брунауэра–Эммета–Теллера) (“TriStar 3000”, США). Для определения концентрации ионной фракции в суспензии применяли атомно-адсорбционной спектроскоп “SOLAAR S2” (США). Концентрацию элемента Pt в образцах биообъектов определяли методом масс-спектрометрии с индуктивно связанной плазмой (спектрометр “Elan DRC-e”, США). Оптическую плотность суспензии клеток водорослей определяли измерителем плотности суспензий ИПС-3 (“Европолитест”, Россия).

Тестируемые дисперсные системы (ДС) НЧ Pt создавали по разработанной нами методике путем разведения исходного коллоидного раствора с концентрацией 50.0 мг/дм³ культивационной средой и последующего ультразвукового редиспергирования (мощность ультразвука 30 Вт/л) в течение 5 мин [2]. Культивационной средой для водорослей служила 10%-ная среда Тамия, для Daphnia magna и Cyprinus carpio – питьевая вода, аэрированная, соответствующая нормативным документам [28]. На основании предыдущих исследований стабильности и токсичности ДС [29] для работы была выбрана концентрация НЧ Pt 1.0 мг/дм³.

Тест-организмы Chlorella vulgaris Beijer и Daphnia magna Straus приобретены в OOO “Европолитест” (Россия). Молодь Cyprinus carpio (масса 3–5 г, один помет) предоставлена ООО “Томский научно-производственный рыбоводный комплекс” (Россия). Условия содержания тест-организмов до и во время эксперимента соответствовали требованиям стандартных методик биотестирования: фотопериод 12/12, рН 7.0–8.2, содержание О₂ 26 мг/л [30]. Ежесуточно обновляли 10% культивационной среды.

Исследования по аккумуляции включали в себя две фазы: накопления и очищения. Пробы для количественного определения концентрации Pt в тест-организмах отбирали в фазе накопления для хлореллы в конце 1, 2, 3, 4, 5, 10 и 20 сут культивирования, для дафний – в конце 1, 5, 10, 20 и 28 сут, для рыб – в конце 1, 5, 10, 20 сут. В фазе очищения – в конце 1 и 7 сут после переноса в среду, свободную от НЧ.

Суспензию хлореллы концентрировали трехкратным сепарированием с промывкой культивационной средой и финальным центрифугированием 15 мин при 1600 об./мин. Осадок подсушивали на фильтровальной бумаге. На анализ передавали образцы сырой массой ~1 г. Всего 33 образца.

Рачков дафний собирали с помощью сита, ополаскивали сверху культивационной водой и подсушивали на марлевой салфетке в течение 5 мин, после чего собирали в пробирку и взвешивали. На анализ передавали образцы сырой массой ~1 г. Всего 42 образца.

Молодь рыб после отлавливания обезболивали с помощью раствора трикаина и декапитировали. Для оценки интегральной аккумуляции проводили гомогенизирование. Для оценки накопления в органах рыб препарировали и готовили гомогенат тканей. На анализ передавали образцы сырой массой ~1 г. Всего 55 образцов.

Параллельно по той же схеме проводили исследования с культивационной средой, свободной от НЧ.

Статистическая обработка полученных данных выполнена в программах Statistica 10 и Excel 2010.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Представленные в работе результаты относятся к части процесса транслокации наноматериалов в окружающей среде – транслокации в пищевой цепи гидробионтов (рис. 1).

Использованные в исследовании маркерные НЧ характеризовались следующими показателями: средний размер НЧ Δ₅₀ = 5 нм, удельная площадь поверхности S_sp ≈ 15 м²/г, концентрация ионной фракции в суспензии не превышала 0.2%.

Аккумуляция НЧ Pt хлореллой. Вопрос о дисперсности аккумулированных частиц не рассматривали, так как во множестве публикаций показано накопление именно НЧ в разнообразных биологических объектах [23–25]. В проведенной работе в пользу аккумуляции Pt в форме НЧ свидетельствует как ее низкая растворимость и, соответственно, практическое отсутствие ионной формы, так и накопление в тканях мышц и скелета даже при поступлении через желудочно-кишечный тракт.

При культивировании одноклеточной водоросли Chlorella в дисперсной системе НЧ Pt концентрация элемента Pt через 24 ч возрастала до 570 ± 96 мкг/г (рис. 2а). По мере увеличения времени экспозиции концентрация Pt в хлорелле снижалась и через 20 сут составляла 106 ± 18 мкг/г.

