Журнал физической химии, 2021, T. 95, № 5, стр. 810-817
Изучение продуктов взаимодействия гидразинов с изотиоцианатами методами хроматографии и масс-спектрометрии
А. В. Ульянов a, К. Е. Полунин a, И. А. Полунина a, А. К. Буряк a, *
a Российская академия наук, Институт физической химии и электрохимии им. А.Н. Фрумкина
119071 Москва, Россия
* E-mail: akburyak@mail.ru
Поступила в редакцию 15.06.2020
После доработки 15.06.2020
Принята к публикации 17.07.2020
Аннотация
Методом масс-спектрометрии в режимах электронной ионизации и матрично-активированной лазерной десорбции/ионизации в сочетании с методами газовой и жидкостной хроматографии изучены продукты взаимодействия алкилгидразинов с этил-, аллил- и фенилизотиоцианатами. Оптимизированы условия хроматографического разделения реакционных смесей и масс-спектрометрической идентификации целевых соединений в on-line и off-line режимах. Определены физико-химические характеристики сорбции тиосемикарбазидов. Изучены процессы распада и фрагментации их метастабильных протонированных молекул. Предложены схемы образования фрагментных и характеристических ионов тиосемикарбазидов в различных режимах ионизации.
Соединения с изоцианатной группой широко используются при хроматографическом анализе аминов [1]. В [2, 3] было предложено использовать изотиоцианаты в качестве дериватизирующих реагентов при проведении хроматографических анализов алкилгидразинов в объектах окружающей среды. Дериватизация алкилгидразинов позволяет превратить эти полярные и чрезвычайно токсичные соединения, которые характеризуются крайней неустойчивостью на воздухе, в стабильные гидрофобные производные [3]. Преимуществом изотиоцианатов по сравнению с другими типами дериватизирующих реагентов (ангидридами и галоидангидридами карбоновых кислот, карбонильными соединениями) является отсутствие образования в процессе реакции побочных продуктов и воды, осложняющих анализ. S,N-дериваты гидразинов, или тиосемикарбазиды, представляют и самостоятельный интерес как биологически активные соединения, проявляющие фунгицидную, инсектицидную и гербицидную активность [4].
Жидкостная хроматография на сегодняшний день может считаться одним из наиболее совершенных методов определения алкилгидразинов в различных природных объектах. Но существующие хроматографические методы их анализа имеют ряд недостатков: неэффективное хроматографическое разделение пары реагент–продукт, низкая чувствительность и селективность, необходимость долгой и трудоемкой пробоподготовки, невозможность прямого определения гидразинов спектрофотометрическими методами, сложности при исследовании мало летучих и термолабильных соединений [5]. Применение масс-спектрометра в качестве детектора позволяет увеличить чувствительность и селективность методов анализа алкилгидразинов и значительно упростить пробоподготовку за счёт исключения стадии очистки образца. Для масс-спектрометрической идентификации термолабильных и мало летучих соединений эффективно использование методов “мягкой” ионизации, в частности, лазерной десорбции/ионизации (ЛДИ) [6]. В методе ЛДИ импульсы лазерного излучения приводят к испарению и переводу анализируемого вещества с поверхности мишени в газовую фазу. Добавление матрицы (метод матрично-активированной лазерной десорбции/ионизации, МАЛДИ) позволяет обеспечить эффективное поглощение лазерного излучения и ионизацию анализируемых соединений [7]. МАЛДИ-МС можно использовать как отдельный аналитический метод, а также в сочетании с хроматографическими методами разделения в режиме off-line. Это обеспечивает экспрессный и надежный метод анализа смесей, позволяет существенно увеличить его чувствительность.
Целью работы являлось исследование продуктов взаимодействия алкилгидразинов с изотиоцианатами (тиосемикарбазидов) методами хроматографии и масс-спектрометрии, определение физико-химических характеристик их сорбции и сравнение характеристической масс-фрагментации тиосемикарбазидов в режимах электронной ионизации и МАЛДИ.
ЭКCПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
4-Этил-, 4-аллил- и 4-фенил-1,1-диметилтиосемикарбазиды (I, II и III, соответственно) были получены по методике [2] путем добавления свежеперегнанного несимметричного диметилгидразина (НДМГ) (Нефтеоргсинтез, Салават) к растворам этил-, аллил- или фенилизотиоцианатов в дихлорметане (Aldrich, США). S,N-производные 1-метил- и 1,1-метилэтил-гидразинов (Aldrich, США) получали аналогичным образом. Реакции дериватизации протекают при 20°С без доступа воздуха за 1 ч.
