Российские нанотехнологии, 2024, T. 19, № 3, стр. 295-300
РАЦИОНАЛЬНАЯ ОПТИМИЗАЦИЯ АПТАМЕРА, СПЕЦИФИЧНОГО К ПОВЕРХНОСТИ РАКОВЫХ КЛЕТОК ЛЕГКОГО, С ПОМОЩЬЮ МАТЕМАТИЧЕСКОГО МОДЕЛИРОВАНИЯ И МАЛОУГЛОВОГО РЕНТГЕНОВСКОГО РАССЕЯНИЯ
П. В. Артюшенко 1, 3, И. А. Щугорева 1, 3, О. С. Коловская 1, 3, А. В. Рогова 1, 3, Р. В. Морячков 1, В. Н. Заблуда 1, 2, Т. Н. Замай 1, 3, *, А. В. Крат 3, 4, Р. А. Зуков 3, 4, Ф. Н. Томилин 1, 2, А. С. Кичкайло 1, 3
1 Федеральный исследовательский центр “Красноярский научный центр Сибирского отделения
Российской академии наук”
Красноярск, Россия
2 Институт физики им. Л.В. Киренского СО РАН
Красноярск, Россия
3 Красноярский государственный медицинский университет им. профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого
Красноярск, Россия
4 Красноярский краевой клинический онкологический диспансер им. А.И. Крыжановского
Красноярск, Россия
* E-mail: annazamay@yandex.ru
Поступила в редакцию 07.12.2023
После доработки 02.04.2024
Принята к публикации 09.04.2024
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Аннотация
Аптамеры, короткие олигонуклеотиды, способны к высокоаффинному связыванию с мишенями благодаря уникальной структуре. Укорочение аптамера с сохранением активного центра позволит увеличить аффинность и снизить стоимость синтеза. На примере аптамера LC-224 апробирован способ рациональной оптимизации его длины и проверки правомерности разработанного подхода. Применение компьютерного моделирования и метода малоуглового рентгеновского рассеяния показало возможность оптимизации структуры аптамера путем удаления нуклеотидов, не принимающих участия в связывании с мишенью. Показано, что усечение аптамера не снижает аффинность и специфичность ДНК-аптамера. Таким образом, теоретические и экспериментальные исследования продемонстрировали успешный опыт оптимизации структуры ДНК-аптамера путем его укорочения без нарушения его аффинности и специфичности к своей мишени.
Полные тексты статей выпуска доступны в ознакомительном режиме только авторизованным пользователям.
Список литературы
Ni X., Castanaris M., Lupold S.E. // Curr. Med. Chem. 2011. V. 18. P. 4206. https://doi.org/10.2174/092986711797189600
Jia M., Sha J., Li Z. et al. // Food Chem. 2020. V. 317. P. 126459. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.126459
Zheng X., Hu B., Gao S.X. et al. // Toxicon. 2015. V. 101. P. 41. https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2015.04.017
Dhiman A., Anand A., Malhotra A. et al. // Sci. Rep. 2018. V. 8. P. 17795. https://doi.org/10.1038/s41598-018-35985-1
Hammel M. // Eur. Biophys. 2012. V. 41. P. 789. https://doi.org/10.1007/s00249-012-0820-x
Rambo R.P., Tainer J.A. // Annu. Rev. Biophys. 2013. V. 42. P. 415. https://doi.org/10.1146/annurev-biophys-083012-130301
Morozov D., Mironov V., Moryachkov R.V. et al. // Mol. Ther. Nucleic. Acids. 2021. V. 25. P. 316. https://doi.org/10.1016/j.omtn.2021.07.015
Zamay G.S., Ivanchenko T.I., Zamay T.N. et al. // Mol. Ther. Nucleic. Acids. 2017. V. 6. P. 150. https://doi.org/10.1016/j.omtn.2016.12.004
Zuker M. // Nucleic Acids Res. 2003. V. 31. № 13. P. 3406. https://doi.org/10.1093/nar/gkg595
Magnus M., Boniecki M., Dawson W., Bujnicki J.M. // Nucleic Acids Res. 2016. V. 44. P. W315. https://doi.org/10.1093/nar/gkw279
Humphrey W., Dalke A., Schulten K. // J. Mol. Graph. 1996. V. 14. P. 33. https://doi.org/10.1016/0263-7855(96)00018-5
Abraham M.J., Murtola T., Roland S. et al. // SoftwareX. 2015. V. 1. P. 19. https://doi.org/10.1016/j.softx.2015.06.001
Maier J.A., Martinez C., Kasavajhala K. et al. // J. Chem. Theory Comput. 2015. V. 11. P. 3696. https://doi.org/10.1021/acs.jctc.5b00255
Jorgensen W.L., Chandrasekhar J., Madura J.D. et al. // J. Chem. Phys. 1983. V. 79. P. 926. https://doi.org/10.1063/1.445869
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Российские нанотехнологии