Одним из важных параметров для оценки накопления НЧ гидробионтами из среды является фактор биоаккумуляции (ФБА), который отражает отношение концентрации вещества в тест-организме к концентрации вещества в среде культивирования тест-организма [31, 32] и вычисляется по формуле: ФБА = С_хл/С_w, где С_хл – концентрация химического элемента в хлорелле, С_w – концентрация химического элемента в культивационной среде.

Учитывая начальную концентрацию НЧ Pt, равную 1 мг/л (1 мкг/мл), следовало бы ожидать диапазон КБА от 100 до 600, однако в реальности происходит ряд процессов, существенно изменяющих этот показатель.

Контакт НЧ с водной средой при их попадании в экосистему приводит к сложной цепи физико-химических перестроек структуры ДС, одним из важнейших звеньев которой является агрегация с последующей седиментационной или флотационной элиминацией НЧ из среды обитания гидробионтов в донные отложения или на поверхность водоемов. Процессы элиминации НЧ наряду с концентрационными параметрами определяются рядом факторов: электролитным составом среды, температурой, рН среды, зарядом частиц, степенью аэрации и т.д. [33].

Кроме того, существенный вклад вносят процессы захвата НЧ клетками хлореллы в первые 24 ч культивирования (концентрация в среде при этом снижается с 1.0 до 0.005 мг/л). Последующее добавление в тест-систему суспензий НЧ не может полностью скомпенсировать это изменение.

Расчетным методом оценить устойчивость ДС, особенно при ее полиэлектролитном составе, характерном для природных водных сред, крайне сложно. В связи с неустойчивостью дисперсной системы НЧ Pt, согласно принципам согласованной на глобальном уровне системы классификации опасности и маркировки химических веществ [34], при определении КБА необходимо проводить расчеты с учетом эффективной концентрации поллютанта в среде, которая рассчитывается как среднее геометрическое из начальной и конечной концентрации НЧ за период экспозиции.

Однако исследования [29] показали, что вычисление эффективной концентрации по формуле С ^e = (С ⁱⁿС ^fin)^1/2, где С ⁱⁿ и С ^fin – начальная и конечная концентрация соответственно, возможно только при разовом введении НЧ. При повторных внесениях НЧ в концентрации С ⁱⁿ (недопустимо внесение в более высоких концентрациях, так как возможны эффекты кратковременного воздействия повышенных концентраций на тест-организмы) в первые сутки $C_{1}^{e}$ = (С ⁱⁿС ⁱⁿ(e^–Ke×24))^1/2 = = С ⁱⁿe^–Ke×12. Коэффициент элиминации (K_е) является коэффициентом уравнения экспоненциальной аппроксимации С_t = C₀e^–Ket графика снижения концентрации взвешенных НЧ при отстаивании, где C₀ – исходная концентрация НЧ, t – время экспозиции в часах. Этот показатель, характеризующий устойчивость ДС, эффективную концентрацию воздействия диспергированных НЧ и возможное время их воздействия на тест-организм, необходимо определять экспериментально. Согласно [29] эта величина для используемых дисперсных систем НЧ Pt 1.0 мг/л составляет: в культивационной среде для хлореллы – 0.0144 ч^–1, в культивационной среде для дафний – 0.0201 ч^–1, в культивационной среде для рыб – 0.0261 ч^–1 .

Для последующих i = (n – 1) сут $C_{i}^{m}$ = (($C_{{i - 1}}^{{{\text{fin}}}}$ + + С ⁱⁿK_rep)$C_{i}^{{{\text{fin}}}}$)^1/2, где $C_{{i - 1}}^{{{\text{fin}}}}$ – конечная концентрация в предыдущие сутки, K_rep – коэффициент замены культивационной среды в долях объема. Тогда среднюю концентрацию за период n > 1 суток можно вычислить по формуле

Альтернативой являются многократный (в течение каждых суток) отбор проб культуры, очистка их от тест-организмов, измерение концентраций НЧ в среде методом масс-спектрометрии и интегрирование полученных значений. Однако это приводит как к нарушению условий культивирования, так и к существенному удорожанию получения результатов.