Анализ реакционных смесей проводили на хромато-масс-спектрометре JEOL JMS-D300 (Jeol, Япония) с газовым хроматографом НР-5890 (Hewlett-Packard, США) и кварцевой капиллярной колонкой с неподвижной фазой DB-5 (J&W Scientific Inc., США) размером 30 м × 0.35 мм. Температура инжектора повышалась до 300°C со скоростью 5°C/мин, скорость газа-носителя (гелия) – 5 мл/мин, деление потока 1:10.
Хроматографический анализ методом ВЭЖХ проводили на хроматографе Agilent 1200 (Agilent Technologies, США) с УФ диодно-матричным детектором Agilent G1315B, программным обеспечением ChemStation А.10.02. и колонками: Zorbax-С18 Eclipse XDB (Agilent Technologies, США), Zorbax-CN (DuPont Instruments, США) размерами 4.6 × 150 мм, Hypercarb (Thermo Scientific, США) размером 2.1 × 100 мм. Удельная поверхность по БЭТ силикагелей с привитыми группами –С18 и –CN, составляла 180 м2/г, размер зерна 5 мкм, диаметр пор 80 и 70 Å, соответственно. Удельная поверхность пористого графитированного углерода ПГУ – 120 м2/г, размер зерна 5 мкм, диаметр пор 250 Å. Хроматографические разделения проводили в изократическом режиме при скорости элюента 0.5 мл/мин. В качестве элюентов использовали 50% раствор метанола в воде и 30% раствор пропанола-2 в н-гексане. Все растворители от Sigma-Aldrich (США) имели квалификацию HPLC. Идентификацию соединений проводили по поглощению при 240 нм.
Расчет индексов удерживания Ir соединений проводили в соответствии с инкрементами функциональных групп их молекул [8]. Фактор липофильности $\log P$ оценивали с помощью алгоритма XLogP [9].
Масс-спектры электронной ионизации (ЭИ) получены на масс-спектрометре JEOL JMS-D300 с прямым вводом образца в режиме положительных ионов в диапазоне масс 40–450 Да. Энергия ионизирующих электронов 70 эВ, ускоряющее напряжение 3 кВ, ток ионизации 300 мкА. Идентификацию соединений осуществляли с помощью программы библиотечного поиска и на основании расшифровки масс-спектров с использованием основных закономерностей фрагментации [10].
Масс-спектрометрические эксперименты с ЛДИ выполнены на масс-спектрометре Ultraflex II TOF (Bruker Daltonics, Германия) с азотным лазером (λ = 337 нм, энергия лазера 110 мкДж, частота импульса 20 Гц, количество импульсов 25–50, время между импульсами 1 мкс) и времяпролетным масс-анализатором с рефлектроном. Ускоряющее напряжение и напряжение на рефлектроне – 25 и 26.5 кВ, соответственно. Спектры получены в режиме регистрации положительных ионов и обработаны с помощью программного обеспечения FlexControl 3.4 и FlexAnalysis 3.4. (Bruker, Германия). Калибровку масс осуществляли по методам внешнего и внутреннего стандарта, используя значения масс пиков ионов матриц. Для изучения фрагментации исходных метастабильных протонированных молекул тиосемикарбазидов применяли режим распада за пределами ионного источника. Масс-спектры ионов-продуктов регистрировали с помощью метода FAST (Bruker Daltoniсs).
Раствор матрицы DHB – 2,5-дигидроксибензойной кислоты (Bruker Daltoniсs, Германия), с концентрацией 1 мг/мл готовили в 80% растворе метанола в воде. На поверхность металлической мишени AnchorChip 600 мкм (Bruker) наносили 1 мкл матрицы и после ее высушивания при комнатной температуре добавляли 1 мкл анализируемого раствора.
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
В газовой хроматографии разделение смесей обусловлено селективным взаимодействием между веществами и неподвижной фазой. Как видно на хроматограмме реакционной смеси (рис. 1а), молекулы тиосемикарбазидов сильнее взаимодействуют с полисилоксановой неподвижной фазой, чем более полярные молекулы изотиоцианатов, причем время удерживания tR плоской молекулы аллилтиосемикарбазида II (sp2-гибридизация атома углерода) больше, чем tR молекулы этилтиосемикарбазида I (sp3-гибридизация атома углерода). Обнаружена линейная зависимость между экспериментально измеренными значениями tR тиосемикарбазидов и изотиоцианатов и теоретически рассчитанными индексами их удерживания Ir (рис. 1б), которая может быть описана уравнением y = 32.113x + 561.55 с коэффициентом корреляции r2 = 0.9976. Небольшая разница между индексами удерживания тиосемикарбазидов I и II (1351 и 1439 соответственно) может затруднить полное разделение этих соединений методом газовой хроматографии.