Другим важным источником ошибки в определении ФБА является рост хлореллы в процессе экспозиции. При малых количествах НЧ, вносимых в среду, клетки водорослей последующих поколений являются “разбавителями”, не ассоциировавшими НЧ в тех же количествах, что и клетки первого поколения. Таким образом, необходимо учитывать скорость роста хлореллы и корректировать на него как величину определяемой концентрации НЧ, адсорбированных хлореллой, так и значение ФБА.

На рис. 2б показана динамика роста хлореллы, определенная стандартным методом измерения оптической плотности суспензии [35].

Отчетливо видно, что продолжительность фазы экспоненциального роста составляет трое суток. В эту фазу экспоненциального роста культуры в контрольной среде коэффициент среднего удельного прироста µ = lnC_t/t составил 0.71. При культивировании Clorella vulgaris Beijer в дисперсионной среде НЧ Pt коэффициент среднего удельного прироста увеличивается до µ = 1.04, что указывает на стимулирующий эффект НЧ Pt в фазе экспоненциального роста.

Исходя из полученных данных и применяя указанную коррекцию, можно рассчитать основные показатели биоаккумуляции: k_cl – коэффициент скорости очищения тест-организмов после переноса в среду, свободную от НЧ, и t_1/2 – время “полуочищения” – период, за который концентрация ассоциированных НЧ снижается в 2 раза:

Результаты, полученные через 1 и 7 сут отмывания, показывают, что процесс очищения со временем замедляется. В первые сутки k_cl = = 0.16/сут, t_1/2 = 4.2 сут, в интервале 1–7 сут k_cl = = 0.10/сут, t_1/2 = 7.0 сут. Это может быть связано с быстрым начальным очищением культуры от НЧ, слабо связанных с поверхностью клеток.

Коэффициент скорости накопления НЧ (k_up) вычисляется по формуле

Поскольку C_хл и C_w изменяются по ходу фазы накопления, значения коэффициента также не постоянны (табл. 1).

Кинетический фактор биоаккумуляции (ФБА_к) вычисляется по формуле

Обращает на себя внимание различие в величинах ФБА. Максимальное значение ФБА составляет 9400 ± 1800, в то время как ФБА_к на вторые сутки экспозиции достигает значения 31 000 ± 5800. Данный факт может отражать потенциальную способность культуры хлореллы накапливать значительное количество НЧ. Реализация этой возможности ограничивается снижением пассивного сорбирования НЧ в связи с насыщением локусов связывания, замедлением роста хлореллы вне фазы экспоненциального роста и, возможно, ограниченностью количества НЧ, способных в естественных условиях длительное время существовать в свободном состоянии. При этом высокий уровень накопления НЧ Pt уже в первые сутки экспозиции указывает на существенную значимость этого процесса в возможной передаче НЧ вверх по пищевой цепи.

Аккумуляция НЧ Pt дафниями из культивационной среды. В данной и последующих сериях экспериментов проводили измерения содержания Pt в контрольных условиях без внесения НЧ. Во всех случаях зарегистрированная в тест-организмах концентрация Pt не превосходила значения 0.0002 ± 0.0004 мкг/г массы.

При инкубировании в среде, содержащей НЧ Pt, концентрация элемента Pt в рачках дафний максимально возросла через 5 сут до 1680 ± 96 мкг/г. В дальнейшие дни отмечалось снижение концентрации – до 860 ± 45 мкг/г через 28 сут (рис. 3а). Снижение концентрации Pt в рачках дафний с 10 по 28 сут экспозиции частично связано с ее потерей при двух–трех линьках, которые происходили за это время, с выведением через пищеварительный тракт и с рождением молоди, которую не передавали на анализ.

Результаты, полученные через одни сутки отмывания, показывают, что очищение дафний от накопленных НЧ Pt проходит очень быстро: k_cl= = 5.2/сут (0.2/ч), t_1/2 = 0.13 сут (3.2 ч).

Это указывает на накопление НЧ на поверхности тела и в пищеварительном тракте дафний и их достаточно быстрое вымывание при переходе в свободную от НЧ среду. Кроме того, присутствует фактор адгезии НЧ к экзоскелету, описанный в [36] для НЧ TiO₂. Подтверждением этому может служить общий баланс аккумулированной Pt за сутки инкубации: при весе дафнии ~50 мг и фильтрации до 10 дм³ жидкости в сутки 1 г дафний из среды с концентрацией 1 мг/дм³ может поглотить не более 200 мкг Pt. Превышение этого значения указывает на процесс адгезии.

Основные показатели биоаккумуляции также не постоянны и зависят от длительности экспозиции (табл. 2).

Таким образом, НЧ, попадающие в гидросферу, накапливаются в организмах Daphnia magna в большом количестве уже в первые сутки после поступления в среду обитания и достигают максимальной концентрации в течение одной недели. Количество накопленных НЧ (концентрирование приблизительно в 2 тыс. раз) может представлять опасность для консументов более высокого трофического уровня, а факт такого накопления должен учитываться при оценке возможного влияния объектов наноиндустрии на прилегающую территорию.

Аккумуляция НЧ Pt дафниями при кормлении контаминированными водорослями. В данном эксперименте в качестве корма для дафний использовали суспензию хлореллы, выращенной при 24-часовой культивации в дисперсной системе НЧ Pt с концентрацией 1.0 мг/дм³. После отмывания от среды Тамия и свободных НЧ (как указано выше) концентрат хлореллы разводили культивационной водой до оптической плотности, равной 0.300 ед., что соответствует 1.7 × 10⁷ клеток/мл суспензии. Экспозицию дафний проводили в двухлитровых емкостях из расчета 1 л культивационной среды на 25 дафний. На 1 литр вносили 20 мл суспензии корма.

Исходя из среднего диаметра клетки хлореллы 2.5 мкм, указанной численности клеток в миллилитре суспензии, концентрации Pt 600 мкг/г хлореллы, при разовом кормлении в тест-систему вносили ~1.6 мкг Pt на литр культивационной среды (1.6 × 10^–9 г/г среды).

Через 24 ч после поступления НЧ в виде пищи с контаминированными водорослями концентрация Pt в организме дафний составила 5.44 ± ± 0.91 мкг/г и через 5 сут кормления увеличилась до 12.83 ± 2.16 мкг/г (рис. 3б). Таким образом, в первые сутки ФБА составил 3400, что превосходит биоконцентрирование из среды.

Коэффициент скорости очищения k_cl= 0.7/сут (0.03/ч), t_1/2 = 1 сут, что существенно меньше, чем при поступлении непосредственно из среды. Это указывает на возможный переход НЧ из желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) в ткани и затрудненное очищение после переноса в интактную среду.

Основные показатели биоаккумуляции в зависимости от длительности экспозиции приведены в табл. 3.

Полученные данные согласуются с данными по биоконцентрации, представленными в [22]. Так, для НЧ Au диаметром 4 и 18 нм показано накопление за четверо суток с ФБА 6641 и 10 207 [37]. Однако не выдерживают критики приведенные здесь же расчеты по биоаккумуляции от контаминированных водорослей Selenastrum capricornutum без учета количества вносимых с водорослями НЧ.

Отметим сложность моделирования данных процессов в применении к НЧ. В условиях инкубирования одновременно протекают несколько процессов:

– поглощение дафниями клеток хлореллы, контаминированной НЧ, определяемое коэффициентом трофической активности;

– переход части НЧ в ткани дафний (активный и пассивный);

– выброс из организма дафний части НЧ с отходами жизнедеятельности (k_cl);

– снижение удельной концентрации НЧ в биомассе дафний, связанное с “разбавлением” растущей биомассой (k_g).

Кроме того, протекают процессы очищения клеток хлореллы от НЧ, определяемые k_cl хлореллы, и переход НЧ в культивационную среду с последующей агрегационно-седиментационной элиминацией. Это создает существенные сложности для моделирования и предполагает – как оптимальный – путь непосредственного измерения указанных величин для оценки потенциальных рисков попадания НЧ в окружающую среду.

Аккумуляция НЧ Pt рыбами из культивационной среды. Эксперимент по оценке ФБА молодью Carpio проводили по стандартной методике [31]. Через 24 ч инкубирования в опытной среде, содержащей Pt размером 5 нм в концентрации 1 мг/л, концентрация элемента Pt в организме рыб увеличилась незначительно – до 0.7 ± 0.1 мкг/г. Максимальный рост концентрации наблюдался через 10 сут – до 51.7 ± 10.0 мкг/г (рис. 4а). Последующее снижение концентрации до 18.8 ± 3.2 мкг/г может быть связано с активацией защитных механизмов, препятствующих накоплению тяжелых металлов.