Алкильный заместитель обеспечивает более высокую летучесть этилтиосемикарбазида I. Фенильный заместитель фенилтиосемикарбазида III вносит большой вклад в его значение Ir = 1824 на полисилоксановой неподвижной фазе, однако это мало летучее и термолабильное соединение полностью разлагается в хроматографической системе на диметилгидразин и фенилизотиоцианат.
В масс-спектре ЭИ тиосемикарбазида I (табл. 1) присутствуют интенсивный пик молекулярного иона с m/z 147 и пики характеристических ионов с m/z 59 и 60, образовавшихся, предположительно, в результате элиминирования иона диметилгидразина с m/z 60 и его фрагмента c m/z 59.
Таблица 1.
m/z | ||
---|---|---|
Et-тиосемикар-базид I | All-тиосемикар-базид II | Ph-тиосемикар-базид III |
44, 45, 59, 60, 104, 147 | 44, 45, 59, 60, 115, 116, 159 | 44, 45, 59, 60, 77, 93, 152, 161, 195 |
В масс-спектре II помимо мало интенсивного пика молекулярного иона с m/z 159 присутствует две пары интенсивных пиков характеристических ионов с m/z 59, 60 и 115, 116, которые удобно использовать при идентификации микроколичеств II. Их образование, вероятно, можно объяснить внутримолекулярной циклизацией молекулярного иона в 2‑имидазолидинтионовый цикл с последующим элиминированием из молекулярного иона диметиламиногруппы и метилимина формальдегида (схема 1). Предполагается, что структуры фрагментных ионов стабилизированы за счет внутримолекулярной водородной связи либо таутомерных переходов.
Дополнительным критерием идентификации соединений I и II может служить время их удерживания или индексы удерживания.
Таким образом, метод газовой хроматографии позволяет эффективно разделить тиосемикарбазиды I, II и отделить их от избытка исходных реагентов. Однако этот метод не применим для анализа мало летучих и термолабильных соединений типа фенилтиосемикарбазида III. Более перспективным для исследования всех синтезированных тиосемикарбазидов является метод жидкостной хроматографии с масс-спектрометрической идентификацией соединений в режиме off-line.
На рис. 2 приведены результаты разделения смесей трех тиосемикарбазидов на ПГУ и модифицированных силикагелях с полярным элюентом (50 об. % метанола в воде). Тиосемикарбазиды I–III имеют одинаковый набор функциональных групп и отличаются только углеводородным радикалом, поэтому их факторы хроматографического удерживания при одинаковом составе элюента преимущественно будут определяться гидрофобными взаимодействиями с сорбентом. Во всех случаях эти взаимодействия усиливаются с увеличением количества атомов углерода в гидрофобном радикале тиосемикарбазидов: Et–All–Ph (рис. 2). В той же последовательности увеличиваются факторы липофильности тиосемикарбазидов $\lg P$: 1.11–1.30–2.35, которые характеризуют способность вещества к переходу из неполярной фазы в полярную; и времена удерживания тиосемикарбазидов на Zorbax-CN из неполярного элюента (30% раствор пропанола-2 в н-гексане) при разделении смесей в режиме НФ ВЭЖХ. В условиях ОФ ВЭЖХ на колонках Hypercarb и Zorbax-С18, а также в условиях НФ ВЭЖХ на колонке Zorbax-CN достигается хорошее разделение компонентов реакционных смесей и выделение целевых соединений.
При увеличении температуры удерживание соединений I–III закономерно снижается, но изменения порядка выхода веществ не происходит. В интервале температур 298–318 К для всех использованных сорбентов зависимости факторов удерживания тиосемикарбазидов $\ln k{\kern 1pt} '$ от обратной температуры близки к линейным (коэффициенты корреляции r2 = 0.9874–0.9993). Приведенный в табл. 2 температурный коэффициент сорбции V = [($k_{1}^{'}$ – $k_{2}^{'}$) – 1]/(T2 – T1) позволяет определить изменение фактора удерживания вещества при изменении температуры на 1 К. Минимальное влияние температура оказывает на удерживание тиосемикарбазидов I и II на колонке Zorbax-C18.