Эффективная среднесуточная концентрация была рассчитана для каждого периода с учетом ежедневной замены раствора на 10% и полной смены раствора 1 раз в 10 дней. Одновременно с каждым отбором проб Carpio проводили анализ проб культивационной воды. Исходя из полученных данных коэффициент скорости очищения k_cl = 5/сут (0.1/ч), t_1/2 = 0.3 сут (6.73 ч).

Очищение Carpio от накопленных НЧ проходит очень быстро. Возможно, преимущественное накопление НЧ происходит на коже и в пищеварительном тракте Carpio, а в фазу очищения происходит их достаточно быстрое вымывание при переходе в свободную от НЧ среду. Это предположение подтверждают результаты анализа накопления в органах и тканях карпиков (рис. 5).

Основные показатели биоаккумуляции в зависимости от длительности экспозиции приведены в табл. 4.

Аккумуляция НЧ Pt рыбами при кормлении контаминированными дафниями. В использованной модели контаминирования Carpio по пищевой цепи источником НЧ являлись дафнии в возрасте 4–6 дней после 24-часового культивирования в дисперсной системе НЧ Pt. Концентрация НЧ, ассоциированных с дафниями, составляла 3063 ± ± 582 мкг/г.

Carpio содержали в культивационной воде НЧ из расчета 3 л воды на 1 г влажного веса рыб. Ежедневно проводили замену 10% культивационной воды на свежую. Кормление проводили в объеме 1–2% от влажного веса рыбы. Такой объем корма позволяет поддерживать постоянный вес рыбы [31]. Исходя из концентрации НЧ, накопленных в дафниях, массы дафний, которую использовали для кормления, и объема воды, концентрация НЧ Pt в модели составляла – 0.02 мг/л (0.02 мкг/г среды).

Через 24 ч после поступления НЧ в виде пищи концентрация Pt в гомогенате рыб возросла до 6.8 ± 1.4 мкг/г с последующим снижением и повторным ростом до 5.9 ± 1.2 мкг/г на 20-е сутки (рис. 4б).

Несмотря на существенное различие концентраций НЧ, вносимых в среду указанными методами (1.0 мг/л в ДС и 0.02 мг/л в дафниях), накопленная концентрация в рыбах различается не столь существенно – максимальные зарегистрированные значения составляют соответственно 51.7 и 6.8 мкг/л.

Очищение от НЧ в данном эксперименте происходило значительно медленнее, чем в серии с накоплением НЧ из среды. Коэффициент скорости очищения (k_cl) составляет 0.8/сут (0.03/ч), t_1/2 = 0.9 сут (21.7 ч), что в 3 раза медленнее, чем в эксперименте по накоплению НЧ из среды. Основные показатели биоаккумуляции в зависимости от длительности экспозиции приведены в табл. 5.

Распределение НЧ Pt в тканях и органах Carpio при аккумуляции из культивационной среды. Как после первых суток экспозиции, так и в последующие сроки распределение накопленной Pt по тканям было неравномерным (рис. 5). Если рассматривать аккумуляцию в первые сутки как модель аварийного сброса наноматериалов, то опасность употребления и изготовления животноводческих кормов уменьшается в ряду: ткани ЖКТ–жабры–кожа–мышцы–скелет. При длительном воздействии опасность уменьшается в ряду: ткани ЖКТ–жабры–мышцы–скелет–кожа.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Установлено, что введение НЧ Pt в среду обитания гидробионтов приводит к аккумуляции с хлореллой с коэффициентом, близким к 10 000 (9400 ± 1800).

Накопление Pt из окружающей среды в ракообразных и рыбах приблизительно одинаково (ФБА_max = 2000 ± 380 и 2400 ± 440 соответственно). Но при передаче по пищевой цепи наблюдается более высокий уровень аккумуляции НЧ в Daphnia (ФБА_max = 8000 ± 1300), чем в Carpio (ФБА_max = 340 ± 70), что, по всей видимости, связано с накоплением НЧ в их корме – хлорелле.

После аварийного сброса наноматериалов в среду для очищения рыб от НЧ необходима экспозиция в чистой воде в течение не менее трех суток.

Исследование выполнено при финансовой поддержке Российского научного фонда (грант № 20-17-00185).