Таблица 2.
Колонка | Вещество | –ΔH°, кДж моль–1 | –ΔS°/R + + ln φ* | V × 103, К–1 |
---|---|---|---|---|
Hypercarb | I | 13.3 | 5.5 | 21 |
II | 14.5 | 5.4 | 23 | |
III | 16.0 | 4.1 | 26 | |
Zorbax-C18 | I | 4.2 | 2.0 | 6 |
II | 5.3 | 2.1 | 7 | |
III | 8.8 | 2.5 | 12 | |
Zorbax-CN | I | 7.4 | 3.8 | 10 |
II | 8.6 | 4.0 | 12 | |
III | 11.6 | 4.6 | 18 |
Наибольшие значения энтальпии сорбции соединений I–III наблюдаются на ПГУ (колонка Hypercarb). Сравнительный анализ влияния сорбентов на изменение термодинамических функций аллил- и фенилтиосемикарбазидов II и III относительно этилтиосемикарбазида I (выбранного стандартом) позволил обнаружить, что значение δ(ΔS°) при переходе от соединения II к тиосемикарбазиду III на ПГУ увеличивается в 28 раз, тогда как на других сорбентах значение δ(ΔS°) уменьшается (табл. 3). Эта аномалия указывает на существенные различия в механизмах сорбции тиосемикарбазидов на ПГУ и модифицированных силикагелях.
Таблица 3.
№ | Тип сорбента | |||||
---|---|---|---|---|---|---|
Hypercarb | Zorbax-C18 | Zorbax-CN | ||||
–δ(ΔH°), Дж моль–1 | δ(ΔS°), Дж моль–1 К–1 | –δ(ΔH°), Дж моль–1 | δ(ΔS°), Дж моль–1 К–1 | –δ(ΔH°), Дж моль–1 | δ(ΔS°), Дж моль–1 К–1 | |
I | Стандартное вещество | |||||
II | –1219.6 | 0.4 | –1064.2 | –0.5 | –1229.6 | –1.9 |
III | –2686.2 | 11.0 | –3964.1 | –4.5 | –4229.8 | –6.2 |
Основной вклад в удерживание соединений на ПГУ и модифицированном силикагеле вносят неспецифические межмолекулярные взаимодействия молекул сорбатов с поверхностью. Вместе с тем на поверхности ПГУ реализуются специфические межмолекулярные взаимодействия сорбатов с базисной гранью графита и остаточными функциональными группами [11]. Поверхность ПГУ характеризуется высокой чувствительностью к особенностям электронного строения молекул тиосемикарбазидов с различной стереохимией, что значительно увеличивает диапазон его селективности в отношении различных органических соединений. Селективность сорбента ПГУ по отношению к тиосемикарбазидам почти в 1.5 раза выше, чем селективность SiO2 с привитыми группами –С18 и –CN: α = 1.9, 1.4 и 1.3 соответственно.
Время нахождения сорбата в неподвижной фазе зависит не только от природы сорбента, но и от используемого элюента. Изучение влияния состава подвижной фазы позволило обнаружить, что удерживание тиосемикарбазидов на всех сорбентах закономерно увеличивается по мере снижения объемной доли φ органического модификатора (метанола) в воде. Соединение III с метанолом взаимодействует слабее I и II. Для него уравнения зависимости 1/k' = f(φ) на колонках Hypercarb, Zorbax-С18 и Zorbax-CN выглядят следующим образом:
Состав полярного элюента влияет на удерживание III на сорбенте ПГУ значительно слабее, чем на модифицированных силикагелях. Вероятно, это следствие того, что поверхность ПГУ нельзя рассматривать как полностью гидрофобную неполярную, а основным механизмом адсорбции не являются гидрофобные взаимодействия.
Идентификацию тиосемикарбазидов при их исследовании методом ВЭЖХ проводили спектрофотометрически по интенсивной полосе поглощения в области 240 нм. Относительно поглощения изотиоцианатов она сдвинута в длинноволновую область, поэтому даже большой избыток реагентов не мешает определению целевых компонентов. Однако в присутствии буферов, примесей и других соединений в хроматографической системе возможно наложение полос поглощения компонентов смесей. В этом случае, а также при хроматографическом исследовании малолетучих и термолабильных соединений для их идентификации применяли метод МАЛДИ-МС в режиме off-line, т.е. после полного завершения процесса разделения [7]. Поскольку тиосемикарбазиды практически не поглощают излучение азотного лазера с λ = 337 нм, к ним добавляли матрицу DHB, которая способна поглощать лазерное излучение масс-спектрометра, переносить протоны в ходе процесса ионизации, обладает низкой летучестью в условиях вакуума, инертна по отношению к тиосемикарбазидам и способна к сокристаллизации с ними. В МАЛДИ масс-спектре тиосемикарбазида I с этой матрицей помимо пиков протонированных и катионированных молекул I ([М + Н]+, [М + Na]+, [М + К]+ с m/z 148, 171, 183, соответственно), присутствуют пики их молекулярных ассоциатов с матрицей и кластерных ионов матрицы с m/z 155, 177 и 193 (рис. 3).
Максимальная интенсивность пиков протонированной молекулы тиосемикарбазида I достигается при соотношении матрица/аналит Mt/A = 100, тиосемикарбазида II – при Mt/A = 1, фенилтиосемикарбазида III при Mt/A = 1000. Причиной влияния концентрации матрицы (органической кислоты) на эффективность ионизации молекул I–III, отличающихся только природой заместителя, по данным [7], является различие в их основности в газовой фазе.
Надежно идентифицировать тиосемикарбазиды методом масс-спектрометрии ЭИ позволяет присутствие в их масс-спектрах не только молекулярных, но и характеристических ионов (табл. 1). В связи с этим были исследованы процессы фрагментации метастабильных протонированных молекул тиосемикарбазидов, ускоренных в ионном источнике, в условиях МАЛДИ (табл. 4). Необходимо отметить, что распаду за пределами ионного источника подвергаются также и кластерные ионы матрицы DHB, что несколько осложняет проведение масс-спектрометрического анализа в диапазоне масс 20–200 Да.
В масс-спектрах фрагментации исходных ионов тиосемикарбазидов I–III присутствуют пики их протонированных молекул [M + Н]+ и пики характеристических ионов с m/z 46, 61, 78, 103. Анализ обнаруженных фрагментов позволяет предположить, что распад метастабильных протонированных молекул тиосемикарбазидов происходит в результате разрыва химических связей, ближайших к атому азота, после присоединения к нему протона (схема 2). Распад молекул I–III приводит к элиминированию нейтральных аминосоединений (этиламина, аллиламина, анилина и диметилгидразина), а также молекулы сероводорода. Это соответствует данным [12] об основных схемах фрагментации аминов в процессе ЛДИ в растворах и газовой фазе.
Особое значение в идентификации методом МАЛДИ-МС 1,1-диметилгидразина в виде S,N-производного имеет фрагментный ион c m/z 78, образование которого не зависит от природы заместителя R в тиосемикарбазидах I–III и связано только с наличием в их структуре остатка 1,1-диметилгидразина. В масс-спектрах ЭИ ион c m/z 77 наблюдается только у соединения III (табл. 1). Обнаружено сходство фрагментации тиосемикарбазида III в режимах ЭИ и МАЛДИ. В режиме ЭИ (табл. 1) наблюдается элиминирование молекулы сероводорода и образование иона с m/z 161, соответствующего 1-диметиламино-4-фенилкарбодиимиду, элиминирование фрагментов 1,1-диметилгидразина с m/z 60, анилина с m/z 93 и расщепление связи N–N с образованием иона диметиламина с m/z 45. В условиях ионизации МАЛДИ (табл. 4) осколочные ионы детектируются в соответствующей протонированной форме.
Кроме вышеуказанных ионов в масс-спектрах МАЛДИ тиосемикарбазидов, полученных в режиме распада после ионного источника, присутствуют пики ионов [M + H–2]+ и [M + H–4]+ (табл. 4). Их образование, вероятно, обусловлено протекающими в условиях ионизации МАЛДИ процессами дегидрирования протонированных молекул аминов, которые наблюдались в [11]. Доля дегидрированных ионов [M + H–4]+ увеличивается на 40% при увеличении энергии лазера с 35 до 40%.
Масс-спектры МАЛДИ фрагментации метастабильных протонированных аллил- и фенил-S, N-производных 1,1-метилэтилгидразина близки масс-спектрам S,N-производных 1,1-диметилгидразина I–III и отличаются на гомологическую разность 14 Да (табл. 5). Масс-спектры фрагментации ионов [M + H]+ аллил- и фенил-S,N-производных 1-метилгидразина содержат пики ионов метилгидразиния с m/z 47, протонированного N-метиламиноизотиоцианата с m/z 89 и аллиламмония с m/z 58 (схема 3). Распад всех аллилсодержащих тиосемикарбазидов сопровождается образованием ионов аллиламмония с m/z 58; фрагментация всех фенилсодержащих тиосемикарбазидов строго индивидуальна и зависит от состава исходных алкилгидразинов.
Таблица 5.
S,N-производные алкилгидразинов | m/z | |
---|---|---|
ЭИ | МАЛДИ | |
4-All-1-Me-тиосемикарбазид | 46, 56, 128, 128, 145 | 47, 58, 89, 144, 146 |
4-Ph-1-Me-тиосемикарбазид | 45, 58, 59, 74, 101, 116, 173 | 58, 60, 73, 75, 92, 117, 170, 172, 174 |
4-All-1-Me-1-Et-тиосемикарбазид | 46, 77, 109, 135, 136, 181 | 47, 89, 165, 182 |
4-Ph-1-Me-1-Et-тиосемикарбазид | 58, 59, 74, 77, 93, 153, 176, 209 | 58, 60, 73, 75, 92, 94, 117, 151, 176, 206, 208, 210 |
Таким образом, проведенные исследования продуктов дериватизации алкилгидразинов с помощью изотиоцианатов позволяют эффективно разделять компоненты реакционных смесей и надежно идентифицировать S,N-производные алкилгидразинов на основе хроматографических параметров удерживания и масс-фрагментации в режимах ЭИ и МАЛДИ.
Таким образом, методами масс-спектрометрии в режимах ЭИ и МАЛДИ в сочетании с методами газовой и жидкостной хроматографии изучены продукты взаимодействия алкилгидразинов с этил-, аллил- и фенилизотиоцианатами. Оптимизированы условия разделения реакционных смесей методами газовой и жидкостной хроматографии, а также идентификации целевых соединений в on-line и off-line режимах. Определены физико-химические характеристики сорбции тиосемикарбазидов. Изучены процессы распада и фрагментации их метастабильных протонированных молекул, ускоренных в ионном источнике. Предложены схемы образования фрагментных и характеристических ионов тиосемикарбазидов в различных режимах ионизации.
Работа выполнена в рамках Государственного задания ИФХЭ РАН и при частичной финансовой поддержке Российского фонда фундаментальных исследований (проект № 18-08-01224а).
Авторы благодарят Центр коллективного пользования ИФХЭ РАН за предоставленное для исследований оборудование.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов, требующего раскрытия в данной статье.
Список литературы
Blau K., Halket J.M. Handbook of Derivatives for Chromatography. Chichester: Wiley, 1993.
Парамонов С.А., Ульянов А.В., Буряк А.К. // Изв. АН. Сер. хим. 2010. Т. 59. С. 517.
Полунин К.Е., Матюшин Д.Д., Ульянов А.В. и др. // Коллоидн. журн. 2019. Т. 81. № 4. С. 493. https://doi.org/10.1134/S1061933X19030104
Газиева Г.А., Кравченко А.Н. // Успехи химии. 2012. Т. 81. № 6. С. 494. https://doi.org/10.1070/RC2012v081n06ABEH004235
Буряк А.К., Сердюк Т.М. // Успехи химии. 2013. Т. 82. С. 369. https://doi.org/10.1070/RC2013v082n04ABEH004304
Алимпиев С.С., Гречников А.А., Никифоров С.М. // Успехи физ. наук. 2015. Т. 185. С. 207. https://doi.org/10.3367/UFNr.201502f.0207
Karas M., Krüger R. // Chem. Rev. 2003. V. 103. № 2. P. 427. https://doi.org/10.1021/cr010376a
Cheng T., Zhao Y., Li X. et al. // J. Chem. Information and Modeling. 2007. V. 47. № 6. P. 2140. https://doi.org/10.1021/ci700257y
Stein S.E., Babushok V.I., Brown R.L., Linstrom P.J. // J. Chem. Information and Modeling. 2007. V. 47. № 3. P. 975. https://doi.org/10.1021/ci600548y
Лебедев А.Т. Масс-спектрометрия в органической химии. М.: БИНОМ, 2003. 493 с.
Милюшкин А.Л., Лактюшина А.А., Буряк А.К. // Изв. АН. Сер. хим. 2017. № 1. С. 56. https://doi.org/10.1007/s11172-017-1699-6
Xianwen L., Spiering A.J.H., de Waal B.F.M. et al. // J. Mass Spectrom. 2008. V. 43. № 8. P. 1110.
Дополнительные материалы отсутствуют.
Инструменты
Журнал физической химии